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dc.contributor.authorMendes, Edinéa Pastro
dc.date.accessioned2023-12-21T18:46:13Z-
dc.date.available2023-12-21T18:46:13Z-
dc.date.issued2019-05-13
dc.identifier.citationMENDES, Edinéa Pastro. Investigação da atividade antileishmania in vitro de chalconas-tiossemicarbazonas. 2019. 73 f. Tese (Doutorado em Ciência, Tecnologia e Inovação Agropecuária) - Pró-Reitoria de Pesquisa e Pós-Graduação, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ, 2019.por
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9880-
dc.description.abstractAs leishmanioses são doenças transmitidas por insetos vetores, flebotomíneos, infectados com parasitos do gênero leishmania spp. e constituem um grave problema de saúde pública mundial, além de estarem relacionadas entre as seis grandes endemias humanas. Essas doenças apresentam uma ampla variedade de manifestações clínicas na sua forma cutânea causando grande deformidade, e na forma visceral com elevado número de morbidade e mortalidade se não for diagnosticada e tratatada. A característica limitante, pela dificuldade de acesso e adesão ao tratamento, pela falta de investimentos na criação de novos fármacos pela indústria farmacêutica e políticas sociais ineficientes. O tratamento utilizado não é satisfatório em relação a efetividade e toxicidade, e há resistência aos fármacos disponíveis, ocasionado pela sensibilidade de diversas cepas a estas substâncias, além de ser longo e requerer internação. Assim, objetivando encontrar novos agentes antiparasitários que possam auxiliar no tratamento das leishmanioses, foi avaliada uma série de sete chalconas-tiossemicarbazonas, com diferentes grupos substituintes (CT-H, CT-Me, CT-CN, CT-F, CT-Br, CT-Cl e CT-NO2) frente às formas promastigotas de parasitos de Leishmania spp. As chalconas são produtos naturais amplamente distribuídos nas plantas superiores que apresentam diversificada atividade biológica incluindo a antiparasitária. A utilização das estruturas moleculares dessas substâncias como protótipos poderão possibilitar a obtenção de novas substâncias com potencial atividade antiparasitária. A introdução de grupos moleculares da classe das tiossemicarbazonas, também com já relatada atividade antiparasitária, poderá provocar a interação com enzimas dependentes de ferro presentes nos parasitos da família dos tripanossomatídeos favorecendo o efeito antiparasitário. Os primeiros resultados com as substâncias a 50 µM testadas frente às formas promastigotas de L. amazonensis apresentaram uma boa atividade antileishmania. A avaliação frente às L. amazonensis, L. infantum e L. braziliensis na forma de promastigotas em concentrações na faixa de 1,56 a 50 µM indicou eficiência dos protótipos, a pentamidina foi utilizada como controle positivo da reação. A citotoxicidade dos compostos, avaliada em células não infectadas de macrófagos murinos em culturas de 72 h, apresentou valores de DL50 para CT-Br e CT-Cl 44,24 e 32,75 µM, respectivamente, demonstrando serem menos citotóxicos do que a pentamidina. As formas amastigotas intracelulares foram avaliadas com e sem as substâncias em teste. A viabilidade dos parasitos foi determinada utilizando o ensaio de MTT. Os resultados mostraram que a CT-Cl foi o composto mais ativo para as três espécies testadas. Apresentando IC50 na faixa de 5,22 µM para L. amazonensis, 3,97 µM para L. infantum e 3,89 µM para L. braziliensis, respectivamente, e a pentamidina apresentou IC50 = 5,20 µM. Os outros compostos também apresentaram bons resultados com IC50 na faixa de 4,34 a 14,80 µM. Nos ensaios com amastigotas axênicas de L. amazonensis foram obtidos valores de IC50 na faixa de 6,18 a 14,74 µM, indicando atividade promissora. Neste estudo, também foi investigado o mecanismo de ação das substâncias mais ativas na via da enzima tripanotiona redutase e via NO sintase através da avaliação de óxido nítrico. No entanto, não foram observados resultados positivos que indicassem essas vias como significativas para a ação das chalconas-tiossemicarbazonas. Os resultados obtidos frente as três espécies avaliadas quanto a ação de chalconas-tiossemicarbazonas, inéditas, pela primeira vez relatadas nesse trabalho de tese, indicaram essa classe de substâncias como potenciais agentes antileishmania.por
dc.description.sponsorshipCAPES - Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superiorpor
dc.description.sponsorshipCNPq - Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológicopor
dc.formatapplication/pdf*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropor
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.subjectLeishmaniosespor
dc.subjectChalconaspor
dc.subjectTiossemicarbazonaspor
dc.subjectLeishmaniosiseng
dc.subjectChalconeseng
dc.subjectThiosemicarbazoneseng
dc.titleInvestigação da atividade antileishmania in vitro de chalconas-tiossemicarbazonaspor
dc.title.alternativeInvestigation of in vitro antileishmanial activity of chalcones-thiosemicarbazoneseng
dc.typeTesepor
dc.description.abstractOtherThe leishmaniosis are a serious global public health problem, affecting patients with pronounced deformity, morbidity and mortality, as well as difficulty of access and adherence to treatment, lack of investment in the development of new drugs by pharmaceutical industry and inefficient social policies. The treatment used is not adequate due to drug effectiveness and toxicity. Additionally, resistance to available drugs has been shown by the sensitivity of several strains to these substances and treatment can be long and require hospitalization. In an attempt to find new anti-parasitic agents that can help with Leishmaniosis treatment, a series of seven chalcones-thiosemicarbazones with different substituents (CT-H, CT-Me, CT-CN, CT-F, CT-Br, CT-Cl and CT-NO2) against the promastigote forms of parasites of Leishmania spp was assessed. Evaluation started through the screening of different substances at 50µM concentration with promastigote forms of L. amazonensis, and when leishmanicidal activity was observed, a further evaluation with L. amazonensis, L. infantum and L. braziliensis was performed in the form of promastigotes at concentration range of 50 to 1.56 µM dissolved in DMSO. Parasite cultures were prepared with Schneider’s medium supplemented with 10% or 20% of bovine fetal serum, arranged in 96 wells microplates and incubated at 26° C for 12 h. All trials were conducted in triplicate in three independent assays and pentamidine was used as positive control. The cytotoxicity of these compounds was assessed in uninfected cells with murine peritoneal macrophages in 24 h presenting LD50 values (M) for CT-Br and CT-Cl 44.24 and 32.75 µM respectively, demonstrating that those compounds are less cytotoxic than pentamidine whose value was = 8.5 . The promastigate forms were cultivated with and without these substances in Schneider’s culture medium and incubated at the 26° C for 12 hours using pentamidine isethionate as a reference drug. After incubation, the viability of the parasites was determined by using the MTT assay. The results showed that the CT-Cl was the most active compound for the three species tested, presenting IC50 = 5.22 µM to L. amazonensis, 3.97 µM to L. infantum and 3.89 µM to L. braziliensis, respectively. Pentamidine presented IC50 = 5.20 µM. The other compounds also obtained good results with IC50 in the range of 4.34 to 14.80 µM. In trials of CT with the L. amazonensis axenic amastigotes IC50 values were obtained in the range of 6.18 to 14.74 µM, indicating very interesting activity. This study also investigated the mechanism of action of most active substances in trypanothione reductase enzyme and the NO synthase pathways by evaluating nitric oxide. However, positive results were not observed to support those pathways as significant to chalcones-thiosemicarbazones action. The results obtained by the evaluation of chalcones-thiosemicarbazones action on the three species indicate this class of substances as potential antileishmanial agents.eng
dc.contributor.advisor1Echevarria, Aurea
dc.contributor.advisor1IDCPF: 668.742.388-68por
dc.contributor.advisor-co1Cavalheiro, Marilene Marcuzzo do Canto
dc.contributor.advisor-co1IDCPF: 175.087.030-49por
dc.contributor.referee1Echevarria, Aurea
dc.contributor.referee2Santos, Eduardo Caio Torres dos
dc.contributor.referee3Santos, Fernanda Nunes
dc.contributor.referee4Silva, Lucia Helena Pinto da
dc.contributor.referee5Coelho, Irene da Silva
dc.creator.IDCPF: 706.903.407-53por
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/6931787630199061por
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.departmentPró-Reitoria de Pesquisa e Pós-Graduaçãopor
dc.publisher.initialsUFRRJpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Ciência, Tecnologia e Inovação em Agropecuáriapor
dc.relation.referencesALENCAR, J. E.; DIETZE, R. Leishmaniose visceral (Calazar). In: VERONESI, R. Doenças infecciosas e parasitárias, 8. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, p. 706-17, 1991. ALIAGA, L. et al. Localized mucosal leishmaniasis due to Leishmania infantum: clinical and microbiologic findings in 31 patients. Medicine (Baltimore), n. 82, p. 147 –158, 2003. ALMEIDA, O.L.S.; SANTOS, J.B. Advances in the treatment of cutaneous leishmaniasis in the new world in the last ten years: a systematic literature review. Anais Brasileiro de Dermatologia, n.3, v. 86, p. 497-506, 2011. ANTINORI, S.; CASCIO, A.; PARRAVICINI, C.; BIANCHI, R.; CORBELLINO, M. Leishmaniasis among organ transplant recipients. Lancet Infectious Diseases, n. 8, p. 191-199, 2008. ARONSON, J.K., Meyler's Side Effects of Drugs: the international encyclopedia of adverse drug reactions and interactions, Elsevier., 15a ed, 2006. ASHFORD, R.W. The leishmaniases as emerging and reemerging zoonoses. International Journal for Parasitology, n. 30, p. 1269-1281, 2000. BASU, N.K., KOLE, L., GHOSH, A., DAS, P.K. Isolation of a nitric oxide synthase from the protozoan parasite Leishmania donovani. FEMS Microbiol. Lett, v.1, n. 156, p. 43-47, 1997. BARBOSA, J.F.; FIGUEIREDO, S.M. DE; MONTEIRO, F.M.; ROCHA-SILVA, F. New Approaches on Leishmaniasis Treatment and Prevention: A Review of Recent Patents. Recent Patents on Endocrine, Metabolic & Immune Drug Discovery, v. 9, p. 90–102, 2015. BARRAT, G.; SAINT-PIERRE-CHAZALET, M.; LOISEAU, P.M. Celular Transport and Lipid Interactions of Miltefosine. Current Drug Metabolism, v. 10, n. 3, p. 247-255, 2009. BASSELIN, M.; BADET-DENISOT, M.A.; LAWRENCE, F.; ROBERT-GERO, M. Effects of pentamidine on polyamine level and biosynthesis in wild-type, pentamidine-treated, and pentamidine-resistant Leishmania. Exp Parasitol, v. 85, n. 3, p. 274-282, 1997. BERALDO, H.; GAMBINO, D.; The wide pharmacological versatility of semicarbazones, thiosemicarbazones and their metal complexes. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry, v.4, n.1, p. 31-39, 2004. BISUGO, M. C. et al. Assessment of canine visceral leishmaniasis diagnosis by means of a rapid test using recombinant antigen K39 in endemic regions of São Paulo state, Brazil. Revista do Instituto Adolfo Lutz, v. 66, n. 2, p. 185-193, 2007. BLANCO,V.M.; COSSIO, A.; MARTINEZ, J.D.; SARAVIA, N.G. Clinical and Epidemiologic Profile of Cutaneous Leishmaniasis in Colombian Children: Considerations for Local Treatment. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, n. 89, p. 359-364, 2013. BOECK, P.; FALCÃO, C.A.B.; LEAL, P.C.; YUNES, R.A.; FILHO, V.C.; TORRES-SANTOS, E.C.; ROSSI-BERGMANN, B. Synthesis of chalcone analogues with increased antileishmanial activity, Bioorganic & Medicinal Chemistry, n. 14, p. 1538–1545, 2006. BRAZIL, R.P.; BRAZIL, B.G.; Rangel, E.F.; Lainson, R. Biologia de flebotomíneos neotropicais. Flebotomíneos do Brasil. Editora Fiocruz, Rio de Janeiro, p. 257-274, 2003. BRASIL. Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Departamento de Vigilância Epidemiológica. Manual de vigilância e controle da leishmaniose visceral. – 1. ed., 5. reimpr. – Brasília, 2013. BRASIL. Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Departamento de Vigilância Epidemiológica. Manual de vigilância e controle da leishmaniose visceral. – 1. ed., 5. reimpr. – Brasília, 2014. BRASIL. Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Departamento de Vigilância Epidemiológica. Leishmaniose visceral: recomendações clínicas para redução da letalidade. Brasília, 2011. BRASIL. Ministério da saúde, Secretaria de vigilância em saúde. Manual de vigilância e controle da Leishmaniose tegumentar americana. Brasília-DF. p. 184, 2007. BRITTINGHAM, A.; MORRISON, C.J.; MCMASTER, W.R.; MCGWIRE, B.S.; CHANG, K.P.; MOSSER, D.M. Role of the Leishmania surface protease gp63 in complement fixation, cell adhesion, and resistance to complement-mediated lysis. J Immunol, v. 155, p. 3102-3111, 1995. BURNS-JR, J. M.; SHREFFLER, W.G.; BENSON, D.R.; GHALIB, H.W.; BADARO, R.; REED, S.G. Molecular characterization of a kinesin-related antigen of Leishmania chagasi that detects specific antibody in African and American visceral leishmaniasis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, v. 90, n. 2, p. 775–779, 1993. CABREIRA, M.A.A. Ciclo enzoótico de transmissão da Leishmania (Leishmania) chagasi (Cunha e Chagas, 1937) no ecótopo peridoméstico em Barra de Guaratiba, Rio de Janeiro-RJ: estudo de possíveis variáveis preditoras. 1999. Dissertação (Mestrado Saúde Pública) – Escola Nacional de Saúde Pública, Fundação Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 1999. CABRERA, M.M.; SIMOENS, G.; FALCHI, M.L.; LAVAGGI, O.E., PIRO, E.E.; CASTELLANO, A.; VIDAL, A.; AZQUETA, A.; MONGE, A.L.; DE CERÁIN, G.; SAGRERA, G.; SEOANE, H.; CERECETTO, M.; GONZÁLEZ. Bioorg Med Chem, n. 15, v. 10, p. 3356, 2007. CARVALHO, E.M.; CORREA-FILHO, D.; BARCELAR, O.; ALMEIDA, R.P.; LESS, H.; ROCHA, H. Characterization of the immune response in subjects with self-healing cutaneous leishmaniasis. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, v. 53, p. 273-277, 1995. CARVALHO, P.B.; ARRIBAS, M.A.G.; FERREIRA, E.I. Leishmaniasis: What do we know about its chemotherapy? Braz J Pharm Sci, v. 36, p. 69-96, 2000. CASTRO-PINTO, D.B.; ECHEVARRIA, A.; GENESTRA, M. S; CYSNE-FINKELSTEIN, L.; LEON, L. L. Trypanothione reductase activity is prominent in matacyclic promastigotes and axenic amastigotes of Leishmania amazonensis. Evaluation of its potential as a thepapeutic target. J. Enz. Inhib. Med. Chem., n. 19, p. 57-63, 2004. CASTRO-PINTO, D.B.; GENESTRA, M.; MENEZES, G.B.; WAGHABI, M.; GONCALVES, A.; DE NIGRIS DEL CISTIA, C.; SANT'ANNA, C.M.; LEON, L.L.; MENDONÇA-LIMA, L. Cloning and expression of trypanothione reductase from a New World Leishmania species. Arch. Microbiol., v. 189, p. 375-384, 2008. CHAKRABORTY, A.K.; MAJUMDER, H.K. Mode of action of pentavalent antimonials: specific inhibition of type I DNA topoisomerase of Leishmania donovani. Biochem Biophys Res Commun, v. 152, n. 2, p. 605-11, 1988. CHAN-BACAB, M.J.; PENA-RODRÍGUEZ, L.M. Plant natural products with leishmanial activity. Royal Soc. Chem., n. 18, p. 674-688, 2001. CHAPPUIS, F. et al. Visceral leishmaniasis: what are the needs for diagnosis, treatment and control? Nat Rew, n. 5, p. 873-882, 2007. CHATTON, J.Y.; BROILLET, M.C. Detection of nitric oxide production by fluorescent indicators. Methods Enzymol., 359, p. 134-48, 2002 CROFT, S.L.; COOMBS, G.H. Leishmaniasis-current chemotherapy and recent advances in the search for novel drugs. Trends Parasitol, v. 19, n. 11, p. 502-508, 2003. CROFT, S.L.; SEIFERT, K.; YARDLEY, V. Current scenario of drug development for leishmaniasis. Indian J Med Res, v. 123, n. 3, p. 399-410, 2006. CROFT, S.L.; SUNDAR, S.; FAIRLAMB, AH. Drug resistance in leishmaniasis. Clin Microbiol. Ver, v.19, n.1, p. 111, 2006. CROFT, S.L., YARDLEY, V. Chemotherapy of leishmaniasis. Curr Pharm, v. 8, n. 4, p. 319-342, 2002. CYSNE-FINKELSTEIN, L.; TEMPORAL, R.M.; ALVES, F.A.; LEON, L.L. Leishmania amazonensis: long-term cultivation of axenic amastigotes is associated to metacyclogenesis of promastigotes. Exp Parasitol., v. 89, n.1, p. 58-62, 1998. CUPOLILLO, E.; MEDINA-A.; COSTA, E.; NOYES, H.; MOMEN, H.; GRIMALDI, G.Jr. A revised classifiction for Leishmania and Endotrypanum. Parasitology Today, n. 16, p. 142-144, 2000. DANESHBOD, Y.; ORYAN, A.; DAVARMANESH, M.; SHIRIAN, S.; NEGAHBAN, S.; ALEDAVOOD, A.; DAVARPANAH, M.A.; SOLEIMANPOOR, H.; DANESHBOD, K. Clinical, Histopathologic, and Cytologic Diagnosis of Mucosal Leishmaniasis and Literature Review. Archives of Pathology & Laboratory Medicine, 135, p. 478-482, 2011. DE BRITO M.E.; ANDRADE M.S.; DANTAS-TORRES, F,; RODRIGUES, E.H.; CAVALCANTI, M.P.; de ALMEIDA, A.M.; BRANDÃO-FILHO, S.P. Cutaneous leishmaniasis in northeastern Brazil: a critical appraisal of studies conducted in State of Pernambuco. Rev Soc Bras Med Trop., v. 45, n. 4, p. 425-429, 2012. DESJEUX, P.; GHOSH, R.; DHALARIA, P.; STRUB-WOURGAFT, N.; ZIJLSTRA, E.E. Report of the Post Kala-Azar Dermal Leishmaniasis (PKDL) consortium meeting, New Delhi, India, June 2012. Parasites & Vectors, n. 6, p. 27-29, 2013. DESJEUX, P. Leishmaniasis: current situation and new perspectives. Comp Immunol, Microbiol Infect Dis., n. 27, p. 305–318, 2004. DETSI, A.; MAJDALANI, M.; KONTOGIORGIS, C. A.; HADJIPAVLOU-LITINA, D.; KEFALAS, P. Bioorg. Med. Chem., v. 17, n. 23, p. 8073-8085, 2009. ELLMAN, G.L.; COURTNEY, K.D.; ANDRES, V.; FEATHERSTONE, R.M. Biochemical pharmacology, v. 7, n.2, p. 88-95, 1961. FAILLI, P.; NISTRI, S.; QUATTRONE, S.; MAZZETTI, L.; BIGAZZI, M.; SACCHI, T.B. et al. Relaxin up-regulates inducible nitric oxide synthase expression and nitric oxide generation in rat coronary endothelial cells. FASEB J., n. 16, p. 252–254, 2002. FEITOSA, M. M. et al. Aspectos clínicos de cães com leishmaniose visceral no município de Araçatuba- São Paulo (Brasil). ClínVet., v. 5, n. 28, p. 36-44, 2000. FISCHER, D.C.H. Antiprotozoal activity of Brazilian plant extracts from isoquinoline alkaloidsproducing families. Phytomedicine, v. 12, p. 382-390, 2005. FRAGA, J.; VELAND, N.; MONTALVO, A.M.; PRAET, N.; BOGGILD, A.K.; VALENCIA, B.M.; ARÉVALO, J.; LLANOS-CUENTAS, A.; DUJARDIN, J.C.; VAN DER AUWERA, G. Accurate and rapid species typing from cutaneous and mucocutaneous leishmaniasis lesions of the New World. Diagn Microbiol Infect Dis., v. 74, n. 2, p. 142-150, 2012. FRANCO, M.A.; BARBOSA, A.C.; RATH, S.; DOREA, J.G. Antimony oxidation states in antileishmanial drugs. Am J Trop Med Hyg, n. 52, v. 5, p. 435-437, 1995. FRÉZARD, F.; DEMICHELI, C.; RIBEIRO, R. Pentavalent antimonials: new perspectives for old drugs. Molecules, n. 14, p. 2317, 2009. GONTIJO, C.M.F.; MELO, M.N. Leishmaniose Visceral no Brasil: quadro atual, desafios e perspectivas. Rev bras epidemiol, v. 7, n. 3, p. 338–349, 2004. GONTIJO, B; CARVALHO. M.L.R. Leishmaniose Tegumentar Americana. Rev Soc Brasil Medic Trop., n. 36, v.1, p. 71-80, 2003. GOTO, H.; LINDOSO, J.A.L. Current diagnosis and treatment of cutaneous and mucocutaneous leishmaniasis. Expert Rev Anti Infect Ther, v. 8, n. 4, p. 419-43, 2010. GOULART, C.M. Síntese e Avaliação da Atividade Anticorrosiva de Tiossemicarbazonas, Chalconas-tiossemicarbazonas e 1-Tiocarbamoil-4,5-diidropirazóis. 2015. Tese (Doutorado em Química) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, 2015. GRIMALDI Jr., G.; TESH, R.B. Leishmaniasis of the New World: current concepts and implications for future research. Clin Microb Rev., v. 6, p. 230–250, 1993. GREEN, L.C.; WAGNER, D.A.; GLOGOWSKI, J.; SKIPPER, P.L.; WISHNOK, J.S.; TANNENBAUM, S.R. Analysis of nitrate, nitrite, and [15 N] nitrate in biological fluids. Analytical Biochemistry, n. 126, p.131-138, 1982. GUERRA, J.A.; PRESTES, S.R.; SILVEIRA, H.; COELHO, L.I.; GAMA, P.; MOURA, A.; AMATO, V.; BARBOSA, M. D.; FERREIRA, L.C. Mucosal Leishmaniasis caused by Leishmania (Viannia) braziliensis and Leishmania (Viannia) guyanensis in the Brazilian Amazon. PLoS Negl Trop Dis; v. 5, n. 3, p. 980, 2011. HAMILTON, C. J. et al. Ellman's-reagent-mediated regeneration of trypnothione in situ: substrate-economical microplate and time-dependent inhibition assays for trypanothione reductase. Biochem. J., v. 369, p. 529-537, 2003. JHA, T.K.; SUNDAR, S.; THAKUR, C.P.; BACHMANN, P.; KARBWANG, J.; FISCHER, C.; VOSS, A.; BERMAN, J. Miltefosine, an oral agent, for the treatment of Indian visceral leishmaniasis. N Engl J Med, v. 341, n. 24, p. 1795-1800, 1999. JOHNSTONE, A.; THORPE, R. lmmunochemistry in Practice, Blackwell. Scientific Publications. 1982. KUMAR, N.; CHAUHAN, A; DRABU, S. Biomed. Pharmacother. v. 65, n. 5, p. 375-380, 2011. LUO, Y.; SONG, R.; LI, Y.; ZHANG, S.; LIU, Z.; FU, J.; ZHU, H. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. v. 22, n. 9, p. 3039-3043, 2012 MARSDEN, P.D. Mucosal leishmaniasis (Espundia Escomel,1911). Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, v. 80, p. 859-876, 1986. MARZOCHI, M.C.A.; TEIXEIRA, P.C.; MARZOCHI, K.B.F.; CONCEIÇÃO, N.F.; COUTINHO, W.; BRITO, D.B. Vacuum aspiratory puncture system for Leishmania culturing, isolation and transport. Preliminary report. Rev. Inst. Med. Trop. São Paulo, v. 35, p. 301-303, 1993. MARZOCHI, M.C.A. Doenças infecto-parasitárias: Leishmanioses no Brasil: as leishmanioses tegumentares. J Bras Med., v.63, p. 82-104, 1992. MARZOCHI, M.C.; MARZOCHI, K.B.F. Tegumentary and visceral leishmaniasis in Brazil: emerging anthropozoonosis and for their control. Cadernos de Saúde Pública n. 10, v. 2, p. 359-375, 1994. MELOS, J.L.R.; TORRES-SANTOS, E.C.; FAIÕES, V.S.; CATARINA DE NIGRIS DEL CISTIA , C.N.D.; SANT'ANNA, C.M.R.; RODRIGUES-SANTOS, C.E.; ECHEVARRIA, A. Novel 3,4-methylenedioxyde-6-X-benzaldehyde-thiosemicarbazones: Synthesis and antileishmanial effects against Leishmania amazonensis. European Journal of Medicinal Chemistry, n. 103, p. 409 e 417, 2015. MELLO, M.V.P. et al. A comprehensive review of chalcone derivatives as antileishmanial agentes. European Journal of Medicinal Chemistry, v. 150, p. 920-929, 2018. MENDONÇA-FILHO, R.R.; RODRIGUES, I. A.; ALVIANO, D.S.; SANTOS, L.S.; SOARES, R.M.A.; ALVIANO, C.S.; LOPES, A.H.C.S.; ROSA, M.S.S. Leishmanicidal activity of polyphenolic-rich extract from husk fiber of Cocos nicifera Linn. (Palmae). Rev. Microbiol., v. 155, p.136-143, 2004. MONDAL, R.; GUPTA, A. D.; MALLIK, A. K. Tetrahedron Lett., v. 52, n. 39, p. 5020-5024, 2011. MONZOTE, L.; STAMBERG, W.; PATEL, A.; ROSENAU, T.; MAES, L.; COS, P.; GILLE, L. Current Treatment of Leishmaniasis: A sand flies. International Journal for Parasitology, n. 37, p. 1097, 2007. MORENO, S. N. J.; CARNIERI. E. G. S.; DOCAMPO, R. Inhibition of Trypanossoma cruzi trypanothione reductase by crystal violet. Mol Biochem Parasitol., v. 67, p. 313- 320, 1994. MÜLLER, S.; LIEBAU, E.; ROLF, D.W.; KRAUTH-SIEGEL, R.L. Thiol-based redox metabolism of protozoan parasites. Trends in Parasitology, v. 19, n. 7, p. 320-328, 2003. MURRAY, H.W.; BERMAN, J.D.; DAVIES, C.R.; SARAVIA, N.G. Advances in leishmaniasis. Lancet, n. 366, p. 1561-1577, 2005 MYLER, P.J.; FASEL, N. Leishmaniasis: epidemiological Trends and Diagnosis. Leishmania - After the genome, p. 1-14, 2008. HEBY, O.; PERSSON, L.; RENTALA, M. Targeting the polyamine biosynthetic enzymes: a promising approach to therapy of African sleeping sickness, Chagas׳ disease, and leishmaniasis. Amino Acids, v. 33, n. 2, p. 359-366, 2007. NAGLE, A.S.; KHARE, S.; KUMAR, A.B.; SUPEK, F.; BUCHYNSKYY, A.; MATHISON, C.J.N.; MOLTENI, V. Recent Developments in Drug Discovery for Leishmaniasis and Human African Trypanosomiasis. Chemical Reviews, n. 114, p. 11305, 2014. NEUBER, H. Leishmaniasis. Journal der Deutschen Dermatologischen Gesellschaft, n. 6, p. 754-764, 2008. NOGUEIRA, Y.L.; ODORIZZI, R.M.; NAKAMURA, P.M.A. Comparison of the immune parameters of dogs infected with visceral leishmaniasis using Western blot and neutralization techniques. Rev Inst Med Trop., São Paulo, v. 49, n. 6, p. 379-384, 2007. OLIVEIRA, L.F.; SCHUBACH, A.O.; MARTINS, M.M.; PASSOS, S.L.; OLIVEIRA, R.V.; MARZOCHI, M.C.; ANDRADE, C.A. Systematic review of the adverse effects of cutaneous leishmaniasis treatment in the New World. Acta Tropica, 118, p. 87-96, 2011. ORGANIZACION MUNDIAL DE LA SALUD – Lucha contra las leishmaniasis. Ginebra, OMS, (Série de Informes Técnicos, 793) 178p.1990. ORGANIZAÇÃO MUNDIAL DE SAÚDE (OMS). Temas de Salud- Leishmaniasis. 2012. Disponível em: < http://www.who.int/leishmaniasis/en/> Acesso em: 24 mar de 2017. ORGANIZAÇÃO PAN-AMERICANA DA SAÚDE: Leishmanioses: Informe Epidemiológico das Américas: Washington: Organização Pan-Americana da Saúde; 2018. Disponível em www.paho.org/leishmaniasis ÖZDEMIR, A.; ALTINTOP, M.D.; TURAN-ZITOUNI, G.; ÇIFTÇI, G.A.; ERTORUN, I.; ALATAS, Ö.; KAPLANCICLI, Z.A. Synthesis and Evaluation of New Indole-Based Chalcones as Potential Antiinflammatory Agents, European Journal of Medicinal Chemistry, n. 89, p. 304, 2015. PALATNICK DE SOUSA, C.B. et al. Impact of canine control on the epidemiology of canine and human visceral leishmaniasis in Brazil. Am J Trop Med Hyg, v. 65, n. 5, p. 510-517, 2001. PENNA, H. A. Leishmaniose visceral no Brasil. Brasil-Médico, v. 48, p. 949-950, 1934. PESSOA, S.B. Parasitologia Médica. 11. ed., Rio de Janeiro: Guanabara Koogan; 1982. PIMENTEL, M.I.F.; BAPTISTA, C.; RUBIN, E.F.; VASCONCELLOS, E.F.; LYRA, M.R.; SALGUEIRO, M.M. American cutaneous leishmaniasis caused by Leishmania (Viannia) braziliensis resistant to meglumine antimoniate, but with good response to pentamidine: a case report. Rev Soc Bras Med Trop., n. 44, p. 254, 2011. PISCOPO, T.V.; MALLIA, A.C. Leishmaniasis. Postgrad Med J, v. 82, n. 972, p.649-657, 2006. POCAI, E.A. et al. Leishmaniose visceral (calazar). Cinco casos em Santa Maria, Rio Grande do Sul, Brasil. Ciênc Rural, v. 28, n. 3, p. 501-505, 1998. RANI, M.; YUSUF, M; KHAN, S. J. Saudi Chem. Soc., n. 16, p. 431, 2012. REY, L. Bases da Parasitologia Médica, 2ª ed. Ed. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, p. 349, 2001. RIGOL, C.; OLEA-AZAR, C.; MENDIZ£BAL, F.; OTERO, L.; AMBINO, D.; GONZÁLEZ, M.; CERECETTO, H. Electrochemical and ESR study of 5-nitrofuryl-containing thiosemicarbazones antiprotozoal drugs. Spectrochimica Acta, Part A., v. 61, n. 13-14, p. 2933-2938, 2005. SANTOS, D.O.; COUTINHO, C.E.R.; MADEIRA, M.F.; BOTTINO, C.G.; VIEIRA, R.T.; NASCIMENTO, S.B.; BERNARDINO, A.; BOURGUIGNON, S.C.; CORTE-REAL, S.; Pinho, R.T.; RODRIGUES, C.R.; CASTRO, H.C. Leishmaniasis treatment-a challenge that remains: a review. Parasitol. Res., v. 103, p. 1–10, 2008. SANTOS, M. et al. Riboflavin biosynthesis in Saccharomyces cerevisiae. Cloning, characterization, and expression of the RIB5 gene encoding riboflavin synthase. J Biol Chem, v. 270, n. 1, p. 437-44, 1995. SANTOS, S.O. et al. Incrimination of Lutzomyia cruzi as a vector of American Visceral Leishmaniasis. Medical and Veterinary Entomology, n. 2, p. 315-317, 1998. SCARIM, C.B. et al. Thiazole, thio and semicarbazone derivatives against tropical infective diseases: Chagas disease, human African trypanosomiasis (HAT), leishmaniasis, and malaria. European Journal of Medicinal Chemistry, n. 162, p. 378-395, 2019. SHAW, J. J. Further thoughts on the use of the name Leishmania (Leishmania) infantum chagasi for the aetiological agent of American visceral leishmaniasis. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, v. 101, n. 5, p. 577-579, 2006. SILVA, A.C. et al. Aryl thiosemicarbazones: in vitro and immunomodulatory activities against L. amazonensis. Exp. Parasitol., n. 177, p. 57-65, 2017. SILVA, F.S. Patologia e patogênese da leishmaniose visceral canina. Revista Trópica – Ciências Agrárias e Biológicas, v. 1, n. 1, p. 20-31, 2007. SINGH, S.; SIVAKUMAR, R. Challenges and new discoveries in the treatment of leishmaniasis. J Inf Chemother, v. 10, n. 6, p. 307-315, 2004. SisLeish-OPAS/OMS: Dados reportados pelos Programas Nacionais de Leishmanioses/Serviços de Vigilância. Acesso em: 01 de Dezembro de 2017. SOARES, R.O.A.; ECHEVARRIA, A.; BELLIENY, M.S.S.; PINHO, R.T.; DE LEO, R.M.M.; SEGUINS, W.S.; MACHADO, G.M.; CANTO-CAVALHEIRO, M.M.; LEON, L.L. Evaluation of thiosemicarbazones and semicarbazones as potential agents anti-Trypanosoma cruzi. Experimental Parasitology, n. 129, p. 381–387, 2011. STRAZZULLA, A.; COCUZZA, S.; PINZONE, M. R.; POSTORINO, M.C.; COSENTINO, S.; SERRA, A.; CACOPARDO, B.; NUNNARI, G. Mucosal Leishmaniasis: An Underestimated Presentation of a Neglected Disease. Biomed Research International, 2013. STUART, K.; BRUN,R.; CROFT, S.; FAIRLAMB, A.; GURTLER, R.E.; McKERROW, J., REED, S.; TARLETON, R. Kinetoplastids: related protozoan pathogens, different diseases. Journal of Clinical Investigation; v. 118, n. 4, p. 1301-1310, 2008. SUNDAR, S.; CHAKRAVARTY, J. Paromomycin in the treatment of leishmaniasis. Expert Opin Investig Drugs, v. 17, n. 5, p. 787-794, 2008. TAJUDDEEN, N.; ISAH M.B.; SULEIMAN M.A.; van HEERDEN F.R.; IBRAHIM M.A. The chemotherapeutic potential of chalcones against leishmaniases: a review. Int J Antimicrob Agents., n. 51, v. 3, p. 311-318, 2018. TEMPONE, A.G.; BORBOREMA, S.E.T.; ANDRADE Jr, H.F.; GUALDA, N.C.A.; YOGI, A.; CRAVALHO, C.S.; BACHIEGA, D.; LUPO, F.N.; BONOTTO, S.V.; FISCHER, D.C.H. Antiprotozoal activity of Brazilian plant extracts from isoquinoline alkaloidsproducing families. Phytomedicine, v.12, p. 382-390, 2005. Tuon, F.F.; Amato, V.S.; Graf, M.E.; Siqueira, A.M.; Nicodemo, A.C.; Neto, V.A. Treatment of New World cutaneous leishmaniasis – a systematic review with a meta-analysis. Int J Dermatol, v. 4, n. 2, p. 109-124, 2008. van GRIENSVEN, J.; DIRO, E. Visceral Leishmaniasis. Infectious Disease Clinics of North America, v. 26, p. 309, 2012. ORGANIZAÇÃO MUNDIAL DE SAÚDE (OMS). Temas de Salud- Leishmaniasis. 2012. Disponível em: < http://www.who.int/leishmaniasis/en/> Acesso em: 24 mar de 2017. World Health Organization (WHO) 2013. http://apps.who.int/tdr/publications/tdr-image-library?idNumber=00061046. Acessado em 30 de julho de 2017. World Health Organization 2010 (OMS/WHO). http://apps.who.int/tdr/publications/tdr-image-library?idNumber=00061043. Acessado em 5 de Agosto de 2017. World Health Organization (WHO), 2015. 1-164p. WHO 2010a. Technical Report Series. Control of the leishmaniases. Disponível em: http://whqlibdoc.who.int/trs/WHO_TRS_949_eng.pdf. Acesso em 10 de fevereiro de 2017. WHO 2010b. World Health Organization. First WHO report on neglected tropical diseases: working to overcome the global impact of neglected tropical diseases. Disponível em: http://www.who.int/neglected_diseases/2010report/en/. Acesso em 20 de novembro de 2017. WHO 2012. Second WHO Report on Neglected Tropical Diseases.Treatment recommendation for leishmaniasis. Disponível em: http:// www.who.int/leishmaniases/research/978924129496_pp67_71.pdf?ua=1. Acesso em 20 de abril de 2017. WHO - World Health Organization, 2019. Disponível em: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/leishmaniasis (14 de março de 2019). WYLLIE, S.; CUNNINGHAM, M.L.; FAIRLAMB, A.H. Dual action of antimonial drugs on thiol redox metabolism in the human pathogen Leishmania donovani. J Biol Chem, v. 279, n. 38, p. 39925-39932, 2004. ZAVERUCHA, T.V. Vacinação murina com frações subcelulares de Leishmania amazonensis sob modulação de Mycobacterium bovis BCG e ciclofosfamida. 2005. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 2005.por
dc.subject.cnpqBioquímicapor
dc.subject.cnpqParasitologiapor
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