Please use this identifier to cite or link to this item: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/13581
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.authorSilva, Hellen Fernanda Oliveira da
dc.date.accessioned2023-12-22T02:48:32Z-
dc.date.available2023-12-22T02:48:32Z-
dc.date.issued2020-02-28
dc.identifier.citationSILVA, Hellen Fernanda Oliveira da. Influência da substância húmica em plantas de arroz (Oryza sativa L.) inoculadas por fungos micorrízicos arbusculares sob estresse salino. 2020. 121 f. Dissertação (Mestrado em Fitossanidade e Biotecnologia Aplicada) - Instituto de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2020.por
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/13581-
dc.description.abstractA presente dissertação teve como objetivo avaliar o efeito da substância húmica (SH) íntegra extraída de vermicomposto (Vc) caracterizada mediante técnicas espectroscópica e em combinação com fungos micorrízicos arbusculares em plantas de arroz submetidas a estresse salino. No capítulo I, foi verificada a influência de diferentes níveis de estresse salino nos parâmetros morfológicos do sistema radicular e fisiológicos da parte aérea da espécie vegetal em estudo. Foi constatado que a maior concentração salina desencadeou danos fisiológicos em algumas etapas da fotossíntese, acarretando no decréscimo da produção de biomassa nas plantas. Houve influência negativa no desenvolvimento do sistema radicular sob os diferentes níveis de estresse salino. Entretanto, a máxima concentração provocou uma redução em todas as características morfológicas quantificadas, afetando principalmente, o comprimento e número de raízes, exercendo efeitos nocivos no crescimento e desenvolvimento da planta. Esse efeito prejudicial resulta em um declínio na capacidade de absorção de água e nutrientes, diminuindo, consequentemente, a quantidade de nutrientes disponíveis para serem translocados aos demais órgãos, interferindo na produtividade. Contudo, ficou evidente que as doses de estresse salino toleradas pelo arroz nas condições experimentais foram as que continham 150 mM e 200 mM de NaCl. O capítulo II teve como objetivo caracterizar espectroscopicamente a SH isoladas a partir de vermicomposto e, posteriormente, avaliar o efeito de diferentes concentrações da SH, em momentos diferentes sob o desenvolvimento dos indicadores morfológicos radiculares e os efeitos causados no rendimento quântico fotossintético. Através do espectro 13C NMR, notou-se a predominância de estruturas alifáticas devido à predominância de grupos CAlkyl(H,R), CAlkyl-O e o conteúdo de C alifático foi maior que o conteúdo de C aromático. Em seguida, ao avaliar a influência desta substância nas plantas de arroz, foi constatado que apresentaram aumento no desempenho fotossintético com as concentrações de 40 e 60 mg (SH) L-1, 144 horas após aplicação, uma vez tendo ocorrido inicialmente um declínio. Essa redução na eficiência fotossintética possivelmente desempenhou um papel de sinalização para a espécie vegetal, o que posteriormente acarretou no aumento do desenvolvimento da mesma. Houveram alterações diferenciadas nas características estruturais do sistema radicular por efeito da aplicação da substância húmica, correlacionada aos aspectos de desenvolvimento da parede celular vegetal. No capítulo III, foi avaliada a influência da interação da dose selecionada de SH e dos fungos micorrízicos Acaulospora mellea, Glomus formosanum, Rhyzoglomus clarum e Glomus sp. na cultura do arroz submetido a dose de estresse salino. A aplicação da SH em plantas inoculadas com FMA, tanto em condições normais como em meio ao estresse salino, incrementaram significativamente a produção de biomassa da parte aérea e os parâmetros morfológicos do sistema radicular, havendo maior expressividade de interações com o fungo Rhyzoglomus clarum e Glomus sp no estresse salino, destacando-se por terem apresentado estruturas de estabelecimento de simbiose e reprodutivas, em relação a eficiência da colonização micorrízica de acordo com a metodologia utilizadapor
dc.description.sponsorshipCAPES - Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superiorpor
dc.formatapplication/pdf*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropor
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.subjectÁcidos Húmicospor
dc.subjectAtividade biológicapor
dc.subjectSimbiosespor
dc.subjectSalinidadepor
dc.subjectHumic acidseng
dc.subjectBiological activityeng
dc.subjectSymbiosiseng
dc.subjectSalinityeng
dc.titleInfluência da substância húmica em plantas de arroz (Oryza sativa L.) inoculadas por fungos micorrízicos arbusculares sob estresse salinopor
dc.title.alternativeInfluence of humic substance on rice plants (Oryza sativa L.) inoculated by arbuscular mycorrhizal fungi under salt stresspor
dc.typeDissertaçãopor
dc.description.abstractOtherThis dissertation aimed to evaluate the effect of humic substances (HS) extracted from vermicompost (Vc) and characterized by spectroscopic techniques in combination with arbuscular mycorrhizal fungi in rice plants under to salt stress conditions. The chapter I evaluated the influence of different NaCl dose on the roots morphological parameters and physiological systems of the aerial part in plant growth under stress conditions. It was found that the highest salt concentration triggered deleterius effects in some stages of photosynthesis, resulting in a production decrease of biomass in plants. Salt treatments in rice plants exerced negative influence on the development of the root system showing a physiological stress condition. The higher NaCl concentration caused a reduction in all the quantified morphological characteristics, mainly affecting the length and number of roots, exerting harmful effects on the growth and development of plant. This harmful effect results in a decline of water and nutrient absorption capacity. However, it was evident that the doses of salt stress tolerated by rice plant were those that contained 150 mM and 200 mM NaCl. Chapter II aimed to characterize by spectroscopic technics the HS isolated from vermicompost and, subsequently, to evaluate at different times, the effect of different HS concentrations on root morphological indicators and photosynthetic quantum yield. The 13C NMR spectra show a predominance of aliphatic structures and the predominance of CAlkyl (H, R), CAlkyl-O groups and the aliphatic C content was greater than the aromatic C content. Then, when assessing the influence of this substance on rice plants growht, it was found an increase in photosynthetic performance in plant treated with concentrations of 40 and 60 mg (AH) L-1, 144 hours after application, once there was an initial decline. There were different changes in the root system due to the application of the humic substance, correlated with the development aspects of the plant cell wall. The Chapter III evaluated the influence of the application of HS and the mycorrhizal fungi Acaulospora mellea, Glomus formosanum, Rhyzoglomus clarum and Glomus sp. in rice plant under saline stress. The application of HS in plants inoculated with AMF, both in normal conditions and under salt stress, significantly increased the biomass production of the aerial part and the morphological parameters of root system, with greater expressiveness of interactions with the fungus Rhyzoglomus clarum and Glomus sp in saline stress, standing out for having presented symbiosis and reproductive structures in relation to the efficiency of mycorrhizal colonization according to the methodology usedeng
dc.contributor.advisor1García, Andrés Calderín
dc.contributor.advisor1ID061.145.927-27por
dc.contributor.advisor1IDhttps://orcid.org/0000-0001-5963-3847por
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/8896375232574274por
dc.contributor.advisor-co1Silva, Eliane Maria Ribeiro da
dc.contributor.advisor-co1ID511.084.027-04por
dc.contributor.advisor-co1Latteshttp://lattes.cnpq.br/9274478730595213por
dc.contributor.referee1García, Andrés Calderín
dc.contributor.referee1ID061.145.927-27por
dc.contributor.referee1IDhttps://orcid.org/0000-0001-5963-3847por
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/8896375232574274por
dc.contributor.referee2Tavares, Orlando Carlos Huertas
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/6517289620714369por
dc.contributor.referee3Nobre, Camila Pinheiro
dc.contributor.referee3IDhttps://orcid.org/0000-0001-8137-7456por
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/5350879120540577por
dc.creator.ID137.335.807-61por
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/8215713473257692por
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.departmentInstituto de Ciências Biológicas e da Saúdepor
dc.publisher.initialsUFRRJpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Fitossanidade e Biotecnologia Aplicadapor
dc.relation.referencesABBOT; L. K.; MURPHY; D. V. What is soil biological fertility? In: ABBOTT; L. K.; MURPHY; D. V. (eds.). Soil biological fertility. The Netherlands: Springer; 2007. p. 1-15. ABDEL LATEF A, CHAOXING H (2011) Effect of arbuscular mycorrhizal fungi on growth, mineral nutrition, antioxidant enzymes activity and fruit yield of tomato grown under salinity stress. Sci Hortic 127:228–233 ABDEL LATEF; A.A.H. & CHAOXING; H. Effect of arbuscular mycorrhizal fungi on growth; mineral nutrition; antioxidant enzymes activity and fruit yield of tomato grown under salinity stress. Sci. Hortic.; 127:228-233; 2011. AGUIAR NETTO; A. O.; GOMES; C. C. S.; LINS; C. C. V.; BARROS; A. C.; CAMPECHE; L. F. S. M.; BLANCO; F. F. Características químicas e salino-sodicidade dos solos do Perímetro Irrigado Califórnia-SE; Brasil. Ciência Rural; v.37; n.6; p.1640-1645; 2007. AGUIAR; N. O.; MEDICI; L. O.; OLIVARES; F. S.; DOBBSS; L. B.; TORRES-NETTO; A.; SILVA; S. F.; NOVOTNY; E. H.; CANELLAS; L. P. Metabolic profile and antioxidant responses during drought stress recovery in sugarcane treated with humic acids and endophytic diazotrophic bacteria. Ann. Appl. Biol.; 168(2): 203-213; 2016. Aldridge, C. et al. Protein transport in organelles: protein transport into and across the thylakoid membrane. FEBS J. 276, 1177–1186; 2009. ALGUACIL; M.M.; HERNÁNDEZ; J.A.; CARAVACA; F.; PORTILLO; B. & ROLDÁN; A. Antioxidant enzyme activities in shoots from three mycorrhizal shrub species afforested in a degraded semi-arid soil. Physiol. Plant.; 118:562-570; 2003. ALLEN, J.F.; PAULA, W. B. M. de; PUTHIYAVEETIL, S.; NIELD, J. A structural phylogenetic map for chloroplast photosynthesis. Trends in Plant Science; vol.16; n.12; DOI:10.1016/j.tplants.2011.10.004; 2011. AMINIFARD; M. H.; AROIEE; H.; NEMATI; H.; AZIZI; M.; HAWA; Z.; JAAFAR; E. Fulvic acid affects pepper antioxidant activity and fruit quality. African Journal of Biotechnology; v. 11; n. 68; p. 13179–13185. 2012. Aquastat –FAO.2010.Disponível em: http://www.fao.org/nr/water/aquastat/main/index.stm. ARANCON; N. Q.; EDWARDS; C. A.; LEE; S.; BYRNE; R. Effects of humic acids from vermicomposts on plant growth. Eur. J. Soil Biol.; 42: 65-69; 2006. Archibald, J.M. (2006) Algal genomics: exploring the imprint of endosymbiosis. Curr. Biol. 16, R1033–R1035 ARFAOUI; A.; EL HADRAMI; A.; MABROUK; Y.; SIFI; B.; BOUDABOUS; A.; EL HADRAMI; I.; DAAYF; F. & CHÉRIF; M. Treatment of chickpea with Rhizobium isolates enhances the expression of phenylpropanoid defense-related genes in response to infection by Fusarium oxysporum f. sp. ciceris. Plant Physiol. Biochem.; 45:470-479; 2007. 106 ASGHARI; H.; MARSCHNER; P.; SMITH; S. & SMITH; F. Growth response of Atriplex nummularia to inoculation with arbuscular mycorrhizal fungi at different salinity levels. Plant Soil; 273:245-256; 2005. ASH; C. et al. Feeding the future. Science; v.327; p.797; 2010. ASLI; S.; NEUMANN; P. M. Rhizosphere humic acid interacts with root cell walls to reduce hydraulic conductivity and plant development. Plant and Soil; v. 336; n. 1; p. 313–322; 2010. AZEVEDO NETO; A. D.; PRISCO; J. Y.; ENÉAS-FILHO; J.; LACERDA; C. F.; SILVA; J. V.; COSTA; P. H. A.; GOMES-FILHO; E. Effects of salt stress on plants growth; stomatal response and solute accumulation of diferente maize genotypes. Brazilian Journal of Plant Physiology; v. 16; p. 31-38; 2004. Baldotto MA & Baldotto LEB (2014). Ácidos Húmicos. Revista Ceres; Viçosa; 61: 856-881. http://dx.doi.org/10.1590/0034-737X201461000011. Barkan, A. Expression of plastid genes: organelle-specific elaborations on a prokaryotic scaffold. Plant Physiol. 155, 1520–1532; 2011. BAYER; C.; MIELNICZUK; J. Dinâmica e função da matéria orgânica. In: SANTOS; G. A.; SILVA; L. S.; CANELLAS; L. P.; CAMARGO; F. A. O. Fundamentos da matéria orgânica do solo: ecossistemas tropicais e subtropicais. 2. ed. Porto Alegre: Metrópole; 2008. p. 7-18. BEFROZFAR; M. R.; HABIBI; D.; ASGHARZADEH; A.; SADEGHI-; M.; TOOKALLOO; M. R. Vermicompost; plant growth promoting bacteria and humic acid can affect the growth and essence of basil (Ocimum basilicum L.). Scholars Research Library; v. 4; n. 2; p. 8–12; 2013. Benner BL; Bazzaz FA (1985) Response of the annual Abutilon theophrasti Medic. (Malvaceae) to timing of nutrient availability. Am J Bot 2:320–23. BERBARA, R. L. L.; SOUZA, F. A. de; FONSECA, H. M. A. C. Fungos micorrízicos arbusculares: muito além da nutrição. In: FERNANDES, M. S. (Ed.). Nutrição mineral de plantas. Viçosa, MG: SBCS, 2006. p. 53-88. BERBARA, R. L. L.; SOUZA, F. A.; FONSECA, H. M. III - Fungos Micorrízicos Arbusculares: Book, v. Cap III, n. 54–80, p. 432, 2006. BERBARA, R.L.L.; GARCÍA, A.C. Humic substances and plant defense metabolism. In: AHMAD, P.; WANI, M.R. Physiological mechanisms and adaptation strategies in plants under changing environment. Springer Science+Business Media: New York, 2014. p.297-319. BHANDAL, I.S.; MALIK, C.P. Potassium estimation, uptake and its role in the physiology and metabolism of flowering plants. Int. Rev. Cytol., 110-205-254. 1988. https://doi.org/10.1016/S0074-7696(08)61851-3 BINET MN; TUINEN VD; DEPRÊTRE N; KOSZELA N; CHAMBON C; GIANIAZZI S. 2011. Arbuscular mycorrhizal fungi associated with Artemisia umbelliformis Lam, an endangered aromatic species in Southern French Alps, influence plant P and essential oil contents. Mycorrhiza21: 523-535. 107 Black KG; Mitchell DT; Osborne BA (2000) Effect of mycorrhizalenhanced leaf phosphate status on carbon partitioning; translocation and photosynthesis in cucumber. Plant Cell Environ 8:797–809. BLANCHET; R. M. The direct and indirect effect of humified; organic matter on the nutrition of vascular plants. Ann Agron. 9:499-532; 1958. Blumwald; E.; Aharon; G.S.; Aspe; M.P.: Sodium transport in plant cells. - Biochim. biophys. Acta 1465: 140-151; 2000. Boominathan; P.; R. Shukla; K. Kumar; D. Manna; D. Negi; P.K. Verma and D. Chattopadhyay; 2004. Long term transcript accumulation during the development of dehydration adaptation in Cicer arietinum. Plant Physiol.; 135: 1608‒1620 Bock, R. and Timmis, J.N. (2008) Reconstructing evolution: gene transfer from plastids to the nucleus. Bioessays 30, 556–566 BORDE; M.; DUHRANE; M. & JITE; P. Growth photosynthetic activity and antioxidant responses of mycorrhizal and nonmycorrhizal bajra (Pennisetum glaucum) crop under salinity stress condition. Crop Protec.; 30:265-271; 2011. BRAHMAPRAKASH; G. P.; SAHU; P. K. Biofertilizers for sustainability. Journal of the Indian Institute of Science. v. 92; n. 1; p. 37-62; 2012. BRAY; E.A. Plant responses to water deficit. Trends Plant Sci.; 2:48-54; 1997. Brussens; S.; K. Himanen; B. van de Cotte; T. Beeckman; M. Van Montagu; D. Inze and N. Verbruggen; 2000. Expression of cell cycle regulatory genes and morphological alterations in response to salt stress in Arabidopsis thaliana. Planta; 211: 98‒104 Cachorro; P.; Martinez; R.; Ortiz; A.; Cerda; A.: Abscisic acid and osmotic relations in Phaseolus vulgaris L. under saline conditions. - Plant Sci. 95: 29-32; 1995. Canellas LP; Olivares FL; Okorokova-Facanha AL & Facanha AR (2002) Humic acids isolated from earthworm compost enhance root elongation; lateral root emergence; and plasma membrane H+-ATPase activity in maize roots. Plant Physiology; 130:1951-1957. CANELLAS, L. P.; OLIVARES, F. L.; AGUIAR, N. O.; JONES, D. L.; NEBBIOSO, A.; MAZZEI, P.; PICCOLO, A. Humic and fulvic acids as biostimulants in horticulture. Scientia Horticulturae, v. 196, p. 15–27, 2015. CANELLAS; L. P.; BALMORI; D. M.; MÉDICI; L. O.; AGUIAR; N. O.; CAMPOSTRINI; E.; ROSA; R. C. C.; FAÇANHA; A. R.; OLIVARES; F. L. A combination of humic substances and Herbaspirillum seropedicae inoculation enhances the growth of maize (Zea mays L.). Plant and Soil; v.366; p. 119–132; 2013. CANELLAS; L. P.; FAÇANHA; A. R. Chemical nature of soil humified fractions and their bioactivity. Pesquisa Agropecuaria Brasileira; v. 39; n. 3; p. 233–240; 2004. 108 CANELLAS; L. P.; OLIVARES; F. L.; AGUIAR; N. O.; JONES; D. L.; NEBBIOSO; A.; MAZZEI; P.; PICCOLO; A. Humic and fulvic acids as biostimulants in horticulture. Scientia Horticulturae; v. 196; p. 15–27; 2015. CANELLAS; L. P.; OLIVARES; F. L.; AGUIAR; N. O.; JONES; D. L.; NEBBIOSO; A.; MAZZEI; P.; PICCOLO; A. Humic and fulvic acids as biostimulants in horticulture. Sci. Horitc.; 196: 15-27; 2015. CARDOSO; E. J. B. N; TSAI; S. M.; NEVES; M. C. P. In: Microbiologia do solo. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo; Campinas; 1992. CARRER; H.; BARBOSA; A. L.; RAMIRO; D. A. Biotecnologia na Agricultura. Estudos Avançados 24(70); 2010. CAVALCANTE; L. F. et al. Fontes e níveis da salinidade da água na formação de mudas de mamoeiro cv. Sunrise solo. Semina: Ciências Agrárias; v.31; p.12811290; 2010. CAVICHIOLO; S. R. Perdas de Solo e Nutrientes por Erosão Hídrica em diferentes Métodos de Preparo do Solo em Plantio de Pinus taeda. Universidade Federal do Paraná; Curitiba; 2005; 139p. Tese de Doutorado. CEPEA - Centro de Estudos Avançados em Economia Aplicada. PIB Agro CEPEA-ESALQ/USP; out/ 2019. Disponível em: http://www.cepea.esalq.usp.br/pib/. Acesso em: 01/12/2019. Cerda; A.; Pardines; J.; Botella; M.A.; Martinez; V.: Effect of potassium on growth; water relations; and the organic solute contents for two maize grown under saline conditions. - J. Plant Nutr. 18: 839-851; 1995. CHAKRABORTY; A.; CHAKRABORTY; K.; GHOSH; S. Effect of long-term fertizers and manure application on microbial biomass and microbial activity of a tropical agricultural soil. Biology and Fertility of Soils; v. 47; p. 227-253; 2011. CHEN J; LEBOEUF EJ; DAI S; BA G. Fluorescence spectroscopic studies of natural organicmatter fractions. Chemosphere 50:639–647. 2003. CHEN Y & AVAID T (1990) Effects of humic substances on plant growth. In: Maccarthy P;Capp CE; Malcolm RL & Bloom PR (Eds.) Humic substances in soil and crop sciences: selected readings. Madison; American Society of America. p.161-186. Chen Y; Clapp CE & Magen H (2004) Mechanisms of plant growth stimulation by humic substances: The role of organo-iron complexes. Plant Nutrition and Soil Scienc: 1089-1095. CHEN; Y.; DE NOBILI; M.; AVIAD; T. Stimulatory effects of humic. In: MAGDOFF; F.; WEIL; R. R. Editors. Soil organic matter in sustainable agriculture. Boca Raton: CRC Press; 2004. p.103-129. http://dx.doi.or/10.1201/9780203496374.ch4. CIA; M. C.; GUIMARÃES; A. C. R.; MEDICI; L. O.; CHABREGAS; S. M.; AZEVEDO; R. A. Antioxidant responses to water deficit by drought-tolerant and –sensitive sugarcane varieties. Ann. Appl. Biol.; 161: 313-324; 2012 109 COLLA; G.; ROUPHAEL; Y.; CARDARELLI; M.; TULLIO; M.; RIVERA; C.M. & REA; E. Alleviation of salt stress by arbuscular mycorrhizal in zucchini plants grown at low and high phosphorus concentration. Biol. Fert. Soils; 44:501-509; 2008. Cornic; G.: Drought stress inhibits photosynthesis by decreasing stomatal aperture – not by affecting ATP synthesis. - Trends Plant Sci. 5: 187-188; 2000. COSTA; M.D. & LOVATO; P.E. Micorrizas arbusculares e a supressão de patógenos. In: KLAUBERG-FILHO; O.; MAFRA; A.L. & GATIBONI; L.C.; eds. Tópicos em ciência do solo. Viçosa; MG; Sociedade Brasileira de Ciência do Solo; v. 6 ; 2011. p.119-139. Cui KH; Peng SB; Xing YZ; et al. (2003) Molecular dissection of the genetic relationships of source; sink and transport tissue with yield traits in rice. Theor Appl Genet 4:649–58. CUNHA; T. J. F. Ácidos húmicos de solos escuros da Amazônia (Terra Preta do Índio). 2005. 118 f. Tese de Doutorado; Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro; 2005. DA SILVA; M. A. C.; DOS SANTOS; W. O.; SIMOURA; N. T.; TESCH; J. A.; RUAS; K. F.; COLODETE; C. M.; TANNURE; F. P.; DE OLIVEIRA BARBIRATO; J.; RAMOS; A. C.; DOBBSS; L. B. Ácidos húmicos de vermicomposto estimulam o crescimento in vitro de plântulas de Cattleya warneri (Orchidaceae).Rodriguésia; v. 66; n. 3; p. 759–768; 2015. DALIAKOPOULOS; I. N.; TSANIS; I. K.; KOUTROULIS; A.; KOURGIALAS; N. N.; VAROUCHAKIS; A. E.; KARATZAS; G. P.; RITSEMA; C. J. The threat of soil salinity: A European Scale Review. Sci. Total Environ.; 573: 727-739; 2016. DE GARA; L.; PINTO; M.C. & TOMMASI; F. The antioxidant systems vis-a-vis reactive oxygen species during plantpathogen interaction. Plant Physiol. Biochem.; 41:863870; 2003. DEL RÍO; L.A.; SANDALIO; L.M.; CORPAS; F.J.; PALMA; J.M. & BARROSO; J.B. Reactive oxygen species and reactive nitrogen species in peroxisomes: Production; scavenging; and role in cell signaling. Physiol. Plant.; 141:330-335; 2006. DEMIR, K., GÜNES, A., INAL, A.; ALPASLAN, M. Effects of humic acids on the yield and mineral nutrition of cucumber (Cucumis sativus L.) Grown with different salinity levels. Acta Hortic, v.492, p.95-104, 1999. DIAS; J. P. T. Ecofisiologia de Culturas Agrícolas. Universidade do Estado de Minas Gerais; Belo Horizonte. 169p. ISBN 978-85-5478-015-9; 2018. DIAS; N. D. S. et al. Efeitos dos sais na planta e tolerância das culturas à salinidade. In: GHEY; H. R. et al. (Eds.). Manejo da salinidade na agricultura: estudos básicos e aplicados. 2a ed. Fortaleza: INCTSal; 2016. p. 504. DIAS; N. S.; BLANCO; F. F. Manejo da salinidade na agricultura: estudos básicos e aplicados. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Salinidade. ISBN:978-85-7563-489-9; 472p.; 2010. 110 DÍAZ-LÓPEZ; L.; GIRMENO; V.; LIDÓN; V.; SIMÓN; I.; MARTÍNEZ; V.; GARCÍA-SÁNCHEZ; F. To tolerance of Jathopha curcas seedlings to NaCl: An ecophysiological analysis. Plant Physiology and Biochemistry; v.54; p.34-42; 2012. DOBBSS, L. B.; CANELLAS, L. P.; OLIVARES, F. L.; AGUIAR, N. O.; PERES, L. E. P.; AZEVEDO, M.; SPACCINI, R.; PICCOLO, A.; FAÇANHA, A. R. Bioactivity of chemically transformed humic matter from vermicompost on plant root growth. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 58, n. 6, p. 3681–3688, 2010. DOBBSS, L. B.; RUMJANECK, V. M.; BALDOTTO, M. A.; VELLOSO, A. C. X.; CANELLAS, L. P. Caracterização química e espectroscópica de ácidos húmicos e fúlvicos isolados da camada superficial de latossolos brasileiros. Rev. Bras. Ci. Solo, v. 33, n. 1, p. 51–63, 2009. DOBBSS; L. B.; BARROSO; A. L. P.; RAMOS; A. C.; TORRICO; K. S. N.; ARÇARI; F. S. S.; ZANDONADI; D. B. Bioactivity of mangrove humic material on Rizophora mangle and Laguncularia racemosa seedlings; Brazil. Afr. J. Biotechnol.; 15(23): 1168- 1176; 2016. DOBBSS; L. B.; MEDICI; L. O.; PERES; L. E. P.; PINO NUNES; L.E.; RUMJANEK; V. M; FAÇANHA; A. R.; CANELLAS; L. P. Changes in root development of Arabidopsis promoted by organic matter from oxisols. Ann Appl Biol. 151 (2):199-211; 2007. DOMINGUES; E. P.; MAGALHÃES; A. S. & RUIZ; R. M. 2011. Cenário de mudanças climáticas e agricultura no Brasil: impactos econômicos na Região Nordeste. Revista de Economia do Nordeste; 42(2): 229-246. DU JARDIN; P. Plant biostimulants: Definition; concept; main categories and regulation. Scientia Horticulturae; v. 196; p. 3–14; 2015. DUARTE; H. F. H.; SOUZA; E. R. DE. Soil Water Potentials and Capsicum annuum L. under Salinity. Revista Brasileira de Ciência do solo; v. 40; p. 1-11; 2016. DOI: 10.1590/18069657rbcs20150220 EGLI; M.; ALIOTH; L.; MIRABELLA; A.; RAIMONDI; S.; NATER; M.; VEREL; R. Effect of Climate and Vegetation on Soil Organic Carbon; Humus Fractions; Allophanes; Imogolite; Kaolinite; and Oxyhydroxides in Volcanic Soils of Etna (Sicily). Soil Science; v. 172; n. 9; p. 673–691; 2007. ELGALA; A. M.; METWALLY; A. L.; KHALIL; R. A. The effect of humic acid and Na2EDDHA on the uptake of Cu; Fe; and Zn by barley in sand culture. Plant Soil. 49(1):41-8; 1978. EL-KHALLAL; S.M. Induction and modulation of resistance in tomato plants against Fusarium wilt disease by bioagent fungi (arbuscular mycorrhiza) and/or hormonal elicitors (jasmonic acid and salicylic acid): 2-changes in the antioxidant enzymes; phenolic compounds and pathogen related-proteins. Austr. J. Basic Appl. Sci.; 1:717-732; 2007. EL-KHATEEB, M. A.; EL-LEITHY, A. S.; ALJEMAA, B. A. Effect of Mycorrhizal Fungi Inoculation and Humic Acid on Vegetative Growth and Chemical Composition of Acacia 111 saligna Labill. Seedlings under Different Irrigation Intervals. Journal of Horticultural Science & Ornamental Plants, v. 3, n. 3, p. 283–289, 2011. FAÇANHA.A; R; FAÇANHA; A.L.O; OLIVARES; F.L; GURIDI; F.; SANTOS; G.D.A; VELLOSO; A.C.X; RUMJANEK; V.M; BRASIL.; F; SCHRIPSEMA; J; BRAZ-FILHO R; DE OLIVEIRA M.A; CANELLAS; L.P. Bioatividade de ácidos húmicos: Efeitos sobre o desenvolvimento radicular e sobre a bomba de prótons da membrana plasmática. Pesquisa Agropecuaria Brasileira; v. 37; n. 9; p. 1301–1310; 2002. FAÇANHA.A; R; FAÇANHA; A.L.O; OLIVARES; F.L; GURIDI; F.; SANTOS; G.D.A; VELLOSO; A.C.X; RUMJANEK; V.M; BRASIL.; F; SCHRIPSEMA; J; BRAZ-FILHO R; DE OLIVEIRA M.A; CANELLAS; L.P. Bioatividade de ácidos húmicos: Efeitos sobre o desenvolvimento radicular e sobre a bomba de prótons da membrana plasmática. Pesquisa Agropecuaria Brasileira; v. 37; n. 9; p. 1301–1310; 2002. FAGÉRIA; N. K. Resposta de Arroz de Terras Altas; Feijão; Milho e Soja à saturação por base em solo de cerrado. Revista brasileira de engenharia agrícola e ambiental; v.5; n.3; p. 416-424; 2001. Campina Grande; DEAg/UFPB. FAO. 2010. disponível em: <http://www.fao.org>. FAO. 2013. disponível em: <http://www.fao.org>. FAO. 2015. disponível em: <http://www.fao.org>. FERREIRA; P. A.; SILVA; J. B. L.; RUIZ; H. A. Manejo da Salinidade na Agricultura: Estudos Básicos e Aplicados. Fortaleza: Aspectos físicos e químicos de solos em regiões áridas e semiáridas; 2010. FERREIRA; R. G.; et al. Distribuição da matéria seca e composição química das raízes; caule e folhas de goiabeira submetida a estresse salino. Pesquisa Agropecuária Brasileira; v. 36; n. 1; p. 79-88; 2001. FERREIRA-SILVA; S.L.; SILVEIRA; J.A.G.; VOIGT; E.L.; SOARES; L.S.P.; VIÉGAS; R.A. Changes in physiological indicators associated with salt tolerance in two contrasting cashew rootstocks. Revista Brasileira de Fisiologia Vegetal; v.20; p.51-59; 2008. FIGUEIRÊDO; A. F. R. Análise do risco de salinização dos solos da Bacia hidrográfica do Rio Colônia – Sul da Bahia. Universidade Estadual de Santa Cruz; Ilhéus; BA; 2005. 84p. Dissertação de Mestrado. FLANDRIN; J. L.; MONTANARI; M. (Dir.). História da alimentação. São Paulo: Estação Liberdade; 1998. FOLLI-PEREIRA; M. S.; MEIRA-HADDAD; L. S’.A.; BAZZOLLI; D. M. S.; KASUYA; M. C. M. Micorriza Arbuscular e a tolerância das plantas ao estresse. R. Bras. Ci. Solo; 36: 1663-1679; 2012. FONTANA; A. Caracterização Química e Espectroscópica da Matéria Orgânica em Solos do Brasil. Dissertação submetida como requisito parcial para obtenção do grau de Mestre em 112 Ciências; no Curso de Pós-Graduação em Agronomia; Área de Concentração em Ciência do Solo; p. 60; 2006. FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION - FAO. International year of rice. 2004. Disponível em: http://www.fao.org/rice2004/en/rice-us.htm Fortunel C; Fine PVA; Baraloto C; et al. (2012) Leaf; stem and root tissue strategies across 758 Neotropical tree species. Funct Ecol 5:1153–61. GAMA-RODRIGUES; E. F.; GAMA-RODRIGUES; A. C. Biomassa microbiana e ciclagem de nutrientes. In: SANTOS; G. A.; SILVA; L. S.; CANELLAS; L.P.; CAMARGO; F. A. O. Fundamentos da matéria orgânica do solo: ecossistemas tropicais e subtropicais. 2. ed. Porto Alegre: Metropole; 2008. p. 159-170. GARCÍA, A. C.; SANTOS, L. A.; IZQUIERDO, F. G.; SPERANDIO, M. V. L.; CASTRO, R. N.; BERBARA, R. L. L. Vermicompost humic acids as an ecological pathway to protect rice plant against oxidative stress. Ecological Engineering, v. 47, p. 203–208, 2012b. GARCÍA, A.; BERBARA, R.; FARÍAS, L.; IZQUIERDO, F.; HERNÁNDEZ, O.; CAMPOS, R.; CASTRO, R. Humic acids of vermicompost as an ecological pathway to increase resistance of rice seedlings to water stress. African Journal of Biotechnology, v. 11, n. 13, p. 3125–3134, 2012a. GARCIA, A.; SANTOS, L. A.; IZQUIERDO, F. G.; RUMJANEK, V. M.; CASTRO, R. N.; DOS SANTOS, F. S.; DE SOUZA, L. G. A.; BERBARA, R. L. L. Potentialities of vermicompost humic acids to alleviate water stress in rice plants (Oryza sativa L.). Journal of Geochemical Exploration, v. 136, p. 48–54, 2014. GARCÍA; A. C.; SANTOS; L. A.; SOUZA; L. G. A.; TAVARES; O. C. H.; GOMES; E. T. M.; GARCÍA-MINA; J. M.; BERBARA; R. L. L. Vermicompost humic acids modulate the accumulation and metabolism of ROS in rice plants. J. Plant Physiol. 192:56-63; 2016b. GARCÍA; A. C.; SOUZA; L. G.; PEREIRA; M. G.; CASTRO; R. N.; GARCÍA-MINA; J. M.; ZONTA; E.; LISBOA; F. J.; BERBARA; R. L. L. Structure-property-function relationshipin humic substances to explain the biological activity in plants. Sci Rep. 6(1):20798; 2016a. GARCÍA; A. C.; TAVARES; O. C. H.; BALMORI; D. M.; SANTOS ALMEIDA; V.; CANELLAS; L. P.; GARCÍA-MINA; J.; BERBARA; R. L. L. Struture-function relationship of vermicompost humic fractions for use in agriculture. J. Soils Sediments. 18(4):1209-11; 2018. GARCÍA; A.C.; QUINTERO; P.; JAVIER; J.; BALMORI; M.; LÓPEZ; H.; IZQUIERDO; G. Effects of a humic liquid extract obtained from vermicompost on growing and yield corn. Revista Ciencias Técnicas Agropecuarias; v. 25; n. 1; p. 38–43; 2016c. GARCIA-GARRIDO; J.M. & OCAMPO; J.A. Regulation of the plant defence response in arbuscular mycorrhizal symbiosis. J. Exper. Bot.; 53:1377-1386; 2002. 113 GARCÍA-MINA; J. M.; ANTOLÍN; M. C.; SANCHEZ-DIAZ; M. Metal-humic complexes and plant micronutrient uptake: A study based on different plant species cultivated in diverse soil types. Plant and Soil; v. 258; n. 1-2; p. 57–68; 2004. GASPARETTO; E. C.; BRAIDA; J. A.; CARNEIRO; M.; SCARIOT; J. J.; TABOLKA; C. L. Grau de Floculação da Argila de um Latossolo Vermelho uitilizado com Lavoura e Mata Nativa. Synergismus Scyentifica; v.04; n.1; 2009. GIOVANNETTI, M.; MOSSE, B. An evaluation of techniques to measure vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in roots. The New Phytologist, v.84, n.3, p.484-500, 1980. GIRI; B.; KAPOOR; R. & MUKERJI; K.G. Improved tolerance of Acacia nilotica to salt stress by arbuscular mycorrhiza; Glomus fasciculatum may be partly related to elevated K/Na ratios in root and shoot tissues. Microbial Ecol.; 54:753-760; 2007. GLOAGUEN; T. V.; PEREIRA; F. A. C.; GONÇALVES; R. A. B.; PAZ; V. S. Composição Química da Solução do Solo nas Diferentes Classes de Poro do Solo. Revista Brasileira de Ciência do Solo; v.33; p.1105-1113; 2009. Gould, S.B. et al. (2008) Plastid evolution. Annu. Rev. Plant Biol. 59, 491–517 Gonçalves, J. F.C., Silva, C. E. M., & Guimarães, D. G. (2009). Fotossíntese e potencial hídrico foliar de plantas jovens de andiroba submetidas à deficiência hídrica e à reidratação. Pesquisa agropecuária brasileira, 44(1), 8-14. GONDIN; R.S.; EVANGELISTA; R. S M.; MAIA; A. H. N. & DUARTE; A. S. 2017. Climate change impacts on water demand of melon plants in Jaguaribe-Apodi Region; Brazil. Jornal of Brazilian Association of Agricultural Engineer; 37(3): 591 – 602. Gosling P; Hodge A; Goodlass G; et al. (2006) Arbuscular mycorrhizal fungi and organic farming. Agric Ecosyst Environ 1–4:17–35. Gowda; V.R.P.; A. Henry; A. Yamauchi; H.E. Shashidhar and R. Serraj; 2011. Root biology and genetic improvement for drought avoidance in rice. Field Crops Res.; 122: 1‒13 Green, B.R. Chloroplast genomes of photosynthetic eukaryotes. Plant J. 66, 34–44; 2011. GRYNDLER; M.; HRŠELOVÁ; H.; SUDOVÁ; R.; GRYNDLEROVÁ; H.; ŘEZÁČOVÁ; V.; MERHAUTOVÁ; V. Hyphal growth and mycorrhiza formation by the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus claroideum BEG 23 is stimulated by humic substances. Mycorrhiza; v. 15; n. 7; p. 483–488; 14 Nov. 2005. Gu; D.; F. Zhen; D.B. Hannaway; Y. Zhu; L. Liu; W. Cao and L. Tang; 2017. Quantitative classification of rice (Oryza sativa L.) root length and diameter using image analysis. PloS One; 12: e0169968 GUMINSKI; S. Present-day views on physiological effects induced in plant organisms by humic compounds. Soviet Soil Science-USSR. 9:1250; 1968. 114 HABTE, M.; FOX, R.L.; HUANG, R.S. Determining vesicular-arbuscular mycorrhizal effectiveness by monitoring P status of subleaflets of an indicator plant. Communications in Soil Science and Plant Analysis, New York, v. 18, n.12, p.1403-1420, Dec. 1987. HABTE, M. Usefulness of the pinnule techinique in mycorrhizal research. In: NORRIS, J. R.; READ, D. J.; VARMA, A.K. (eds) Methods in microbiology. Volume 24 techniques for the study of mycorrhiza. San Diego: Academic Press, 17:323-338, 1992.433p. HAGER; A. Role of the plasma membrane H+ -ATPase in auxin-induced elongation growth: historical and new aspects. J. Plant. Res.; 116: 483-505; 2003. HAJIBOLAND; R.; ALIASGHARZADEH; A.; LAIEGH; S.F. & POSCHENRIEDER; C. Colonization with arbuscular mycorrhizal fungi improve salinity tolerance of tomato (Solanum lycopersicum L.) plants. Plant Soil; 331:313327; 2010. HASEGAWA; P.M.; BRESSAN; R.A.; ZHU; J.K. & BOHNERT; H.J. Plant cellular and molecular responses to high salinity. Ann. Rev. Plant Physiol.; 51:463-499; 2000. HASEGAWA; P.M.; BRESSNAN; R.A.; ZHU; J.-K.; BOHNERT; H.J.: Plant cellular and molecular responses to high salinity. - Annu. Rev. Plant Physiol. Plant mol. Biol. 51: 463-499; 2000. HAYES; M.H.B. Emerging concepts of the compositions and structure of humic substances. In: Hayes; M.H.B.; Wilson; W.S. (Eds.); Humic Substances in Soils. 1997. He; X.J.; R.L. Mu; W.H. Cao; Z.G. Zhang; J.S. Zhang and S.Y. Chen; 2005. AtNAC2; a transcription factor downstream of ethylene and auxin signaling pathways; is involved in salt stress response and lateral root development. Plant J.; 44: 903‒916 HE; Z.; HE; C.; ZHANG; Z.; ZOU; Z. & WANG; H. Changes of antioxidative enzymes and cell membrane osmosis in tomato colonized by arbuscular mycorrhizae under NaCl stress. Colloid. Surface. B.; 59:128-133; 2007. HERNANDEZ; O. L.; HUELVA; R.; GURIDI; F.; OLIVARES; F. L.; CANELLAS; L. P. Humatos isolados de vermicomposto como promotores de crescimento em cultivo orgânico de alface. Revista Ciencias Técnicas Agropecuarias; v. 22; n. 1; p. 70–75; 2013 HERNANDO; V.; ORTEGA; B. C.; FORTUN; C. Study of the action of two types of humic acido n the maize plant. Oxford: Pergamon Press; 1977. (Soil Organic Matter Studies; n°2). HINCHA; D.K. & HAGEMANN; M. Stabilization of model membranes during drying by compatible solutes involved in the stress tolerance of plants and microorganisms. Biochem. J.; 383:277-283; 2004. HOLANDA; J. S. et al. Qualidade da água para irrigação. In: GHEY; H. R. et al. Manejo da salinidade na agricultura: estudos básicos e aplicados. 2a ed. Fortaleza: INCTSal; 2016. 504 p. JAHROMI; F.; AROCA; R.; PORCEL; R. & RUIZ-LOZANO; J.M. Influence of salinity on the in vitro development of Glomus intraradices and on the in vivo physiological and molecular responses of mycorrhizal lettuce plants. Microbial Ecol.; 55:45-53; 2008. 115 JANMOHAMMADI; M.; ABBASI; A; SABAGHNIA; N. Influence of NaCl treatments on growth and biochemical parameters of castor bean (Ricinus communis L.).Acta Agriculturae Slovenica; v 99; p. 31-40; 2012. JANNIN, L., ARKOUN, M., OURRY, A., LAÎNÉ, P., GOUX, D., GARNICA, M., FUENTES, M., SAN FRANCISCO, S., BAIGORRI, R., CRUZ, F., HOUDUSSE, F., GARCIA-MINA, J.M., YVIN, J.C.; ETIENNE, P.: “Microarray analysis of humic acid effects on Brassica napus growth: involvement of N, C and S metabolisms”. Plant Soil, p. 297–319, 2012. JANSA; J.; MOZAFAR; A.; KUHN; G.; ANKEN; T.; RUH; R.; SANDERS; I. R.; FROSSARD; E. Soil tillage affects the community structure of mycorrhizal fungi in maize roots.Ecological Applications; v. 13; n. 4; p. 1164–1176; 2003. JOHNSON; N.C.; GRAHAM; J.H. & SMITH; F.A. Functioning of mycorrhizal associations along the mutualism– parasitism continuum. New Phytol.; 135:575-585; 1997. JULIANO; B. O. Rice in human nutrition. Rome. FAO; 1993. Disponível em: http://www.fao.org/docrep/t0567e/T05 . Acesso em: 29 mai. 2015.67E00.htm#Contents. Acesso em: 12/11/2019. Julkowska; M.M.; H.C.J. Hoefsloot; S. Mol; R. Feron; G.J. de Boer; M.A. Haring and C. Testerink; 2014. Capturing arabidopsis root architecture dynamics with root-fit reveals diversity in responses to salinity. Plant Physiol.; 166: 1387‒1402 JUNIPER; S. & ABBOTT; L.K. Soil salinity delays germination and limits growth of hyphae from propagules of arbuscular mycorrhizal fungi. Mycorrhiza; 16:371-379; 2006. KAFKAS; S. & ORTAS; I. Various mycorrhizal fungi enhance dry weights; P and Zn uptake of four Pistacia species. J. Plant Nutr.; 32:146-159; 2009. Kahiluoto H; Ketoja E; Vestberg M (2000) Promotion of utilization of arbuscular mycorrhiza through reduced P fertilization 1. Bioassays in a growth chamber. Plant Soil 1–2:191–206. Kawada; S.; 1984. Root System of Rice. Agriculture Press; Beijing; China KISHOR; P.B.; HONG; Z.; MIAO; G.H.; HU; C.A. & VERMA; D.P.S. Over expression OF D1-pyrroline-5-carboxilate synthetase increases proline production and confers osmotolerance in transgenic plants. Plant Physiol.; 108:1387-94; 1995. Kleczewski NM; Herms DA; Bonello P (2010) Effects of soil type; fertilization and drought on carbon allocation to root growth and partitioning between secondary metabolism and ectomycorrhizae of Betula papyrifera. Tree Physiol 7:807–17. KONONOVA; M. M. Soil organic matter. Its nature; its role in soil formation and in soil fertility. Oxford: Pergamon; 544. 32. 1966. Krishnamurthy; P.; R. Kosala; N. Shraddha; S. Lukas and M.K. Mathew; 2011. Root apoplastic barriers block Na+ transport to shoots in rice (Oryza sativa L.) J. Exp. Bot.; 62: 4215‒4228 LABRADOR; J. Avances en el conocimiento de la dinámica de la Materia Orgánica dentro de un contexto agroecológico. Agroecologia; v.7; p.91-108; 2012. 116 LACERDA; N.B. & OLIVEIRA; S.T. 2007. Agricultura irrigada e a qualidade de vida dos agricultores em perímetros do Estado do Ceará; Brasil. Revista Ciência Agronômica; 38(2): 216 – 223. LAMBAIS; M.R.; RÍOS-RUIZ; W.F. & ANDRADE; R.M. Antioxidant responses in bean (Phaseolus vulgaris) roots colonized by arbuscular mycorrhizal fungi. New Phytol.; 160:421-428; 2003. LARCHER; W. Ecofisiologia vegetal. São Carlos; SP: RIMa; 2004; p. 531. LAUCHI; A.; EPSTEIN; E. Mechanisms of salt tolerance in plants. California Agriculture; v.38; n.10; p.18-21; 1984. Li H; Ye ZH; Chan WF; et al. (2011) Can arbuscular mycorrhizal fungi improve grain yield; As uptake and tolerance of rice grown under aerobic conditions? Environ Pollut 10:2537–45. LIMA; L. W. Metabolismo do Nitrogênio e Atividade de Bombas de Prótons em Raízes Transgênicas com Ácido Húmico e Simbiose Micorrízica Arbuscular. Tese submetida como requisito parcial para obtenção do grau de Doutor em Ciências; no Curso de Pós-Graduação em Agronomia; Área de Concentração em Ciência do Solo. p. 153; 2008. LÓPEZ-BUCIO, J; CRUZ-RAMÍREZ, A; HERRERA-ESTRELLA, L. (2003) The role of nutrient availability in regulating root architecture. Curr Opin Plant Biol 3:280–7 LUGAY J; JULIANO B. Fatty acid composition of rice lipids by Gas-liquid Chromatography. J Am Oil Chem Soc 41(4):273–275; 1964. Maier, U.G. et al. Complex chloroplast RNA metabolism: just debugging the genetic programme? BMC Biol. 6, 9; 2008. MALCOLM; R. L.; BLOOM; P. R. (Eds.) Humic substances in soil and crop sciences: selected readings. American Society of Agronomy/Soil Science Society of America; Madison/Wisconsin; p.161-186; 1990. MARSCHNER; H. Mineral Nutrition of Higher Plants. London: Academic Press. 1995. Em: LIMA; L.W. Metabolismo do Nitrogênio e Atividade de Bombas de Prótons em Raízes Transgênicas com Ácido Húmico e Simbiose Micorrízica Arbuscular. Tese submetida como requisito parcial para obtenção do grau de Doutor em Ciências; no Curso de Pós-Graduação em Agronomia; Área de Concentração em Ciência do Solo. p. 153; 2008. Martin, W. et al. (2002) Evolutionary analysis of Arabidopsis, cyanobacterial, and chloroplast genomes reveals plastid phylogeny and thousands of cyanobacterial genes in the nucleus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 12246–12251 MATAMOROS; M.A.; DALTON; D.A.; RAMOS; J.; CLEMENTE; M.R.; RUBIO; M.C. & BACANA; M. Biochemistry and molecular biology of antioxidants in the rhizobia-legume symbiosis. Plant Physiol.; 133:499-509; 2006. McConnaughay KDM; Coleman JS (1999) Biomass allocation in plants: ontogeny or optimality? A test along three resource gradients. Ecology 8:2581–93. 117 MEDEIROS; J. F.; LISBOA; R. A.; OLIVEIRA; M.; SILVA JÚNIOR; M. J.; ALVES; L. P. Caracterização das águas subterrâneas usadas para irrigação na área produtora de melão da Chapada do Apodi. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental; v.7; n.3; p.469-472; 2003. MEHTA P; ALLAKHVERDIEV S; JAJOO A (2010) Characterization of photosystem II heterogeneity in response to high salt stress in wheat leaves (Triticum aestivum). Photosynth Res 105:249–255 MELLONI; R; SILVA; F. A. M.; CARVALHO; J. G. Cálcio; magnésio e potássio como amenizadores dos efeitos da salinidade sobre a nutrição mineral e o crescimento de mudas de aroeira (Myracrodruon urundeuva). Cerne; v. 6; n. 2; p. 35-40. 2000. MICHELON; C. J. Qualidade física de solos irrigados do Rio Grande do Sul e do Brasil Central. Universidade Federal de Santa Maria; Santa Maria; 2005. 92p. Dissertação de Mestrado. MIRANDA; J. R. P.; et al. Silício e cloreto de sódio na nutrição mineral e produção de matéria seca de plantas de Moringa (Moringa oleifera Lam.). Revista Brasileira de Ciência do Solo; v. 26; p. 957-965. 2002. MØLLER IM; JENSEN PE; HANSSON A (2007) Oxidative Modifications to Cellular Components in Plants. Annu Rev Plant Biol 58:459–481 MORAIS; D.L.; VIÉGAS; R.A.; SILVA; L.M.M.; LIMA JR; A.R.; COSTA; R.C.L.; ROCHA; I.M.A.; SILVEIRA; J.A.G. acumulação de íons e metabolismo de N em cajueiro anão em meio salino. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental; v.11; n.2; p.125-133; 2007. MOREIRA, F. M. S.; SIQUEIRA, J. O. Rizosfera. In: MOREIRA, F.M.S; SIQUEIRA, J.O. Microbiologia e Bioquímica do Solo. 2ª ed., Lavras: Editora UFLA, p. 449-542, 2006. MOREIRA; F.M.S.; SIQUEIRA; J.O. Microbiologia e bioquímica do solo. 2. ed. Lavras: Editora UFLA; 2006. MORSOMME; P. & BOUTRY; M. The plant plasma membrane H+ -ATPase: structure; function and regulation (Review). Biochim. Biophys.; 1465: 1-16; 2000. MUNKVOLD; L.; KJOLLER; R.; VESTBERG; M.; ROSENDAHL; S. & JAKOBSEN; I. High functional diversity within species of arbuscular mycorrhizal fungi. New Phytol.; 164:357-364; 2004. MUNNS; R. Comparative physiology of salt and water stress. Plant Cell Environment; v.25; p.239–250; 2002. MUNNS; R. Comparative physiology of salt and water stress. Plant; Cell and Environment; v. 25; p. 239-250; 2002. MUNNS; R.: Physiological processes limiting plant growth in saline soils: some dogmas and hypotheses. - Plant Cell Environ. 16: 15-24; 1993. 118 MUNNS; R.; JAMES; R.A.; LÄUCHLI; A. Approaches to increasing the salt tolerance of wheat and other cereals. Journal of Experimental Botany; n.57; p.1025-1043; 2006. MUNNS; R.; TESTER; M. Mechanisms of salinity tolerance. Annu. Rev. Plant. Biol.; n.59; p.651–681; 2008. MURPHY, J.; RILEY, J.P. A modified single solution method for the determination of phosphate in natural waters. Analytica Chimica Acta, Amsterdam, v. 27, p.31-36, 1962. MUSCOLO; A.; SIDARI; M.; NARDI; S. Humic substance: Relationship between structure and activity. deeper information suggests univocal findings.Journal of Geochemical Exploration; v. 129; p. 57–63; 2013. NABIL; M.; COUDERT; A. Effects of sodium chloride on growth; tissue elasticity and solute adjustment in two Acacia nilotica subspecies. Physiology Plantarum; v.93; p.217-224; 1995. NANNIPIERI P; MUCCINI L & CIARDI C (1983) Microbial biomass and enzyme activities: production and persistence. Soil Biology and Biochemistry; 15:679-685. NARDI S; PIZZEGHELLO D; MUSCOLO A & VIANELLO A (2002) Physiological effects of humic substances on higher plants. Soil Biology and Biochemistry; 34:1527-1536. NASCIMENTO; J. A. M. et. al. Efeito da utilização de biofertilizante bovino na produção de mudas de pimentão irrigadas com água salina. Revista Brasileira Ciências Agrárias; v. 6; n. 2; p. 258-264; 2011. NEWMAN, E.J. A method of estimating the total lenght of root sample. Jornal of Applied Ecology, v.3, p.139-145, 1966. NOBRE, C. P. Fungos Micorrízicos Arbusculares em Briófitas e Raízes Modificadas de Manjericão (Ocimum basilicum L.) in vitro. Dissertação submetida como requisito parcial para obtenção do grau de Mestre em Ciências, no Curso de Pós-Graduação em Agronomia, Área de Concentração em Ciência do Solo. p. 153, 2011. NOBRE, C. P.; HUERTAS, O. C. T.; TARDIN, J. R. F.; JÚNIOR, O. J. S.; FONSECA, H. M. A. C.; BERBARA, R. L. L. Biostimulation of inoculation with Glomus proliferum and application of humic acid in the in vitro growth of Lunularia cruciata. Acta Botanica Brasilica, v. 27, n. 4, p. 773–778, 2013. NOBRE; C. P.; HUERTAS; O. C. T.; TARDIN; J. R. F.; JÚNIOR; O. J. S.; FONSECA; H. M. A. C.; BERBARA; R. L. L. Biostimulation of inoculation with Glomus proliferum and application of humic acid in the in vitro growth of Lunularia cruciata. Acta Botanica Brasilica; v. 27; n. 4; p. 773–778; 2013. NOSSE; T. O.; AQUINO; S. S.; CAZETTA; D. A.; ARF; ORIVALDO; CASSIOLATO; A. M. R. Restos vegetais e adubação nitrogenada na micorrização e produtividade do arroz de terras altas em sistema plantio direto. Acta Sci. Agron.; v. 30; n. 4; p. 547-553; 2008. OKADA K; IKEUCHI M; YAMAMOTO N; ONO T; MIYAO M (1996) Selective and specific cleavage of the D1 and D2 proteins of photosystem II by exposure to singlet oxygen: factors responsible for the cleavage of proteins. BBA 1274:73–79 119 OLIVEIRA; J.A. & LANNA; A.E.L. 1997. Otimização de um sistema de múltiplo reservatórios atendendo a múltiplos usos no Nordeste brasileiro. Revista Brasileira de Recursos Hídricos; 2(2): 123-141. OLIVEIRA; M. K. T. et. al. Efeito de diferentes teores de esterco bovino e níveis de salinidade no crescimento inicial da mamoneira (Ricinus communis). Revista Verde de Agroecologia e Agricultura Sustentável; v. 1; n. 1; p. 68-74; 2006. OUESLATI; S.; KARRAY-BOURAOUI; N.; ATIA; H.; RABHI; M.; KSOURI; R.; LACHASAL; M. Physiological and antioxidant responses of Mentha pulegium (Pennyroyal) to salt stress. Acta Physiol Plant; v.32; p.289-296; 2010. PEREIRA; J. A. Cultura do arroz no Brasil: subsídios para a sua história. Teresina: Embrapa Meio-Norte; 2002. PEREIRA; J. A.; MORAIS; O. P. de; CASTRO; E. da M. de. Melhoramento genético do arroz de sequeiro no Nordeste do Brasil. In: QUEIRÓZ; M. A. de; GOEDERT; C. O.; RAMOS; S. R. R. (Ed.). Recursos genéticos e melhoramento de plantas para o nordeste brasileiro. Petrolina; PE: Embrapa Semiárido; Brasília; DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia; 1999. PICCOLO; A. Differences in high performance size exclusion chromatography between humic substances and macromolecular polymers. In: GHABBOUR; E. A.; DAVIES; G. (Eds.) Humic substances versatile componentes of plants; soil and water; Royal Society of Chemistry; Cornwall; p.1-124; 2000. PINHEIRO; H.A.; SILVA; J.V.; ENDRES; L.; FERREIRA; V.M.; CÂMARA; C.A.; CABRAL; F.F.; OLIVEIRA; J.F.; CARVALHO; L.W. T.; SANTOS; J.M.; FILHO; B. G. Leaf gas exchange; chloroplastic pigments and dry matter accumulation in castor bean (Ricinus communis L.) seedlings subjected to salt stress conditions. Industrial Crops and Products; v.27; p.385-392; 2008. PINOS; N. Q.; BERBARA; R. L. L.; ELIAS; S. S.; VAN TOL DE CASTRO; T. A.; GARCÍA; A. C. Combination of Humic Substances and Arbuscular Mycorrhizal Fungi Affecting Corn Plant Growth. Journal of Environmental Quality; 2019. PINOS; N. R. Q. Influência das substâncias húmicas de três origens diferentes nos parâmetros morfológicos e bioquímicos da cultura de milho e na colonização micorrízica. Tese (Doutorado em Ciência do Solo). Instituto de Agronomia; Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Seropédica; 2018. PONTES; A.G.V.; GADELHA; D.; FREITAS; B.M.C.; RIGOTTO; R.M. & FERREIRA; M.J.M. 2003. Os perímetros irrigados como estratégia geopolítica para o desenvolvimento do semiárido e suas implicações à saúde; ao trabalho e ao ambiente. Ciênc. Saúde Coletiva; 18(11): 3213-3222. Poorter H; Nagel O (2000) The role of biomass allocation in the growth response of plants to different levels of light; CO2; nutrients and water: a quantitative review. Funct Plant Biol 6:595. Poorter H; Niklas KJ; Reich PB; et al. (2012) Biomass allocation to leaves; stems and roots: meta-analyses of interspecific variation and environmental control. New Phytol 1:30–50. 120 PUPIN; B. Propriedades Microbiológicas do Solo Alteradas por Compactação. Universidade Estadual Paulista; Jaboticabal; 2008. 61p. Dissertação de Mestrado. Purakayastha TJ; Chhonkar PK (2001) Influence of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi (Glomus etunicatum L.) on mobilization of zinc in wetland rice (Oryza sativa L.). Biol Fertil Soils 4:323–7. RABIE; G.H. & ALMADINI; A.M.Role of bioinoculants in development of salt-tolerance of Vicia faba plants. Afr. J. Biotechnol.; 4:210-222; 2005. Raven, J.A. and Allen, J.F. (2003) Genomics and chloroplast evolution: what did cyanobacteria do for plants? Genome Biol. 4, 209 REBOUÇAS; A.D.C. 1997. Água na região Nordeste: desperdício e escassez. Estudos Avançados. 11(29):127 – 154. Reynolds HL; D’Antonio C (1996) The ecological significance of plasticity in root weight ratio in response to nitrogen: opinion. Plant Soil 1:75–97. RHOADES; J. D.; KANDIAH; A.; MASHALI; A. M. Uso de águas salinas para produção agrícola. Campina Grande: UFPB; 2000. 117p. Estudos FAO Irrigação e Drenagem; 48. RIBEIRO; M. R. Manejo da Salinidade na Agricultura: Estudos Básicos e Aplicados. Fortaleza: Origem e classificação dos solos afetados por sais; 2010. Robin; A.H.K. and P.S. Saha; 2015. Morphology of lateral roots of twelve rice cultivars of Bangladesh: dimension increase and diameter reduction in progressive root branching at the vegetative stage. Plant Root; 9: 34‒42 ROCHA JC & ROSA AH (2003) Substâncias húmicas aquáticas: interações com espécies metálicas. São Paulo; UNESP. 120p. RODRÍGUEZ; E. S. et al. Genotypic differences in some physiological parameters symptomatic for oxidative stress under moderate drought in tomato plants. Plant Science; v. 178; n. 1; p. 30-40; 2010. DOI: 10.1016/j. plantsci.2009.10.001 Rogers; E.D.; D. Monaenkova; M. Mijar; A. Nori; D.I. Goldman and P.N. Benfey; 2016. X-ray computed tomography reveals the response of root system architecture to soil texture. Plant Physiol.; 171: 2028‒ 2040 ROSA; A. H.; ROCHA; J. C. Substâncias húmicas de turfa: estudo dos parâmetros que influenciam no processo de extração alcalina. Química Nova; v. 23(4); p.472-476; 2003. Rujan, T. and Martin, W. (2001) How many genes in Arabidopsis come from cyanobacteria? An estimate from 386 protein phylogenies. Trends Genet. 17, 113–120 SANCHEZ; E. Propriedades físicas do solo e Produtividade de soja em sucessão a Plantas de cobertura de inverno. Universidade Estadual do Centro-Oeste; Guarapuava; 2012. 48p. Dissertação de Mestrado. SANTANA; M. J.; CARVALHO; J. A.; SOUZA; K. J.; SOUSA; A. M. G.; VASCONCELOS; C. L.; ANDRADE; L. A. B. Efeitos da salinidade da água de irrigação na brotação e 121 desenvolvimento inicial da cana-de-açúcar (Saccharum spp) e em solos com diferentes níveis texturais. Ciência Agrotecnica; v.31; n.5; p. 1470-1476; set./out.; 2007. SANTANA; N. M. P. DE; SILVA; S. C. DA; STONE; L. F. Analogia de riscos climáticos para a cultura do arroz de terras altas em dois sistemas de cultivo no Estado de Goiás. In: BALBINO; L. C.; VIEIRA; E. H. N. (Ed.) Documentos 167; Anais 1ª Semana de Iniciação Científica da Embrapa Arroz e Feijão e XII Semana de Iniciação Científica da Universidade Federal de Goiás – UFG. 2004. SANTOS; A. A. do E.; LIMA; J.S.; CARVALHO; G.C. de. Técnicas de aplicação de composto orgânico; proveniente de resíduos urbanos domésticos; no desenvolvimento vegetal. VI Simpósio Ítalo Brasileiro de Engenharia Sanitária e Ambiental 2002. SANTOS; E. E. F.; RIBEIRO; M. R. Influência da irrigação e do cultivo nas propriedades químicas de solos da região do submédio São Francisco. Acta Scientiarum; v.24; n.5; p.1507-1516; 2002. Schachtman; D.; Liu; W.: Molecular pieces to the puzzle of the interaction between potassium and sodium uptake in plants. - Trends Plant Sci. 4: 281-287; 1999. Schmid B; Weiner J (1993) Plastic relationships between reproductive and vegetative mass in Solidago altissima. Evolution 1:61–74. Schmitz-Linneweber, C. et al. The plastid chromosome of spinach (Spinacia oleracea): complete nucleotide sequence and gene organization. Plant Mol. Biol. 45, 307–315; 2001. SCHNITZER; M. Humic substances: chemistry and reactions. In: SCHNITZER; M. and HAN; S. U. Soil organic matter. Elsevier; 1978. SENESI; N.; LOFFREDO; E. The chemistry of soil organic matter. In: SPARKS; D.L. (Ed.) Soil physical chemistry; 2a ed. 409p. 1998. Em: FONTANA; 2009. Shabala; S.; L. Shabala and E. Van Volkenburgh; 2003. Effect of calcium on root development and root ion fluxes in salinized barley seedlings. Funct. Plant Biol.; 30: 507‒514 Shahzad; A.; M. Ahmad; M. Iqbal; I. Ahmed and G. Ali; 2012. Evaluation of wheat landrace genotypes for salinity tolerance at vegetative stage by using morphological and molecular markers. Gene. Mol. Res.; 11: 679‒692. Sharma, M.R. et al. Cryo-EM study of the spinach chloroplast ribosome reveals the structural and functional roles of plastid-specific ribosomal proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 19315–19320; 2007. SHENG; M.; TANG; M.; CHEN; H.; YANG; B.; ZHANG; F. & HUANG; Y. Influence of arbuscular mycorrhizae on photosynthesis and water status of maize plants under salt stress. Mycorrhiza; 18:287-296; 2008. Shipley B; Meziane D (2002) The balanced-growth hypothesis and the allometry of leaf and root biomass allocation. Funct Ecol 3:326–31. 122 SIEVERDING; E.; SAIF; S.R. VA mycorrhiza management: a new; low cost; biological technology for crop and pasture production on infertile soils. Palmira; Valle del Cauca: CIAT; 1984. (CIAT Annual Review; Série Discussion paper). SILVA; A.C.; HORÁK; I.; VIDAL-TORRADO; P.; CORTIZAS; A.M.; RACEDO; J.R.; CAMPOS; J.R DA R. Turfeiras da serra do espinhaço meridional - MG. II - Influência da drenagem na composição elementar e Substânciassubstâncias húmicas. Revista Brasileira de Ciência do Solo; v. 33; n. 5; p. 1399–1408; 2009. SILVA; B. C. G.; MACIEL; L. N. Q.; ARAÚJO; M. S. B. Limitações ao Cultivo em Áreas Irrigadas de Belém de São Francisco; Estado de Pernambuco; Brasil. Acta Scientiarum Agronomy; v.27; n.2; p.343-347; 2005. SILVA; E. N.; RIBEIRO; R. V.; FERREIRA SILVA; S. L.; VIÉGAS; R. A.; SILVEIRA; J. A. G. Comparative effects of salinity and water stress on photosynthesis; water relations and growth of Jatropha curcas plants. Journal of Arid Environments; v. 74; n. 10; p. 1130-1137; 2010. DOI: 10.1016/j.jaridenv.2010.05.036 SILVA; E.N.; SILVEIRA; J.A.G.; RODRIGUES; C.R.F.; LIMA; C.S.; VIÉGAS; R.A. Contribuição de solutos inorgânicos no ajustamento osmótico de pinhão-manso submetido à salinidade. Pesquisa Agropecuária Brasileira; v.44; n.5; p.437-445; 2009. SILVA; F. A. M.; MELLONI; R.; MIRANDA; J. R. P.; CARVALHO; J. G. Efeito do estresse salino sobre a nutrição mineral e o crescimento de mudas de aroeira (Myracrodruon urundeuva) cultivadas em solução nutritiva. Revista Cerne; v. 6; n. 1; p. 52-59; 2000. SILVA; M. S. L.; CHAVES; V. C.; CAVALCANTI; A. C.; OLIVEIRA NETO; M. B. Adensamento e compactação de solos irrigáveis da zona semi-árida do Nordeste brasileiro. Publicação Embrapa Solos UEP Nordeste; 2007. Sims L; Pastor J; Lee T; et al. (2012) Nitrogen; phosphorus and light effects on growth and allocation of biomass and nutrients in wild rice. Oecologia 1:65–76. SINGH D; SARKAR R (2014) Distinction and characterisation of salinity tolerant and sensitive rice cultivars as probed by the chlorophyll fluorescence characteristics and growth parameters. Funct Plant Biol 41:727–736 SIQUEIRA; J.O.; LAMBAIS; M.R. & STURMER; S.L. Fungos micorrízicos arbusculares: características; associação simbiótica e aplicação na agricultura. Biotecnol. Ci. Desenv.; v.25; p.12-21; 2002. SMITH, S.E., READ, D.J. Mycorrhizal Symbiosis. Califórnia: Academic Press; 3 edition. 800p. 2008. SMITH; S.E. & READ; D.J. Mycorrhizal symbiosis. 3.ed. London; Academic Press; 2008. 785p. SMITH; S.E.; READ; D.J. Mycorrhizal Symbiosis. Califórnia: Academic Press; 3 edition. 800p. 2008. 123 SMITH; S.E.; SMITH; F.A. & JAKOBSEN; I. Functional diversity in arbuscular mycorrhizal (AM) symbioses: the contribution of the mycorrhizal P uptake pathway is not correlated with mycorrhizal responses in growth and total P uptake. New Phytol.; 162:511-524; 2004. Soll, J. and Schleiff, E. Protein import into chloroplasts. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 5, 198–208; 2004. SOLOMON; D.; LEHMANN; J.; KINYANGI; J.; LIANG; B.; SCHÄFER; T. Carbon K-edge NEXAFS and FTIR-ATR Spectroscopic Investigation of Organic Carbon Speciation in Soils. Soil Sci. Soc. Am. J. v.69; p.107–119. 2005. SOUSA, A. B. O.; et al. Germinação e desenvolvimento inicial de clones de cajueiro comum sob irrigação com água salina. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental; v.15; n.4; p.390-394; 2011. SOUSA, C.P. Ação de herbicidas sobre a atividade fotossintética de plantas com metabolismo C3 e C4. Tese. Universidade Federal de Pelotas; Pelotas; 122p. 2012. STEPIEN; P.; KLOBUS; G. Water relations and photosynthesis in Cucumis sativus L. leaves under salt stress. Rev. Biologia Plantarum. 50(4): 610-616; 2006. STEVENSON; F. J. Organic forms of soil nitrogen. In: John Wiley; ed. Humic Chemestry: Genesis; Composition; and Reaction. New York. p 59-95. 1994. STEVENSON; F. J. Organic forms of soil nitrogen. In: John Wiley; ed. Humic Chemestry: Genesis; Composition; and Reaction. New York. p 59-95. 1994. STEVENSON; F.J.; Geochemistry of Soil Humic Substances. In: (Eds AIKEN; G.R.; MCKNIGHT; D.M.; WERSHAW; R.L.) Humic Substances in Soil; Sediment and water; Wiley & Sons New York. p.13.1985. Strasser, R.J.The grouping model of plant photosynthesis. In: Akoyunoglou G (ed) Chloroplast development. Elsevier, Dordrecht, pp 513–524, 1978. Strasser, R.J. The grouping model of plant photosynthesis: heterogeneity of photosynthetic units in thylakoids. In: Akoyunoglou G (ed) Photosynthesis III. Structure and molecular organisation of the photosynthetic apparatus. Balaban International, Philadelphia, p.727–737, 1981. Strasser, R.J.; Govindjee. The F0 and the O-J-I-P fluorescence rise in higher plants and algae. In: Argyroudi- Akoyunoglou JH (ed) Regulation of chloroplast biogenesis. Plenum, New York, p 423–426, 1992. Strasser RJ, Srivastava A, Govindjee. Polyphasic chlorophyll a fluorescence transient in plants and cyanobacteria. Photochem Photobiol 61:32–42, 1995. Strasser RJ, Tsimilli-Michael M, Srivastava A. Analysis of the chlorophyll a fluorescence transient. In: Papageorgiou GC, Govindjee (eds) Chlorophyll fluorescence: a signature of 124 photosynthesis. Advances in photosynthesis and respiration series, vol 19. Kluwer, Rotterdam, p. 321–362, 2004. TAIZ; L. et al. Fisiologia e Desenvolvimento Vegetal. 6ªed. Porto Alegre: Artmed; 2017. 858 p. TAIZ; L.; ZEIGER; E. Plant Physiology. 5th ed. Sunderland: Sinauer Associates; 2010. TAN; K.H. Humic matter in soil and the environment: principles and controversies; CRC Press; 408p. 2003. TAVARES, O. C. H. Efeito dos ácidos húmicos sobre as H+-ATPASE, transportadores de N-NO3- e N-NH4+, e sobre o crescimento em arroz. 2014. 118 p. Tese (Doutorado em Fitotecnia) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2014. TAVARES; O. C. H.; SANTOS; L. A.; FERREIRA; L. M.; SPERANDIO; M. V. L.; ROCHA; J. G.; GARCÍA; A. C.; DOBBSS; L. B.; BERBARA; R. L. L.; SOUZA; S. R.; FERNANDES; M. S. Humic acid differentially improves nitrate kinetics under low and high-affinity systems and alters the expression of plasma membrane H+ -ATPases and nitrate transporters in rice. Ann. Appl. Biol.; 16 p. 2016. TESTER; M.; DAVENPORT; R. Na+ tolerance and Na+ transport in higher plants. Annals of Botany; v.91; n.5; p.503-527; 2003. TIESSEN; H.; SAMPAIO; E.V.S.B.; SALCEDO; I.H. Organic matter turnover and management in low input agriculture of NE Brazil. Nutrient Cycling in Agroecosystems 61:99-103; 2001. Timmis, J.N. et al. (2004) Endosymbiotic gene transfer: organelle genomes forge eukaryotic chromosomes. Nat. Rev. Genet. 5, 123– 135 Toda; Y.; M. Tanaka; D. Ogawa; K. Kurata; K. Kurotani; Y. Habu; T. Ando; K. Sugimoto; N. Mitsuda; E. Katoh; K. Abe; A. Miyao; H. Hirochika; T. Hattori and S. Takeda; 2013. Rice salt sensitive3 forms a ternary complex with JAZ and class-C bHLH factors and regulates jasmonate induced gene expression and root cell elongation. Plant Cell; 25: 1709‒1725 TOGNETTI, V.B., MUHLENBOCK, P. and Van Breusegem, F. (2012) Stress homeostasis – the redox and auxin perspective. Plant, Cell Environ. 35, 321– 333. TOMATI; U.; BELARDINELLI; M.; ANDREU; M.; GALLI; E. Evaluation of Commercial Compost Quality. Waste Management & Reserch; v. 20; p. 389-397; 2002. Em: SILVA; M. F.; GUERRERO; F.; VILLAS; R. L; SILVA; R.G. Transformação da matéria orgânica em substâncias húmicas durante a compostagem de resíduos vegetais. Revista Brasileira de Agroecologia Rev. Bras. de Agroecologia. 4(1):59-66. 2009. Treseder KK, Allen MF (2002) Direct nitrogen and phosphorus limitation of arbuscular mycorrhizal fungi: a model and field test. New Phytol 155:507–515 125 TREVISAN, S.; FRANCIOSO, O.; QUAGGIOTTI, S.; NARDI, S. Humic substances biological activity at the plant-soil interface: from environmental aspects to molecular factors. Plant signaling & behavior, v. 5, n. 6, p. 635–43, 2010. UNESCO. International symposium on ‘New Directions in Urban Water Management; 2007. USDA. Foreign Agricultural Service. Disponível em: https://apps.fas.usda.gov/psdonline/app/index.html#/app/advQuery . Acesso em: 07/12/2019. USDA/FAS. Grain: world markets and trade. May; 2015. Disponível em: https://apps.fas.usda.gov/psdonline/circulars/grain.pdf VASCONCELOS; M. C. C. A. Salinização do solo em áreas irrigadas: aspectos físicos e químicos. Agropecuária Científica no Semiárido; v. 10; n.1; p. 20-25; 2014. VAZ; D. O. Estudo das interações de íons metálicos divalentes com ácidos fúlvicos extraídos das águas do Rio Suwanee. Tese (Doutorado em Química). Centro de Ciências Físicas e Matemáticas; Universidade Federal de Santa Catarina. Florianópolis; 2006. Veresoglou SD; Menexes G; Rillig MC (2012) Do arbuscular mycorrhizal fungi affect the allometric partition of host plant biomass to shoots and roots? A meta-analysis of studies from 1990 to 2010. Mycorrhiza 3:227–35. VIÉGAS; R.A.; SILVA; L.M.M.; VIÉGAS; P.R.A; QUEIROZ; J.E.; ROCHA; I.M.A. Redução assimilatória de NO-3 em plantas de cajueieros cultivados em meio salinizado. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental; v.8; n.2/3; p.189-195; 2004. Wang; Y.; W. Zhang; K. Li; F. Sun; C. Han; Y. Wang and X. Li; 2008. Salt induced plasticity of root hair development is caused by ion disequilibrium in Arabidopsis thaliana. J. Plant Res.; 121: 87‒96 WHITBY; H.; VAN DEN BERG; C. M. G. Evidence for copper-binding humic substances in seawater. Marine Chemistry; v. 173; p. 282–290; 2015. Woodson, J.D. and Chory, J. Coordination of gene expression between organellar and nuclear genomes. Nat. Rev. Genet. 9, 383–395; 2008. YAMAUCHI Y; FURUTERA A; SEKI K; TOYODA Y; TANAKA K; SUGIMOTO Y (2008) Malondialdehyde generated from peroxidized linolenic acid causes protein modification in heat-stressed plants. Plant Physiol Biochem 46:786–793 YAMAUCHI Y; SUGIMOTO Y (2010) Effect of protein modifcation by malondialdehyde on the interaction between the oxygen-evolving complex 33 kDa protein and photosystem II core proteins. Planta 231:1077–1088 YANG; C.W.; XU; H.H.; WANG; L.L.; LIU; J.; SHI; D.C. & WANG; G.D. Comparative effects of salt-stress and alkalistress on the growth; photosynthesis; solute accumulation; and ion balance of barley plants. Photosynthetica; 47:7986; 2009. 126 YEO; A. R. e FLOWERS; T.J. 1989. Selection for physiological character: examples from breeding for salt tolerance. In H.G. Jones; T. J. Flowers e M.B. Jones eds.; Plants Under Stress. Cambridge University Press; Cambridge. 217-234. YEO; A.R.; CAPRON; S.J.M; FLOWERS; T.J.: The effect of salinity upon photosynthesis in rice (Oryza sativa L.): Gas exchange by individual leaves relation to their salt content. - J. exp. Bot. 36: 1240-1248; 1985. ZAHRA; J.; NAZIM; H.; Cai; S.; HAN; Y.; WU; D.; ZHANG; B.; HAIDER; S. I.; ZHANG; G. The influence of salinity on cell ultrastructures and photosynthethic apparatus of barley genotypes differing in salt stress tolerance. Acta Physiologiae Plantarum; v. 36; p. 1261-1269; 2014. ZANDONADI, D. B.; CANELLAS, L. P.; FAÇANHA, A. R. Indolacetic and humic acids induce lateral root development through a concerted plasmaléma and tonoplast H+ pumps activation. Planta, v. 225, n. 6, p. 1583–1595. 2007 ZANDONADI, D. B.; CANELLAS, L. P.; FAÇANHA, A. R. Indolacetic and humic acids induce lateral root development through a concerted plasmalemma and tonoplast H+ pumps activation. Planta, v. 225, n. 6, p. 1583-1595, 2007. ZANDONADI; D. B.; SANTOS; M. P.; DOBBSS; L. B.; OLIVARES; F. L.; CANELLAS; L. P.; BINZEL; M. L.; OKOROKOVA-FAÇANHA; A. L.; FAÇANHA; A. R. Nitric 51 oxide mediates humic acid-induced root development and plasma membrane H+ - ATPase activation. Planta; 231: 1025-1036; 2010. ZENG; R.S. Disease resistance in plants through mycor- rhizal fungi induced allelochemicals. In: INDERJIT; K.M. & MUKERJI; K.G.; eds. Allelochemicals: Biological control of plant pathogens and diseases. Dordrecht; Springer; 2006. p.181-192. ZHONGQUN; H.; CHAOXING; H.; ZHIBIN; Z.; ZHIRONG; Z. & HUAISONG; W. Changes of antioxidative enzymes and cell membrane osmosis in tomato colonized by arbuscular mycorrhizae under NaCl stress. Colloid. Surface B.; 59:128-133; 2007. ZHU; J. K. Plant salt tolerance. Trends in Plant Science; v.6; p.66-71; 2001.por
dc.subject.cnpqEngenharia Agrícolapor
dc.thumbnail.urlhttps://tede.ufrrj.br/retrieve/71726/2020%20-%20Hellen%20Fernanda%20Oliveira%20da%20Silva.pdf.jpg*
dc.originais.urihttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/6214
dc.originais.provenanceSubmitted by Celso Magalhaes (celsomagalhaes@ufrrj.br) on 2023-01-17T12:29:39Z No. of bitstreams: 1 2020 - Hellen Fernanda Oliveira da Silva.pdf: 4125455 bytes, checksum: 073ef3d6498fee304aa37468c8b1fe7d (MD5)eng
dc.originais.provenanceMade available in DSpace on 2023-01-17T12:29:39Z (GMT). No. of bitstreams: 1 2020 - Hellen Fernanda Oliveira da Silva.pdf: 4125455 bytes, checksum: 073ef3d6498fee304aa37468c8b1fe7d (MD5) Previous issue date: 2020-02-28eng
Appears in Collections:Mestrado em Fitossanidade e Biotecnologia Aplicada

Se for cadastrado no RIMA, poderá receber informações por email.
Se ainda não tem uma conta, cadastre-se aqui!

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
2020 - Hellen Fernanda Oliveira da Silva.pdf2020 - Hellen Fernanda Oliveira da Silva4.03 MBAdobe PDFThumbnail
View/Open


Items in DSpace are protected by copyright, with all rights reserved, unless otherwise indicated.