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dc.contributor.authorCosta, Rita de Cássia Silva da
dc.date.accessioned2023-12-21T18:57:44Z-
dc.date.available2023-12-21T18:57:44Z-
dc.date.issued2017-02-17
dc.identifier.citationCOSTA, Rita de Cássia Silva da. Uso do gel de Quitosano mucoadesivo contendo Doxiciclina associada ou não ao Meloxicam no controle da progressão da gengivite em cães portadores de doença periodontal. 2017. 68 f. Tese (Doutorado em Medicina Veterinária - Patologia e Ciências Clínicas) - Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2017.por
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/10118-
dc.description.abstractA doença periodontal é a doença oral de maior ocorrência na clínica de animais de companhia, acometendo principalmente animais idosos, dada a sua característica de cronicidade. Dentre os sinais clínicos nos animais acometidos, a gengivite é um dos primeiros a serem observados. O objetivo desse trabalho foi desenvolver e avaliar a eficácia de um gel mucoadesivo contendo doxiciclina associada ou não ao meloxicam no controle da progressão da gengivite em cães induzida pela doença periodontal através de avaliação clínica, histopatológica e microbiológica. Foram utilizados 18 cães da raça Beagle portadores de gengivite secundária à doença periodontal divididos em três grupos experimentais: Grupo I – Animais medicados com formulação placebo; Grupo II – Animais medicados com a formulação gel de quitosano mucoadesivo contendo doxiciclina e grupo III – Animais medicados com a formulação gel de quitosano mucoadesivo contendo a associação de doxiciclina e meloxicam. Os animais foram tratados durante sete dias, a cada doze horas, na margem gengival da maxila direita. Durante a avaliação clínica, apenas os animais tratados com o produto contendo doxiciclina apresentaram melhora (p<0,05). Na avaliação histopatológica, somente os animais tratados com a associação de doxiciclina e meloxicam apresentaram melhora nos escores clínicos, entretanto, sem diferença significativa com os demais grupos. Amostras de fragmento de gengiva livre e swabs da margem e sulco gengivais da maxila superior direita de cada animal foram encaminhados para identificação, quantificação através da contagem de Unidades Formadoras de Colônia (UFC) e provas de antibiograma com os antibióticos doxiciclina, metronidazol, amoxicilina com ácido clavulânico, enrofloxacina, clindamicina e cefalexina. As bactérias isoladas no Grupo I foram Staphylococcus sp (83%), Staphylococcus aureus (17%), no Grupo II foram Escherichia coli (60%), Bastonetes (30%) e Staphilococcus sp (10%), no Grupo III, Escherichia coli (33%), Staphylococcus sp (20%), Staphylococcus aureus (13%), Cocos (6%), Bacilos (7%), Bastonetes (7%), leveduras (7%) e Pseudomonas spp. (7%). A bactéria mais comum no grupo I foi a Staphylococcus aureus e nos grupos II e II a mais comum foi a Escherichia coli. Em todos os grupos as bactérias identificadas foram as mesmas no dia 0 e +8. Dos antibióticos testados em antibiograma os resultados obtidos foram no Grupo I Doxiciclina (13%), Amoxicilina (33%), Cefalexina (27%), Metronidazol (0%), Enrofloxacino (20%) e Clindamicina (7%), no Grupo II Doxiciclina (31%), Amoxicilina (25%), Cefalexina (13%), Metronidazol (25%), Enrofloxacino (0%) e Clindamicina (6%) e no Grupo III Doxiciclina (16%), Amoxicilina (28%), Cefalexina (5%), Metronidazol (17%), Enrofloxacino (17%), Clindamicina (17%). A Amoxicilina foi o antibiótico que apresentou a melhor eficácia no grupo I e III e a Doxiciclina no grupo II. Concluiu-se então que as formulações desenvolvidas não foram eficazes como coadjuvantes no tratamento da gengivite induzida pela doença periodontal.por
dc.formatapplication/pdf*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropor
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.subjectGengivitepor
dc.subjectdoença periodontalpor
dc.subjectgel mucoadesivopor
dc.subjectcavidade oralpor
dc.subjectGingivitiseng
dc.subjectPeriodontal diseaseeng
dc.subjectmucoadhesive geleng
dc.subjectoral cavityeng
dc.titleUso do gel de Quitosano mucoadesivo contendo Doxiciclina associada ou não ao Meloxicam no controle da progressão da gengivite em cães portadores de doença periodontalpor
dc.title.alternativeUse of Mucosal Chitosan gel containing Doxycycline associated or not to Meloxicam without control of progression of gingivitis in dogs with periodontal diseaseeng
dc.typeTesepor
dc.description.abstractOtherThe periodontal disease is the highest occurrence condition in the pet clinic. Its affect mainly older animals because of its characteristic of chronicity. Among the clinical signs, gingivitis is the first to be observed. The main of this study was the use of mucosal Chitosan gel containing Doxycycline associated or not to Meloxicam without control of progression of gingivitis in dogs with periodontal disease. To evaluate the treatment was used clinical and histopathologic rating. Were used 18 Beagle dogs with gingivitis secondary to periodontal condition divided into three experimental groups. Group I – animals treated with placebo. Group II – Animals treated with mucoadhesive chitosan gels containing doxycycline. Group III - Animals treated with mucoadhesive chitosan gels containing doxycycline and meloxicam. The animals were treated for seven days in the gingival margin of the right maxilla every twelve hours. During the clinic evaluation only the group II had improved. During the histopathologic evaluation only the group II had improved at clinical scores however, there is no statistical difference with the other groups. Samples of free gingival fragment and swabs from the margin and gingival sulcus of the upper right maxilla of each animal were sent for identification, quantification through counting of Colony Forming Units (CFU) and antibiotic tests with the antibiotics doxycycline, metronidazole, amoxicillin plus clavulanic acid, enrofloxacin, clindamycin and cephalexin. The bacteria isolated in Group I were Staphylococcus aureus (17%) in Group II were Escherichia coli (60%), Rods (30%) and Staphylococcus sp (10%) in Group III, Escherichia spp. Coli (33%), Staphylococcus sp (20%), Staphylococcus aureus (13%), Coccus (6%), Bacilli (7%), Rods (7%), Yeasts (7%) and Pseudomonas spp. (7%). In all those groups the bacteria identified were the same at day 0 and +8. The antibiotics tested in antibiogram, the results obtained were in Group I Doxycycline (13%), Amoxicillin (33%), Cephalexin (27%), Metronidazole (0%), Enrofloxacin (20%) and Clindamycin (28%), Amoxicillin (31%), Amoxicillin (25%), Cephalexin (13%), Metronidazole (25%), Enrofloxacin (0%) and Clindamycin), Cephalexin (5%), Metronidazole (17%), Enrofloxacin (17%), Clindamycin (17%). It was therefore concluded that the formulations developed were not effective as adjuvants in the treatment of gingivitis induced by periodontal disease.eng
dc.contributor.advisor1Fernandes, Julio Israel
dc.contributor.advisor1IDCPF: 082.100.187-60por
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/9221592908532393por
dc.contributor.referee1Almeida, Milton Begeres de
dc.contributor.referee2Dutra, Ary Elias Aboud
dc.contributor.referee3Peluso, Yara
dc.contributor.referee4Paiva, Jonimar Pereira
dc.creator.IDCPF: 766.675.457-49por
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/9516594647600093por
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.departmentInstituto de Veterináriapor
dc.publisher.initialsUFRRJpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Medicina Veterinária (Patologia e Ciências Clínicas)por
dc.relation.referencesALI, J.; PRAMOD K.; TAHIR, M.A.; ANSARI, S.H. Autoimmune responses in periodontal diseases. Auto immuny Review, n.10, p.426-31. 2011. ANDRADE, D.P.; PALLO, D.; FORTE, L.F.B.P.; RICARDO, L.H. A doxiciclina como adjuvante no tratamento da periodontite. Internal Journal Dentististry, Recife, v. 8, n. 4, p: 202-210, 2009. ANDRADE, S. F. Manual de Terapêutica Veterinária. 9 ed. São Paulo: Roca Ed. 2008. 936p. BAILIE, W. E.; STOWE, E. C.; SCHMITT, A. M. Aerobic Bacterial Flora of Oral and Nasal Fluids of Canines with Reference to Bacteria Associated with Bitest. Journal of Clinical Microbiology, p. 223-231, 1978. BAKER, E.W. Anatomia da cabeça e pescoço para a odontologia. 1 ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan. 2012. 384 p. BATH-BALOG, M.; FEHRENBACH, M. Anatomia, histologia e embriologia dos dentes e estruturas orofaciais. São Paulo: Editora Manole, 2008. 403p. BATLOUNI, M. Anti-inflamatórios não esteroides: efeitos cardiovasculares, cérebro vasculares e renais. Arquivo Brasileiro de Cardiologia, 94, p.556-63, 2010. BRAGA, C.A.S.B. et al. Isolamento e identificação da microbiota periodontal de cães da BRUNTON, L.L.; KNOLLMAN, B.C.; CHABNER, B.A. As Bases Farmacológicas da Terapêutica de Goodman e Gilman. 12 ed. Porto Alegre: ArtMed Editora, 2012. 2112p. BURNS, K.M.; LOGAN, E.I. Homecare prevention of periodontal disease. Proceedings of the North American Veterinary Conference p.31-34. 2007. CAFIERO, C.; MATARASSO, S. Predictive, preventive, personalized and participatory periodontology: ‘the 5Ps age’ has already started. EPMA Journal, v.4, n.1, p. 16, 2013. CARRANZA, F.A.; NEWMAN, M.G. Periodontia clínica. 11 ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2012. 54 CHANGIN, O.; KUNKYU, L.; YEOTAEK, C.; SANG-WON, L.; SEUNG-YONG, P.; HANG-SEON, S. Comparison of the Oral Microbiomes of Canines and Their Owners Using Next-Generation Sequencing PLoS One, v.10, n.7, 2015. CIFFONI, E.M.G.; PACHALY, J.R. Considerações históricas e legais sobre a odontologia veterinária no Brasil. Arquivo de ciência veterinária e zoologia, UNIPAR, n.4, v.1, p. 49-54, 2001. CLSI. 2008. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically, Tenth Edition, informational supplement. M07–A10. 2015. 15p. COLMERY, B.H. Profilaxia e cirurgia dental. In: BOJRAB, M.J. Cirurgia de pequenos animais 2a. ed. Rio de Janeiro: Roca, p.126-138. 1983. Laboratory Standards Institute, Wayne, PA.DAHL, G.; CHARALAMPAKIS, G; ABRAHAMSSON, I.; BENGTSSON, L.; FALSEN,E. Predominant bacterial species in subgingival plaque in dogs. Journal of Periodontology and Research, n. 47, p. 354–364, 2012. DE FERRARI, M.E.G.; MUNOZ, A.C. Histologia e embriologia bucodental. 2 ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2006. 432p. DENTINO, A. Principles of periodontology. Periodontology, v.61, n.1, p. 16-53, 2013. DIAS, J.A; DIAS, C.A.M.D.; TERRA, F.S.; COSTA, R.D.; COSTA, M.D.; ZANETTI, H.H.V. Avaliação do índice de placa bacteriana e sua relação com a condição física e o acondicionamento das escovas dentais. Odontologia Clínica e Científica v.9, n.3. p. 253-255. 2012. DINGUESLESKI, A.H. Associação de agentes fitoterápicos em dentifrícios. Revista Gestão e Saúde, v. 13, p. 11-16, 2015. DRAKE, R.L.; VOGL, A.W.; MITCHELL, A.W.M., Gray’s anatomia básica, 1 ed. Rio de Janeiro: Elsevier editor, 2013. 610 p. DYCE, K.M.; SACK, W.O.; WENSING, C.J.G. Tratado de Anatomia Veterinária. Rio de Janeiro: Elsevier editora, 2010. 856p. 55 EBERHARD, J. Experimental gingivitis induces systemic inflammatory markers in young healthy individuals: a single-subject interventional study. PLoS One, v. 08, n. 2, id. 55265, 2013. ELEY, B. M.; SOORY, M.; MANSON, J. D. Periodontia. 6 ed. Rio de Janeiro: Elsevier editor, 2012. 488p. FELIZARDO, K. R. An evaluation of the expression profiles of salivary proteins lactoferrin and lysozyme and their association with caries experience and activity. Revista Odonto Ciência, v. 25, n.4, p. 344-349, 2010. FERREIRA, E.B.; A.BREU, T.Q.; OLIVEIRA, A.E.F. Modelos assistenciais em saúde bucal no Brasil: revisão de literatura. Revista de Pesquisa e Saúde, v.12, n.3 p.37-42. 2011. FORD, R.B.; MAZZAFERRO, E.M. Manual de procedimentos veterinários e tratamento emergencial segundo Kirk e Bistner. 8 ed. São Paulo: Roca, 2007. p.279-365. FREEMAN, L. M.; ABOOD, S. K.; FASCETTI, A. J.; FLEEMAN, L. M.; MICHEL, K. E.; LAFLAMME, D. P.; BAUER, C.; KEMP, B. L.; VAN DOREN, J. R.; FIGEIRAS, A.; CARVALHO, R.; VEIGA, F.; Sistemas muco adesivos de administração de fármacos na cavidade oral: Mecanismo de muco adesão e polímeros mucoadesivos. In: Revista Lusófona de Ciências e Tecnologia da Saúde. 2007. GAETTI-JARDIM, J.E. Susceptibilidade de bactérias anaeróbias isoladas de infecções periplantares e periodontais ao metronidazol, lincosaminas, macrolídeos e tetraciclina. Odonto Ciência, v.22, n.56, p.131-137, 2007. GARROS, I. C.; CAMPOS, A. C. L.; TÂMBARA, E. M.; TENÓRIO, S. B.; TORRES, O. J. M.; AGULHAM, M. A.; ARAÚJO, A. C. F.; SANTIS-ISOLAN, R. M. O.; ARRUDA, E. C. M. Extrato de Passiflora edulis na cicatrização de feridas cutâneas abertas em ratos: estudo morfológico e histológico. Acta Cirúrgica Brasileira, v. 21 (Suplemento 3), 2006. GEBRAN, M.P. GEBERT, A.P. Controle químico e mecânico de placa bacteriana. Tuiuti: Ciência e Cultura, v. 3, n. 26, p. 45-58, Curitiba, 2012. 56 GILHOTRA, R. M.; IKRAM, M.; SRIVASTAVA, S.; GULHOTA, N. A clinical perspective on mucoadhesive buccal drug delivery systems. Journal of Biomedical Research, v.28, n.2, p. 81-97. 2014. GIOSO, M.A. Odontologia veterinária para o clínico de pequenos animais. 2 ed. São Paulo: Manole p.1-23. 2007. GORDON, M.J.; WALKER, B.C. Current status of systemic antibiotic usage in destructive periodontal desease. Journal of Periodontology, v.64, p.760-771, 1993. GORREL, C. Odontologia em pequenos animais. 1 ed. Rio de Janeiro: Ed. Elsevier, 2010. 239p. HARPENAU, L.A.; KAO, R.T.; LUNDERGAN, W.P.; SANZ, M. Periodontia e implantodontia: algoritmos de Hall para a prática clínica 1ª ed. Ed. Santos,448p. 2016. HARVEY, C.E. Distúrbios orais, faringeanos e das glândulas salivares. In: HIGHFIELD, Diagnosis and classification of periodontal disease. Australian Dental Journal, v.54, supplemento 1, p.11-26. 2005. HE, Z.X.; WANG, Z.H.; ZHANG, H.H.; PAN, X.; SU, W.R.; LIANG, D. Doxycycline and hydroxypropyl-beta-cyclodetrin complex in poloxamer thermal sensitive hydrogel for ophthalmic delivery. Acta Pharmaceutica Sinica B, v.1, p.254–60. 2011. HENNET, P.R.; HARVEY, C.E. Anaerobes in periodontal disease in the dog: a review. Journal of Veterinary Dentistry, v. 8, n. 2, p. 18-21, 1991. HILLAN-DANDAN, R.; BRUTON, L.L. Manual de farmacologia e terapêutica Goodman e Gilman. 2 ed. Porto Alegre: Artmed, 2015. 1215 p. HOLMSTROM, S.E. Veterinary Dentistry: a team approached. 2 ed. Rio de Janeiro: Editora Elsevier, 2013. 415p. JACOMAZZI, A.M.; SILVA, C. O.; LIMA A.F.M. Análise clínica da aplicação do gel de doxiciclima a 10% em sítios que não responderam ao tratamento periodontal. Portal de Revistas Científicas da Saúde – Periodontia, v. 16, n. 4, p.28-33, 2006. JAUHARI, S. A mucoadhesive in situ gel delievery system for paclikxeel, AAPS Pharmacology Science and Technology, v.2, n.7, 2006. 57 KATCHBURIAN, E.; ARANA, V. Histologia e embriologia oral: texto-atlas-correlações clínicas. 3 ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2012. 300p. KEEGAN, G.; SMART, J.; INFRAM, M.; BARNES, L.; REES, G.; BURNETT, G. An in vitro assessment of bioadhesive zinc/carbomer complexes for antimicrobial therapy within the oral cavity. International Journal of Pharmaceutics, v. 340, p. 92 – 96, 2007. KERTESZ, P. A colour atlas of veterinary dentistry and oral surgery London: Editora Mosby. 1993. 312p. KILLOY, W.J.; POLSON, A.M. Controlled local delivery of antimicrobials in the treatment of periodontitis Dental. Clinic North America, v.42, n.2, 1998. KIM, S.E.; KIM, S.; JEONG, M.; LEE, Y.;DVM; AHN, J. T.; PARK, Y.W.; AHN, J.A.; LEE, E.; RYU, D.Y.; SEO, K. Experimental determination of a subantimicrobial dosage of doxycycline hyclate for treatment of periodontitis in Beagles. American Journal of Veterinary Research, v. 74, n. 1, p.130-135, 2013. KINANE, D.F.; PRESHAW, P.M.; LOOS, B. G. Host-response: understanding the cellular and molecular mechanisms of host-microbial interactions – Consensus of the Seventh European Workshop on Periodontology. Journal of Clinic Periodontology, n.38 suppl. 11, p.44–48. 2011. LANDOVÁ, H.; DEANEK, Z.; GAJDZIOK, J.; VETCHÝ, D.; STEMBÍREK, J. Mucoadhesive films as perspective oral dosage form. Ceska Slov Farm, v.62, p. 4-11. 2013. LINDHE, J.; KARRING, T.; LANG, N.P. Tratado de Periodontia Clínica e Implantodontia Oral. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 5ª edição, 2010. 1048p. LIPPOLIS, M.; BENITES, N. R.; MELVILLE, P. A. Avaliação da microbiota bacteriana aeróbica isolada da cavidade oral de cães errantes do município de Guarulhos, estado de São Paulo. Arquivos do Instituto Biológico, v.71, (supl.), p.516-518, 2004. LOGAN, E.I. Dietary influences on periodontal health in dogs and cats. Veterinary Clinics Small Animal Practice, n. 36, 1385-1401. 2006. MAJOR, M.A.Jr.; STANLEY, J. N. Wheeler Anatomia Dental, Fisiologia e Oclusão. 9 ed. Rio de Janeiro: Elsevier Ed., 2012. 360 p. 58 MANAKIL, J. Periodontal Disease – A clinical guide. Croatia Ed., 2012. 380p. MARCHIONNI, A.M.T.; PAGNONCELLI, R.M.; REIS, S.R.A. Influência do meloxican e dexametasona no processo inflamatório e no reparo tecidual. Revista Odonto Ciência - Faculdade de Odontologia PUCRS, v. 21, n. 51, 2006. MAYER, M. P. A.; MORETHSON, P.; LONGO, P. Controle das infecções. In: Farmacologia para clínica odontológica. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2015. p. 116-137. MAZZARINO, L.; BORSALI, R. LEMOS-SENNA, E. Mucoadhesive films containing chitosan-coated nanoparticles: A new strategy for buccal curcumin release. Journal of Pharmaceutical Sciences, n.103, p. 3764-3771. 2014. MEIRA, A.L.T. Uso de antimicrobianos locais em periodontia: Uma abordagem crítica. Periodontia, v.12, n.1, p.83-89, 2007. MIANI, P. K.; NASCIMENTO, C.; SATO, S.; FILHO, A. V.; FONSECA, M. J. V.; PEDRAZZI, V. In vivo evaluation of a metronidazole-containing gel for the adjuvant treatment of chronic periodontitis: preliminary results. European Journal of Clinic Microbiology Infection, v. 31, p.1611-1618, 2012. NANCI, A. Ten Cate, histologia oral: desenvolvimento, estrutura e função. 8 ed. Rio de Janeiro: Elsevier, 2013. 400p. NEVILLE, B.W.; DAMM, D.D. Patologia oral e maxilofacial. 4 ed. Rio de Janeiro: Elsevier, 2016. 992p. NEWMAN, M.G.; TAKEY, H.; KLOKKEVOLD, P.R.; CARRANZA, F.A. Periodontia Clínica. 11 ed. Rio de Janeiro: Elsevier, 2012. 1328p. NIEMIEC, B.A. Veterinary periodontology. 1 ed. Wiley-Blackwell Ed. 358p. 2013. NISHIYAMA, S. A. B. et al. Detection of putative periodontal pathogens in subgingival specimens of dogs. Brazilian Journal of Microbiology, n. 38, p. 23-28, 2006. NOBLE S.; BALFOUR, J.A. Meloxicam: new drug profile. v. 51, n.3, p. 424- 430. 1996. 59 NUNES, M.C.P.; CASATI, M.Z.; VILLAPAND, O.K.T.; CIRANO, F.R. Contribuição do estudo do biofilme dentário para o tratamento das doenças periodontais. Revista do Instituto de Ciência e Saúde, v. 25, n.1, p. 55- 61. 2007 OHLRICH, E. J.; CULLINAN, M. P.; SEYMOUR, G. J. The immunopathogenesis of periodontal disease. Australian Dentistry Journal, v.54, n.1, p.2-10, 2009. PACHALY, J. R. Odontoestomatologia em animais selvagens. In: CUBAS, Z.S.; SILVA, J.C.R.; CATÃODIAS, Z.S. Tratado de animais selvagens. São Paulo: Editora Roca 2006. cap.64. PADERNI, C.; COMPILATO, D.; GIANNOLA, L.I.; CAMPISI, G. Oral local drug delivery and new perspectives in oral drug formulation. Oral Medicini, v.114, n. 3, 2012. PAPICH, M.G. Manual Saunders Terapia Veterinária – pequenos e grandes animais. 3 ed. São Paulo: Rocca, 2011. 936p. PAVLICA, Z. Periodontal disease burden and pathological changes in organs of dogs. Journal of Veterinary Dentistry, v.25, p.97-105, 2008. PEDRAZZI, V.; SOUSA, V. P.; PIERRE, M. B. R.; CID, Y. P. In Vitro Characterization of Chitosan Gels for Buccal Delivery of Celecoxib: Influence of a Penetration Enhancer. AAPS PharmSciTech, v.1, p. 1-11, 2012. PELCZAR JR., J.M.; KRIEG, N. R.; CHAN, E.C.S. Microbiologia, conceitos e aplicações. 2 ed. São Paulo: Pearson, 2005. PEREIRA MAIA, E. C. et al. Tetraciclinas e glicilciclinas: uma visão geral. Revista Química Nova, São Paulo, v. 33, n. 3, p. 700-706, 2010. POLKOWSKA, I.; SOBCZYNSKA, R.A.; GOLYNSKA, M.. Analysis of gingival pocket microflora and biochemical blood parameters in dogs suffering from periodontal disease 2014. raça pastor alemão. Ciência Rural, v.35, n.2, p.385-390, 2005. RIGGIO, M.P.; LENNON, A.; TAYLOR, D.J.; BENNET, D. Molecular identification of bacteria associated with canine periodontal disease. Veterinary Microbiology, n.150, p. 394–.2011. 400p. 60 ROY, S. K.; PRABHAKAR, B. Bioadhesive polymeric platforms for transmucosal drug delivery systems - a Review. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, v.9, n.1 p.91-104. 2010. ROZA, M. Princípios de odontologia veterinária. 1 ed., Ed. do Autor, 2012. 182p. RUIZ, S.M.A.; OLVERA, L.G.; BERNARD, M.J.B.; CHACON, S.C.C.; ESTRADA, D.V. Comparative pharmacokinetics of a new oral long-acting formulation of doxycycline hyclate: A canine clinical trial. European Journal of Pharmaceutical Sciences, n. 80, p.9-15, 2015. SAMARANAYAKE, L. P. Fundamentos de microbiologia e imunologia na odontologia Rio de Janeiro: Elsevier, 2013. 382p. SAMUELSON, D. A. Tratado de histologia veterinária. Rio de Janeiro: Elsevier, 2007. 527 p. SANGEETHA, S. Mucosa as a route for systemic drug delivery. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences, v.1, n. 10, p.178-187. 2010. SCHENKEIN, H.A. Host responses in maintaining periodontal health and determining periodontal disease. Periodontology, v.40,p. 77–93. 2006. SLOTS, J. Journal of Periodontology: past, present, perspectives. n. 62, v.1, p.7-19. 2013. SLOTS, J. Periodontal therapy in humans: Microbiologica and clinica effects of a single course of periodontal scaling and root planning and adjunctive tetracyclin therapy. Journal of Periodontology, v.50, p.495-509, 1979. SPASOVSKI, S.; BELAZELKOSKA. Z.; ANETA, M.; STOJANOVSKA, A.; NIKOLOVSKA, V.R.; MURATOVSKA, I.; SPASOVA, N.T.; DZIPUNOVA, B.; NIKOLOVSKI, B. Clinical Therapeutic Effects of the Application of Doxycycline in the Treatment of Periodontal Disease. Journal of Medical Science, v.4, n.1, p. 152 – 157, 2016. SPINOSA, H.S. Farmacologia aplicada à medicina veterinária. 5 ed, Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2011. 848 p. 61 SYED, S.A.; SVANBERG, M.; SVANBERG, G. The predominant cultivable dental plaque flora of beagle dogs with gingivitis. Journal of Periodontal Research, v.15, p.123-136, 1980. TANGRI, P. Mucoadhesive drug delivery: Mechanism and methods of evaluation. International Journal of Pharma and Bio Sciences, n.2, v.1, p.458-467. 2011. THOMAS, H. F.; HASSELL, M. Manual de Periodontia: fundamentos, diagnóstico e preluation Journal of venção. Porto Alegre: Artmed, 2008. 352p. TUTT, C. Small Animal Dentistry: a manual of techniques. Blackwell Publishing Iowa – EUA. 2006. 288p. VERSTRAETE, F.J.M. Oral and maxillofacial surgery in dogs and cats. 1 ed. Rio de Janeiro: Saunders Ed. 2012. 608p. VILLANOVA, J.C.O.; ORÉFICE, R.L.; CUNHA, A.S. Aplicações farmacêuticas de polímeros Polímeros: Ciência e Tecnologia, vol. 20, n. 1, p. 51-64, 2010 WALLIS, C.; MARSCHALL, M.; COLYER, A.; O’FLYNN, C.; DEUSCH, O.; HARRIS, S. A longitudinal assessment of changes in bacterial community composition associated with development of periodontal disease in dogs Elsevier. Veterinary Microbiology, v.181, Issue 3-4, p.271-282, 2015. WHYTE, A.; OBON, J.; LEUZA, A.; WHYTE, J.; MONTEAGUDO, L.V. Canine severe maxilla and mandible osteolysis associated with periodontal disease unperceived by proprietors. Pakistan Veterinary Journal, v.33, 262–264, 2014. WILLOUGHBY, K. N. Disease prevalence among dogs and cats in the United States and Australia and proportions of dogs and cats that receive therapeutic diets or dietary supplements. Journal of the American Veterinary Medical Association, Schaumburg, v. 229, n. 4, p. 531-534, 2006. WOLF, H.F.; HASSELL, T.M. Manual de periodontia – fundamentos, diagnóstico, prevenção e tratamento. 1 ed. Porto Alegre: Ed. Artmed, 2008. 352p. 62 ZAMBORIL, C.; CUMPANASOIUL, C.; HUTUL, I.; LIKER M.; GURBAN, C.; TIRZIUL, E. The pathogenic microflora and microbial interactions in oral cavity in dogs scientific papers. Animal Science and Biotechnologies, v.47, n. 1, 2014.por
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