logo RIMA
logo UFRRJ

  1. Repositório de Múltiplos Acervos da UFRRJ
  2. Teses e Dissertações
  3. Programa de Pós-Graduação em Química
  4. Doutorado em Química
Please use this identifier to cite or link to this item: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/10246
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.authorSousa, Juliana Paes Leme de Mello
dc.date.accessioned2023-12-21T18:59:30Z-
dc.date.available2023-12-21T18:59:30Z-
dc.date.issued2019-08-26
dc.identifier.citationSOUSA, Juliana Paes Leme de Mello. Estudo da composição química, do potencial antioxidante e da atividade antimicrobiana da própolis marrom Brasileira e a aplicação de extratos de própolis em filmes de carboximetilcelulose sódica. 2019. 150f. Tese (Doutorado em Química). Instituto de Química, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ.por
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/10246-
dc.description.abstractA própolis é um produto natural que tem sido empregado no tratamento de enfermidades desde os tempos antigos. A presença de diversas substâncias fenólicas explica, em parte, a variedade das propriedades biológicas e terapêuticas relatadas na literatura. Destacam-se os flavonoides, ácidos cinâmicos e seus ésteres. Visando ampliar e produzir conhecimento sobre a própolis brasileira, faz-se necessário analisar este produto de forma a caracterizar sua identidade, sua composição e avaliar seus efeitos na saúde quando adotados pela população. O objetivo desse trabalho foi analisar o perfil químico por cromatografia líquida de alta eficiência (CLAE-DAD), comparar os perfis dos extratos obtidos por UV-Vis, determinar o teor de ceras, bálsamos e das substâncias fenólicas, avaliar a capacidade antioxidante e a atividade antimicrobiana frente à Staphylococcus aureus de dez extratos de própolis marrom (Apis mellifera) obtidas do município de Japira, Norte do Paraná. Além disso, foi realizado a preparação e a caracterização de filmes de carboximetilcelulose sódica (NaCMC) impregnados com extratos de própolis marrom. Para preparar os extratos, quatro métodos de extração foram realizados: maceração dinâmica a temperatura ambiente; maceração dinâmica a 50ºC; extração em banho de ultrassom a temperatura ambiente e extração com ultrassom usando sonda de imersão; com dois tipos de solventes (etanol e metanol P.A). De modo geral, o perfil químico dos extratos de própolis marrom por CLAE-DAD foi semelhante e as principais substâncias identificadas foram: ácido clorogênico, cafeico, ferulico, p-cumárico e rosmarínico, além dos flavonoides pinobanksina, canferol e canferide. Dentre as substâncias fenólicas quantificadas nos extratos de própolis marrom a que obteve maior valor foi o canferide tanto para os extratos etanólicos de própolis (obtidos por extração com ultrassom usando sonda de imersão 39,58 ±14,33 mg100mg-1 de extrato) quanto para os extratos metanólicos de própolis (obtidos por extração com maceração dinâmica a 50ºC 34,86±3,29 mg100mg-1 de extrato). O que pode sugerir o canferide como um biomarcador das amostras de própolis marrom estudadas nesse trabalho. Quando comparados os extratos de própolis marrom com os extratos de própolis verde, a análise quimiométrica mostrou diferença entre os solventes usados na extração, bem como entre os tipos de própolis. Quanto a atividade antimicrobiana frente a S. aureus, todos os extratos de própolis marrom e verde se mostraram capazes de promover inibição desta bactéria Gram-positiva no teste de difusão em ágar. Os filmes NaCMC impregnados com extrato de própolis verde apresentaram se mostraram promissores no preparo de possíveis de curativos, pois apresnetaream transparência, flexibilidade, liberação imediata das substâncias incorporadas e resistência térmica,por
dc.description.sponsorshipCAPES - Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superiorpor
dc.formatapplication/pdf*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropor
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.subjectprópolis marrompor
dc.subjectprópolis verdepor
dc.subjectcapacidade antioxidantepor
dc.subjecthidrogelpor
dc.subjectbrown propoliseng
dc.subjectgreen propoliseng
dc.subjectantioxidant capacityeng
dc.subjecthydrogeleng
dc.titleEstudo da composição química, do potencial antioxidante e da atividade antimicrobiana da própolis marrom Brasileira e a aplicação de extratos de própolis em filmes de carboximetilcelulose sódica.por
dc.title.alternativeStudy of the chemical composition, antioxidant potential and antimicrobial activity of Brazilian brown propolis and the application of propolis extracts in sodium carboxymethylcellulose films.eng
dc.typeTesepor
dc.description.abstractOtherPropolis is a natural product that has been used in the treatment of diseases since ancient times. The presence of several phenolic substances explains, in part, the variety of biological and therapeutic properties reported in the literature. Of note are flavonoids, cinnamic acids and their esters. Aiming to expand and produce knowledge about Brazilian propolis, it is necessary to analyze this product in order to characterize its identity, its composition and evaluate its effects on health when adopted by the population. The objective of this work was to evaluate the chemical profile by high performance liquid chromatography (HPLC-DAD), wax and balm content, comparison of UV-Vis spectral data profiles, phenolic content, antioxidant capacity and Antimicrobial activity against Staphylococcus aureus from ten extracts of brown propolis (Apis mellifera) obtained from Japira, Northern Paraná, removed by the scraping method in November 2013. As well as the preparation and characterization of sodium carboxymethylcellulose (NaCMC) films impregnated with extracts of brown propolis. Four extraction methods were performed: dynamic maceration at room temperature; dynamic maceration at 50ºC; extraction at room temperature ultrasound bath and ultrasound extraction using immersion probe; as well as two types of solvents (Ethanol and Methanol P.A) in order to optimize yield. Generally, the chemical profile of extracts HPLC-DAD propolis was similar and the main identified substances were: chlorogenic, caffeic, ferulic, p-coumaric and rosmarinic acid, besides the flavonoids pinobanksina, canferol and canferide. Among the phenolic substances quantified in brown propolis extracts with the highest value was canferide for both ethanolic propolis extracts (obtained by ultrasound extraction using immersion probe 39.58 ± 14.33 mg100mg-1 extract) and methanolic propolis extracts (obtained by dynamic maceration extraction at 50ºC 34.86 ± 3, 29 mg100mg-1 extract).What can characterize canferide as a biomarker of the propolis samples studied in this work. When comparing brown propolis extracts with green propolis extracts, the chemometric analysis showed a difference between the extraction solvents as well as between the propolis types. Regarding antimicrobial activity against S. aureus, all brown and green propolis extracts were able to promote inhibition of this Gram-positive bacterium in the agar diffusion test. NaCMC films and propolis extract impregnated NaCMC films showed adequate results for dressing purposes such as transparency, flexibility, immediate release of embedded products and thermal resistance.eng
dc.contributor.advisor1Castro, Rosane Nora
dc.contributor.advisor1ID958.067.337-34por
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/5479814788308057por
dc.contributor.advisor-co1Oliveira, Renata Nunes
dc.contributor.advisor-co1ID055.175.607-17por
dc.contributor.referee1Castro, Rosane Nora
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/5479814788308057por
dc.contributor.referee2Moreira, Davyson de Lima
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/7863875298510179por
dc.contributor.referee3Martins, Roberto Carlos Campos
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/7755348506902001por
dc.contributor.referee4Vega, Maria Raquel Garcia
dc.contributor.referee4Latteshttp://lattes.cnpq.br/5744415641833528por
dc.contributor.referee5Cid, Yara Peluso
dc.contributor.referee5Latteshttp://lattes.cnpq.br/0788912635109182por
dc.creator.ID114.624.457-64por
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/1178135752601803por
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.departmentInstituto de Químicapor
dc.publisher.initialsUFRRJpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Químicapor
dc.relation.referencesAFROUZAN, H.; TAHGHIGHI, A.; ZAKERI, S.; ES-HAGHI, A. Chemical Composition and Antimicrobial Activities of Iranian Propolis. Iran Biomed J. , v.22 (1), p.50-65, 2018. AGUIAR, G. R.; DE LEMOS, T. L. G.; DORNELAS, C. A.; DA SILVA, A. M.; DE ALMEIDA, M. C. S.; FERREIRA, D. A.; MONTE, F. J. Q.; BRAZ-FILHO, R.; DE OLIVEIRA, I. R.; DO NASCIMENTO, P. G. G. Estudo Químico e Avaliação Biológica da Própolis Vermelha de Alagoas. Revista Virtual Química. 2018. ALANGE, V. V.; BIRAJDAR, R. P. & KULKARNI, R. V. Novel spray dried pH-sensitive polyacrylamide-grafted-carboxymethylcellulose sodium copolymer microspheres for colon targeted delivery of an anti-cancer drug, Journal of Biomaterials Science. Polymer Edition, v.28, p.139-161, 2016. 135 ALDAY-PROVENCIO, S.; DIAZ, G.; RASCON, L.; QUINTERO, J.; ALDAY, E.; ROBLES-ZEPEDA, R.; GARIBAY-ESCOBAR, A.; ASTIAZARAN, H.; HERNANDEZ, J.; VELAZQUEZ, C. Sonoran Propolis and Some of its Chemical Constituents Inhibit in vitro Growth of Giardia lamblia Trophozoites. Planta Medica , v.81(09), p.742-747, 2015. ALMASI, H., GHANBARZADEH, B., & ENTEZAMI, A. A. Physicochemical properties of starch–CMC–nanoclay biodegradable films. International Journal of Biological Macromolecules, v.46, p.1–5, 2010. ANDRADE, J. K. S., MARINA, D., SANTOS DE OLIVEIRA, C., NUNES, M. L., & NARENDRA, N. Evaluation of bioactive compounds potential and antioxidante activity of brown, green and red propolis from Brazilian northeast region. Food Research International, v.101, p.129–138, 2017. ANVISA. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Resolução-RDC nº 31, de 11 de agosto de 2010 - Dispõe sobre a realização dos Estudos de Equivalência Farmacêutica e de Perfil de Dissolução Comparativo. Diário Oficial da União, Brasília, DF, 12 de agosto de 2010. ARAÚJO, M. E. M. B. Biossíntese de novos derivados acilados de flavonoides e avaliação in vitro de sua bioatividade. Tese de Doutorado, Programa de Pós-Graduação Stricto Sensu em Ciências da Saúde da Universidade São Francisco. 2016. ARAÚJO, K. S. S.; JÚNIOR, J. F. S.; SATO, M. O.; FINCO, F. D. B. A.; SOARES, I. M.; BARBOSA, R. S.; ALVIM, T. C.; ASCÊNCIO, S. D.; MARIANO, S. M. B. Physicochemical properties and antioxidant capacity of propolis of stingless bees (Meliponinae) and Apis from two regions of Tocantins, Brazil. Acta Amazonica, v.46(1), p.61-68, 2016. ATKINS, P. W. Physical chemistry, Oxford University. Press 5ª ed., p.985-995, 1993. AVELINO, L. O. & SANTOS, F.A. R. The presence of Fabaceae in the pollen profile of propolis produced in northeastern Brazil. Acta Botanica Brasilica, v.32, n.4, p.602-614, 2018. BANKOVA, V.S.; POPOV, S.S.; MAREKOV, N.I. A study on flavonoids of propolis. Journal of Natural Products, v.46, n.4, p.471-474, 1983. BANKOVA, V., BOUDOUROVA-KRASTEVA, G., SFORCIN, J. M., FRETE, X., KUJUMGIEV, A., MAIMONI-RODELLA, R., & POPOV, S. Phytochemical Evidence for the Plant Origin of Brazilian Propolis from São Paulo State. Zeitschrift Für Naturforschung C, V.54(5-6), p.401–405. 1999. BANKOVA, V. Chemical diversity of propolis makes it a valuable source of new biologically active compounds. Journal of ApiProduct and ApiMedical Science. vol. 1, p. 23–28, 2009. BANKOVA, V.; CASTRO, S. L. D.; MARCUCCI, M. Propolis: recent advances in chemistry and plant origin. Apidologie, v.31, n.1, p.3-15, 2000. 136 BANKOVA, V. Chemical diversity of propolis and the problem of standardization. Journal of Ethnopharmacology, v.100(1–2), p.114–117, 2005. BANSKOTA, A.H., TEZUKA, Y. & KADOTA, S. Recent progress in pharmacological research of propolis. Phytotherapy Research, v.15, n.7, p.561-71, 2001. BARBOSA, M. S. et al. Uso da propolis no controle in vitro da bactéria gram-positiva Staphylococcus aureus causadora de mastite em vacas leiteiras. Boletim de Indústria Animal, v. 71, n. 2, p. 122-126, 2014. BASAVARAJU, K. C.; JAYARAJU, J.; RAIS, S.; DAMAPPA, T. Miscibility studies os xanthan gum with gelatina in dilute solution. Journal of Applied Polymer Science. v.109, p.2491-2495, 2008. BASÍLIO, J. A. D. Desenvolvimento e avaliação in vitro da atividade cicatrizante de membranas poliméricas incorporadas com própolis vermelha. Tese de Doutorado – Universidade Federal de Alagoas, 2018. BAUER, A. W.; KIRBY, W. M. M.; SHERRIS, J. C.; TURK, M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. American journal of clinical pathology , v.45, p.493,1966. BAUNGRATZ, A. R. Extrato de própolis verde no controle de helmintos gastrointestinais de ovinos e caprinos: estudos in vitro e in vivo. Dissertação Mestrado em Zootecnia. Universidade Tecnológica Federal do Paraná, Dois Vizinhos, 2019. BITTENCOURT, M. L. F.; RIBEITO, P. R. R.; FRANCO, R. L. P.; HILHORST, H. W. M.; CASTRO, R. D.; FERNANDEZ, L. G. Metabolite profiling, antioxidant and antibacterial activities of Brazilian propolis: Use of correlation and multivariate analyses to identify potential bioactive compounds. Food Research International, v.76, p.449, 2015. BOGDANOV, S. “Propolis: Composition, Health, Medicine: A Review, 2012” http://www.bee hexagon.net/files/file/fileE/ Health/PropolisBookReview.pdf. Acessado em 01/05/2019 BOGDANOV, S. “Propolis: Composition, Health, Medicine: A Review,” Bee Product Science, 2011, http://www.beehexagon.net/. Acessado em 30/05/2019 BOHNEBERGER, G.; MACHADO, M. A.; DEBIASI, M. M.; DIRSCHNABEL, A. J.; RAMOS, G. O. Fitoterápicos na odontologia, quando podemos utilizá-los? Brazilian Journal of health Review, v. 2, n. 4, p. 3504-3517, 2019. BONVEHÍ, J. S.; GUTIÉRREZ, A. L.; J. AM. Antioxidant activity and total phenolics of propolis from the Basque Country (Northeastern Spain). Oil Chem. Soc., v. 88, p.1387, 2011. BRAND-WILLIAMS, W., CUVELIER, M. E., & BERSET, C. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. Lebens Wiss Technology (LWT), v.28(1), p.25–30. 1995. 137 BRASIL. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Instrução Normativa nº 3, de 19 de janeiro de 2001. Regulamentos técnicos de identidade e qualidade de apitoxina, cera de abelha, geleia real, geleia real liofilizada, pólen apícola, própolis e extrato de própolis. Diário Oficial da República Federativa do Brasil, Brasília, DF, 2001, Seção 1, 18. BRYAN, J.; REDDEN, J.; TRABA, C. The mechanism of action of Russian propolis ethanol extracts against two antibiotic-resistant biofilm-forming bacteria. Letters in Applied Microbiology, v. 62, p. 192-198, 2015. BURGARDT, V.C.F. Estudo das interações físico-químicas entre caseinomacropeptídeo e carboximetilcelulose: efeito do pH e concentração. Tese de Doutorado. Universidade Federal do Paraná. 2012. CABRAL, I. S. R.; OLDONI, T. L. C.; PRADO, A. et al Composição fenólica, atividade antibacteriana e antioxidante da própolis vermelha brasileira. Química Nova, v. 32, n. 6, p. 1523-1527, 2009. CAMPOS, J. V. Avaliação da Atividade Antimicrobiana e Análise Morfológica por Microscopia de Força Atômica (AFM) da ação de extratos de própolis verde sobre Staphylococcus aureus e Escherichia coli. Dissertação de Mestrado. Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia. 2017. CAPANEMA, N. S. V. et al. Superabsorbent crosslinked carboxymethyl cellulose-PEG hydrogelsfor potential wound dressing applications. International Journal of Biological Macromolecules, v. 106, p. 1218–1234, 2018. CARDOSO, J. B., IORIO, N. L. P., RODRIGUES, L. F., COURI, M. L. B., FARAH, A., MAIA, L. C., & ANTONIO, A. G. Influence of a Brazilian wild green propolis on the enamel mineral loss and Streptococcus mutans’ count in dental biofilm. Archives of Oral Biology, 65, 77 –81. 2016 CARDOZO, D. V.; MOKOCHINSKI, J. B.; SCHINEIDER, C. M.; SAWAYA, A. C. H. F.; CAETANO, I. K.; FELSNER, M. L.; TORRES, Y. R. Variabilidade Química de Geoprópolis Produzida pelas Abelhas sem Ferrão Jataí, Mandaçaia e Mandurí. Revista Virtual de Quimica, v.7, p. 2457, 2015. CASTALDO, S.; CAPASSO, F. Propolis, an old remedy used in modern medicine. Fitoterapia, v. 73, s. 1, p. S1-S6, 2002. CASTRO, M.L.; CURY, J.A.; ROSALEN, P.L. Própolis do sudeste e nordeste do Brasil: influência da sazonalidade na atividade antibacteriana e composição fenólica. Quimica Nova, v.30, p.1512-1516, 2007. CERRUTTI, B. M.; FROLLINI, E. Carboximetilcelulose como agente de estabilização de suspensões cerâmicas. Anais do 10o Congresso Brasileiro de Polímeros, 2009. 138 CHEMAT, F., ROMBAUT, N., SICAIRE, A.-G., MEULLEMIESTRE, A., FABIANO-TIXIER, A.-S., & ABERT-VIAN, M. Ultrasound assisted extraction of food and natural products. Mechanisms, techniques, combinations, protocols and applications. A review. Ultrasonics Sonochemistry, v.34, p.540–560, 2017. CHEN, M.; WEI, H.; ZHANG, C.; FANG, Y. Review: High performance liquid chromatography for the determination of flavonoids. Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences. V.20, p. 313–324, 2011. CID, Y.P. Desenvolvimento de sistemas de liberação mucoadesivos para o celecoxibe na quimioprevenção do câncer oral: influência da azona como promotor de penetração. Dissertação de Mestrado. Universidade Federal do Rio de Janeiro. 2009. CIRASINO, L.; PISATI, A.; FASANI, F. Contact der-matitis from propolis. Contact Dermatitis, v.16, p.110-111, 1987. CONTI, B.J., SANTIAGO, K.B., BÚFALO, M.C., HERRERA, Y.F., ALDAY, E., VELAZQUEZ, C., HERNANDEZ, J., SFORCIN, J.M. Modulatory effects of propolis samples from Latin America (Brazil, Cuba and Mexico) on cytokine production by human monocytes. J. Pharm. Pharmacol. v.65, p.1431-1438. 2015 COSTA, P. J. C. Avaliação in vitro da lioequivalência de formulações farmacêuticas. Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v.38(2), p.141–153, 2002. COTTICA, S. M.; SAWAYA, A. C. H. F.; EBERLIN, M. N.; FRANCO, S. L.; ZEOULA, L. M.; VISENTAINERA, J. V. Antioxidant activity and composition of propolis obtained by different methods of extraction. Journal of the Brazilian Chemical Society, v.22, p.929, 2011. DAUGSCH, A.; MORAES, C.S.; FORT, P.; PACHECO, E.; LIMA, I.B.; ABREU, J.A. & PARK, Y.K. Própolis Vermelha e sua origem botânica. Mensagem Doce. 2006. Disponível em http//:www.apacame.org.br; acesso em: 30 janeiro 2019. DAUGSCH, A.; MORAES, C.S.; FORT, P. & PARK, Y.K. Brazilian red propolis - chemical composition and botanical origin. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, v.5, p.435–441, 2008. DE LUCA, M. P.; FREIRES, I. A.; GALA-GARCÍA, A.; SANTOS, V. R.; VALE, M. P.; ALENCAR, S.M. The anti-caries activity and toxicity of an experimental propolis-containing varnish. Brazilian Oral Research, v.31, e.45, 2017. DE-MELO, A.A.M., MATSUDA, A.H., FREITAS, A.S., BARTH, O.M. and ALMEIDA-MURADIAN, L.B. Capacidade antioxidante da própolis. Pesquisa Agropecuária Tropical, v. 44, n. 3, p. 341-348, 2014. DE SOUSA, D. M. N. Prospecção fitoquímica, toxicidade in vitro e avaliação das atividades anti-radicalar e antibacteriana da geoprópolis da abelha jandaíra. Acta Veterinaria Brasilica, v.9, n.2, p.134-140, 2015. 139 DEMBOGURSKI, D. S. O.; TRENTIN, D. S.; BOARETTO, A. G.; RIGO, G. V.; SILVA, R. C.; TASCA, T.; MACEDO, A. J.; CAROLLO, C. A.; SILVA, D. B. Brown propolis-metabolomic innovative approach to determine compounds capable of killing Staphylococcus aureus biofilm and Trichomonas vaginalis. Food Research International, v.111, p.661-673, 2018. DEVEQUI-NUNES, D.; MACHADO, B. A. S.; BARRETO, G. DE A.; REBOUÇAS SILVA, J.; DA SILVA, D. F.; DA ROCHA, J. L. C.; UMSZA-GUEZ, M. A. Chemical characterization and biological activity of six different extracts of propolis through conventional methods and supercritical extraction. PLOS ONE, v.13, n.12, 2018. DEWICK, P. M. Medicinal Natural Products: A Biosynthetic Approach, 3rd Edition. 2009. DHARMALINGAM K. & ANANDALAKSHMI, R. Fabrication, characterization and drug loading efficiency of citric acid crosslinked NaCMC-HPMC hydrogel films for wound healing drug delivery applications. International Journal of Biological Macromolecules, v.134, p. 815-829, 2019. DHIVYA, S.; PADMA, V. V.; SANTHINI, E. Wound dressings – a review. Biomedicine (Taipei), v.5(4), p. 24-28, 2015. DJEUSSI, D. E., et al . Antibacterial activities of selected edible plants extracts against multidrugresistant Gram-negative bacteria. Altern. Med., v. 13, p. 164, 2013. Dos SANTOS, C.G; MEGIOLARO, F.L; SERRÃO, J.E; BLOCHTEIN, B. Morphology of the head salivary and intramandibular glands of the stingless bee Plebeia emerina (Hymenoptera: Meliponini) workers associated with propolis. Morphol Histol Fine Struct, v.102, p.137–143, 2009. EGHBALIFERIZ, S.; IRANSHAHI, M. Prooxidant activity of polyphenols, flavonoids, anthocyanins and carotenoids: updated review of mechanisms and catalyzing metals. Phytotherapy Research, v.30, p.1379, 2016. FARIAS, S. S.; SIQUEIRA, S. M. C.; CRISTINO, J. H. S.; ROCHA, J. M. Biopolímeros: uma alternativa para promoção do desenvolvimento sustentável. Revista Geonorte, v. 7, n. 26, p. 61 - 77, 2016. FELLOWS, P. J. Tecnologia do Processamento de Alimentos - 4.ed.: Princípios e Prática. Artmed Editora. 2018. FELTON, L. A. Mechanism of polymeric film formation. Internacional Journal os Pharmaceutics, v.457, p.423-427, 2013. FERNANDES, F.H.; GUTERRES, Z.R.; GARCEZ, W.S.; LOPES, S.M.; CORSINO. J.; GARCEZ, F.R. Assessment of the (anti)genotoxicity of brown própolis extracts from Brazilian Cerrado biome in a Drosophila melanogaster model. Food Research International, v.20, p.20-26, 2014. 140 FERNANDES, F. F.; DIAS, A. L. T.; RAMOS, C. L.; IKEGAKI, M.; SIQUEIRA, A.; FRANCO, M. C. The .in vitro.antifungal activity evaluation of propolis G12 ethanol extract on Cryptococcus neoformans. Ver Inst MedT, v.49, n.2, p.93-95, 2007. FERNANDES-SILVA, C. C.; SALATINO, A.; SALATINO, M. L. F. Chemical profiling of six samples of brazilian propolis. Química. Nova, v.36, n. 2, p.237-240, 2013. FIORDALISI, S. A. L.; HONORATO, L. A.; KUHNEN, S. Variação sazonal da própolis do Sul do Brasil: screening fitoquímico, atividade antimicrobiana e efeitos em células epiteliais mamária bovina. Braz J Vet Res Anim Sci, v.56, n.1, e149146, 2019. FIORI, A. P. S. M.; GABIRABA, V. P.; PRAXEDES, A. P. P.; NUNES, M. R. S.; BALLIANO, T. L.; SILVA, R. C.; TONHOLO, J.; RIBEIRO, A. S. Preparação e caracterização de nanocompósitos poliméricos baseados em quitosana e argilo minerais. Polímeros, v.24, n.5. 2014 FRANCA, J.R.; DE LUCA, M.P; RIBEIRO, T.G.; CASTILHO, R.O.; MOREIRA, A.N.; SANTOS, V.R. Propolis--based chitosan varnish: drug delivery, controlled release and antimicrobial activity against oral pathogen bacteria. BMC Complement Altern Med, v.14, p.478, 2014. FREIRES, I. A; QUEIROZ, V. C. P. P.; FURLETTI, V. F.; IKEGAKI, M.; DE ALENCAR, S. M; DUARTE, M. C. T.; ROSALEN, P. L. Chemical composition and antifungal potential of Brazilian propolis against Candida spp. Journal de Mycologie Médicale, v.26, p.122, 2016. FUJIMOTO, J.; REIS, E. A. O.; PETRI, D. F. S. Formação de multicamadas de polissacarídeos e proteína. Quim. Nova. V.25 (5), p.757-761, 2002. FUNARI, C. S. & FERRO, V. O. Análise de própolis. Ciências Tecnologia de Alimentos, v.26, n.1, p.171-178, 2006. FURLANETTO, M. C. S. Desenvolvimento de filmes de carboximetilcelulose com nanopartículas de prata e avaliação da sua atividade antimicrobiana e toxicidade. Tese de Doutorado, Universidade Federal de São Carlos- São Carlos, 2014. CALEGARI, M. A. Espectroscopia na região do infravermelho próximo (NIR) e calibração multivariada: desenvolvimento de modelos PLS para a determinação da atividade antioxidante em amostras de própolis. Dissertação de Mestrado, Universidade Tecnológica Federal do Paraná, Pato Branco, 2018. GHISALBERTI, E.L. Propolis: A review. Bee World, v.60, p.59–84, 1979. GHORPADE, V.S.; YADAV, A.V.; DIAS, R.J. Citric acid crosslinked β-cyclodextrin/ carboxymethylcellulose hydrogel films for controlled delivery of poorly soluble drugs, Carbohydr. Polym., v.164, p.339-348, 2017. 141 GONSALVES, A. A.; ARAÚJO, R. M.; SOARES, N. A.; GOULART, M. O. F.; ABREU, F. C. Diferentes estratégias para reticulação de quitosana. Química Nova, v.34, n.7, p. 1215-1223, 2011. GORGIEVA, S., & KOKOL, V. Synthesis and application of new temperature-responsive hydrogels based on carboxymethyl and hydroxyethyl cellulose derivatives for the functional finishing of cotton knitwear. Carbohydrate Polymers, v.85(3), p.664–673, 2011. GREGORIS, E.; STEVANATO, R. Correlations between polyphenolic composition and antioxidant activity of Venetian propolis. Food Chemistry, v. 48, n. 1, p. 76-82, 2010. GUPTA, A. P.; GOPAL, A. Preparation and characterization of guar gum/polyvinylalcohol. Journal of Materials Science and Engineering, v.3, p.28-33, 2001. HADDAD KASHANI, H; SCHMELCHER, M.; SABZALIPOOR, H.; SEVED HOSSEINI, E.; MONIRI, R. Recombinant endolysins as potential therapeutics against antibiotic-resistant Staphylococcus aureus: Current status of research and novel delivery strategies. Clinical microbiology reviews, v.31, n.1, e.00071-17, 2018. HARFOUCH, R. M.; MOHAMMAD, R.; SULIMAN, H. Antibacterial activity of syrian propolis extract against several strains of bacteria in vitro. World journal of pharmacy and pharmaceutical sciences, v.6, p. 42-46, 2017. HELFENBERG, K.D. The analysis of beeswax and propolis. Chemiker Zeitungum, v.31, p. 987-988, 1908. HOJO, P. A. Extração de compostos bioativos de própolis verde por alta pressão isostática. Dissertação de Mestrado, Programa de Pós-Graduação em Tecnologia de Alimentos, Universidade Estadual de Campinas, Campinas, 2017. INOUE, H.T.; DE SOUSA, E.A.; ORSI, R.O.; FUNARI, S.R.C.; BARRETO, L.M.C.; DIB, A.P.S. Produção de própolis por diferentes métodos de coleta. Asociación Latinoamericana de Producción Animal, v.15(2), p. 65-69, 2007. IOIRISH N. As Abelhas: Bees: Pharmaceutical with Wings. Editora Mir: Moscou; 1982. ISHIDA, V. F. C.; NEGRI, G.; SALATINO, A.; BANDEIRA, M. F. C. L.; A new type of Brazilian propolis: prenylated benzophenones in propolis from Amazon and effects against cariogenic bacteria. Food Chem, v.125, p.966, 2011. IULIU, P. Patente n. RO 48101, 1965. KACHA-ANANDA, S.; TRAGOOLPUA, K.; CHANTAWANNAKUL, P. TRAGOOLPUA, Y. Antioxidant and Anti-cancer cell proliferation activity of propolis extracts from two extraction methods. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention, v.14, n.11, p.6991-6995. 2013. 142 KALIL, K. M.; DE VILLIERS, A. Review: Recent developments in the HPLC separation of phenolic compounds. Journal of Separation Science, v.34:8, p.854–876, 2011. KAMEL, S. et al. Pharmaceutical significance of cellulose: A review. Express Polymer Letters, v. 2, n.11, p. 758–778, 2008. KLAHR, G. T.; ISOLA, J. V. V.; GIEHL, D. Z.; ROSA, C. S.; MARTINS, A. A.; BARTMER, M. E.; SEGABINAZZI, L. R. Atividade antimicrobiana do extrato etanólico de própolis contra bactérias causadoras de mastite em bovinos. Revista Biotemas, v.32, n. 1, p. 1-10, 2019. KOKABI, M.; SIROUSAZAR, M.; HASSAN, Z. M. PVA–clay nanocomposite hydrogels for wound dressing. European polymer journal, v. 43, n. 3, p. 773-781, 2007. KOTHAI, S.; JAYANTHI, B. Evaluation of antioxidant and antimicrobial activity of stingless bee propolis (Tetragonula iridipennis) of Tamilnadu, India. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, vl 6, s.8, 2014. KUJUMGIEV, A., TSVETKOVA, I., SERKEDJIEVA, Y.U., BANKOVA, V., CHRISTOV, R. & POPOV, S. Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. Journal of Ethnopharmacology, v.64, n.3, p.235-240, 1999. LEHMBERG, L.; DWORSCHAK, K.; BLÜTHGEN, N. Defensive behavior and chemical deterrence against ants in the stingless bee genus Trigona (Apidae, Meliponini). J Apicult Res, v.47, p.17–21, 2008. LOPES, C. M.; LOBO, J. M. S.; COSTA, P. Formas farmacêuticas de liberação modificada: polímeros hidrofílicos. Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v.41 (2), p.143-154, 2005. LUSTOSA SR, GALINDO AB, NUNES LCC, RANDAU KP, ROLIM NETO PJ. Própolis: atualizações sobre a química e a farmacologia. Rev Bras Farmacogn, v.18, p.447-454, 2008. LUZ, L. P. Estudo do ultrassom como técnica de extração de carvões e caracterização dos hidrocarbonetos poliaromáticos. Dissertação de Mestrado, Pós-graduação em Química da Universidade Federal do Rio Grande do Sul, 1998. MACHADO, B. A. S; SILVA, R. P. D; BARRETO, G. A; COSTA, S. S, SILVA, D. F, BRANDÃO, H. N.; ROCHA, J. L. C; DELLAGOSTIN, O. A; HENRIQUES, J. A. P; UMSZA-GUES, M. A; PADILHA, F. F. Chemical Composition and Biological Activity of Extracts Obtained by Supercritical Extraction and Ethanolic Extraction of Brow, Green and Red Propolis Derived from Different Geographic Regions in Brazil. Plos One, v.11, n.1, e.0145954, 2016. MACHADO, C. S.; MOKOCHINSKI, J. M.; DE LIRA, T. O.; DE OLIVEIRA, F. C. E.; CARDOSO, M. V.; FERREIRA, R. G.;TORRES, Y. R. Comparative study of chemical composition and biological activity of yellow, green, brown, and red Brazilian propolis. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine, 2016. 143 MAGALHÃES, T. V.; LOT, R. F. E.; DEL CARRATORE, C. R. Análise da ação antibacteriana da própolis e padronização de volumes através de antibiograma. Unimar Ciências, v. 25, n.1-2, p. 38-44, 2016. MAIA-ARAUJO, Y. L. F.; MENDONÇA, L. S.; ORELLANA, S. C.; ARAUJO, E. D. Comparação entre duas técnicas utilizadas no teste de sensibilidade antibacteriana do extrato hidroalcoólico de própolis vermelha. Scientia plena, v.7, p.1, 2011. MANRIQUE, A.J. & SOARES, A.E.E. Início de um programa de seleção de abelhas africanizadas para a melhoria na produção de própolis e seu efeito na produção de mel. Interciencia, v. 27, n. 6, p. 312-316, 2002. MARCUCCI MC. Própolis: a chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidologie, v.26, p.83-99, 1995. MARCUCCI, M.C. et al. Própolis tipificada: um novo caminho para a elaboração de medicamentos de origem natural, contendo este produto apícola. Revista Fitos, vol.1, n.3,p.36-46, 2007. MARCUCCI, M. C; CUSTÓDIO, Â. R. Própolis: Correlação Química e Biológica. Chemkeys - Liberdade para aprender, p.1-23, 2002. MARCUCCI MC. Use of propolis in the cosmetic industry. Aerosol e Cosméticos. 1996 MARTINEZ, C. M. F. Obtenção e caracterização de materiais absorventes através da carboximetilação de polpa etanol/água de medula de bagaço de cana-de-açúcar. Dissertação. Ciência e Engenharia de Materiais, Universidade de São Paulo, 1996. MATSUDA, A. H.; ALMEIDA-MURADIAN, L. B. Validated method for the quantification of Artepillin C in Brazilian propolis. Phytochemical Analysis, v.19, s.2, p.179-183, 2008 MELLO, B. C. B. S.; PETRUS, J. C. C.; HUBINGER, M. D. Concentration of flavonoids and phenolic compounds in aqueous and ethanolic própolis extracts through nanofiltration. Journal of Food Engineering, v.96, p.533-539, 2010. MENEZES, H. Própolis: uma revisão dos recentes estudos de suas propriedades farmacológicas. Arquivos do Instituto Biológico, v. 72, n. 3, p. 405-411, 2005. MERKEN, H. M., BEECHER, G. R. Measurement of food flavonoids by high performance liquid chromatography: A review. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v.48, p.577-599, 2000. MIRANDA, V. R.; CARVALHO, A. J. F. de. Blendas compatíveis de amido termoplástico e polietileno de baixa densidade compatibilizadas com ácido cítrico. Polímeros, v. 21, n. 5, p. 353–360, 2011. 144 MOLYNEUX, P. The use of the stable free radical diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) for estimating antioxidant activity Songklanakarin J. Sci. Technol., v.26, n. 2, p.211-219, 2004. MONTI, M., BERTI, E., CARMINATI, G., CUSINI, M. Occupational and cosmetic dermatitis from propolis. Contact Dermatitis, v.9, p.163, 1983. MONZOTE, L.; CUESTA-RUBIO, O.; FERNANDEZ, M. C. et al. In vitro antimicrobial assessment of Cuban propolis extracts. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 107, n. 8, p. 978-984, 2012. MOSELEY, R.; WALKER, M.; WADDINGTON, R. J.; CHEN, W. Y. J. Comparison of the antioxidant properties of wound dressing materials–carboxymethylcellulose, hyaluronan benzyl ester and hyaluronan, towards polymorphonuclear leukocyte-derived reactive oxygen species. Biomaterials, v.24 (9), p.1549-1557, 2003. MOUHOUBI-TAFININE, Z.; OUCHEMOUKH, S.; TAMEENDJARI, A. Antioxydant activity of some algerian honey and propolis. Industrial Crops and Products, v.88, p. 85-90, 2016. NASCIMENTO, E. A. et al. Um marcador químico de fácil detecção para a própolis de Alecrim-do-Campo (Baccharis dracunculifolia). Revista Brasileira de Farmacognosia, v.18, n.3, 2008. NACZK, M.; SHAHIDI, F. Extraction and analysis of phenolics in food. Journal of Chromatography A, v.1054, p.95-111, 2004. NINA, N., QUISPE, C., JIMÉNEZ-ASPEE, F., THEODULOZ, C., FERESÍN, G.E., LIMA, B., LEIVA, E. and SCHMEDAHIRSCHMANN, G. Antibacterial activity, antioxidant effect and chemical composition of propolis from the Región del Maule, Central Chile. Molecules, v. 20, n. 10, p. 1-24, 2015. NOGUEIRA, S. A.; SANTOS, D. C.; INÁCIO, M. C. P.; REZENDE, R. M.; CARVALHO, A. F. S.; CASTRO, G. A. C.; FREITAS, A. S. Utilização de própolis verde na cicatrização de lesões cutâneas em ratos . Revista da Universidade Vale do Rio Verde, v.16, n. 3, p. 1-6 2018. NUNES, L.C.; GALINDO, A.B.; DE DEUS, A.S.O.; RUFINO, D.A.; RANDAU, K.P.; XAVIER, H.S.; CITÓ, A.M.G.L.; ROLIM NETO, P.J. Seasonal variability of the constituents of propolis and bioactivity in saline Artermia. Brazilian Journal of Pharmacognosy, 2009. OLEGÁRIO, L. S.; ANDRADE, J. K. S.; ANDRADE, G. R. S.; DENADAI, M.; CAVALCANTI, R. L.; DA SILVA, M. A. A. P.; NARAIN, N. Chemical characterization of four Brazilian brown propolis: An insight in tracking of its geographical location of production and quality control. Food Research International, v.123, p. 481-502, 2019. OLIVEIRA, R. N.; MOREIRA, A. P. D.; THIRÉ, R. M. S. M.; QUILTY, B.; PASSOS, T. M.; SIMON, P.; MANCINI, M. C.;, MCGUINNESS, G. B. Absorbent polyvinyl alcohol- 145 sodium carboxymethyl cellulose hydrogels for propolis delivery in wound healing applications. Polymer Engineering & Science, v. 2017, p. 1-10, 2017. ORYAN, A .; ALEMZADEH, E.; MOSHIRI, A. Potencial role of propolis in wound healing: biological properties and therapeutic activities. Biomedicine & Pharmacotherapy, v.98, p.469-483, 2018. OSHIRO JUNIOR, J. A.; SHIOTA, L. M.; CHIAVACCI, L. A. Desenvolvimento de formadores de filmes poliméricos orgânico-inorgânico para liberação controlada de fármacos e tratamento de feridas. Revista Matéria, v.19, n.01, p. 24-32, 2014. PAGANOTTI, R S N; REZENDE, J C; BARBEIRA, P J S. Discrimination between producing regions of Brazilian propolis by UV-VIS spectroscopy and partial least squares discriminant analysis. Current Analytical Chemistry, v. 10, p. 537-544, 2014. PAPOTTI, G., BERTELLI, D., ROSSI, M.C., PLESSI, M. Use of HR-NMR to classify propolis obtained using different harvesting methods. International Journal of Food Science and Technology, v.45, p.1610–1618, 2010. PAPOTTI, G.; BERTELLI, D.; BORTOLOTTI, L.; PLESSI, M.; Chemical and functional characterization of Italian propolis obtained by different harvesting methods. J. Agric. Food Chem., v.60, p.2852, 2012. PAPOTTI, G., BERTELLI, D., ROSSI, M. C., PLESSI, M. Use of HR-NMR to classify propolis obtained using different harvesting methods. International Journal of Food Science and Technology, v.45, p.1610, 2010. PARK, Y. K, ALENCAR, S. M, AGUIAR, C. L. Botanical origin and chemical composition of Brazilian propolis. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v.50, p.2502, 2002. PARK,Y. K.; IKEGAKI, M.; ALENCAR, S. M.; MOURA, F. F. Evaluation of Brazilian propolis by both physicochemical methods and biological activity. Honeybee Science, v.21, p.85, 2000. PATRICIO, E.F; CRUZ-LOPEZ, L.; MAILE, R.; TENTSCHERT, J.; JONES, G.R.; MORGAN, E.D . The propolis of stingless bees: terpenes from the tibia of three Frieseomelitta species. J Insect Physiol, v.48, p.249–254, 2002. PAULINO, F.D.G. Produtos da colmeia. In: D.C. Souza, (ed.), Apicultura: manual do agente de desenvolvimento rural. SEBRAE, 2004. PEREIRA, A. S.; SEIXAS, F. R. M. S.; NETO, F. R. A. PRÓPOLIS: 100 anos de pesquisa e suas perspectivas futuras. Química Nova, v.25, n.2, p.321-326, 2002. PEREIRA, D. S; FREITAS, C. I. A.; FREITAS, M. O.; MARACAJÁ, P. B.; SILVA, J. B. A; SILVA, R. A.; SILVEIRA, D. C. Histórico e principais usos da própolis apícola. Agropecuária Científica no Semi-Árido, 2015. 146 PETER, C. M.; PICOLI,T.; ZANI, J. L.; LATOSINSKI, G. S.; LIMA, M.; VARGAS, G. D.; HÜBNER, S. O.; FISCHER G. Antiviral and virucidal activity of hydroalcoholic extracts of propolis brown, green and jataí bees (Tetragonisca angustula) against Bovine Herpesvirus Type-1 (BoHV-1) and Bovine Viral Diarrhea Virus (BVDV). Pesquisa Veterinária Brasileira, v.37, p.667, 2017. PIRES, A. L. R., BIERHALZ, A. C. K., & MORAES, Â. M. Biomaterials: types, applications, and market. Química Nova, v. 38, n. 7, p.957-971, 2015. POPOVA, M. P., BANKOVA, V. S., BOGDANOV, S., TSVETKOVA, I., NAYDENSKI, C., MARCAZZAN, G. L., & SABATINI, A. G. Chemical characteristics of poplar type propolis of different geographic origin. Apidologie, v.38, p.306–311, 2007. PORTILHO, D. R.; MELO, I. A.; GUERRA, R. C.; BATISTA, H. L.; FERNANDES, C. H. C. Avaliação da atividade antibacteriana e antifúngica da própolis produzida no estado do Tocantins. Revista Científica do ITPAC, v.6, p.1, 2013. PROBST, I.S.; SFORCIN, J.M.; RALL, V.L.M.; FERNANDES, A.A.H.; FERNANDES JR., A. Antimicrobial activity of propolis and essential oils and synergism between these natural product. Journal of Venomous Animals and Toxins including Tropical Diseases, v.17, p. 159-167, 2011. ROBBINS, R.J. Phenolic acids in foods: an overview of analytical methodology. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 51, p. 2866–2887, 2003. ROCHA, C. S. Aplicação de análise estatística multivariada no estudo de propriedades da própolis. Monografia (Graduação), Universidade Federal de Ouro Preto, Escola de Farmácia, Departamento de Farmácia, 2018. RODRIGUES, L. M.; DE OLIVEIRA, B. G. R. B.; DE CASTILHO, S. R.; FUTURO, D. O. Segurança e eficácia do hidrogel de carboximetilcelulose à 2% em úlceras de perna. Journal of Research Fundamental Care Online, v.5(4), p.690-95, 2013. ROSA, J. M.; ARIOLI, C. J.; NUNES-SILVA, P.; GARCIA, F. R. M. Desaparecimento de abelhas polinizadoras nos sistemas naturais e agrícolas: Existe uma explicação? Revista de Ciências Agroveterinárias. V.18, p.1, 2019. ROUBIK, D.W. Stingless bee nesting biology. Apidologie, v.37, p.124–143, 2006. SAHA, D.; BHATTACHARYA, S. Hydrocolloids as thickening and gelling agents in food: a critical review, J Food Sci Technol., v.47(6), p.587–597, 2010. SALATINO A, TEIXEIRA EW, NEGRI G AND MESSAGE D, Origin and chemical variation of Brazilian propolis. Evidence-Based Complementary Alternative Medicine, v.2, p.33–38, 2005. 147 SALATINO, A.; FERNANES-SILVA, C.C.; RIGHI, A.A.; SALATINO, M. L. F. Propolis research and the chemistry of plant products. Natural Product Reports, v.28, n.5, p.925-936, 2011. SALGUEIRO, F. B.; LIRA, A. F.; RUMJANE , V. M. & Castro, R. N. Phenolic composition and antioxidant properties of brazilian honeys. Quim. Nova, v. 37, n. 5, p.821-826, 2014. SALGUEIRO, F.B. Tese de Doutorado. Caracterização da própolis verde brasileira: Substâncias fenólicas, atividade biológica e análise quimiométrica. Seropédica – RJ. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, 2016. SALLEH, K. M.; ZAKARIA, S.; SAJAB, M. S.; GAN, S.; KACO, H. Superabsorbent hydrogel from oil palm empty fruit bunch cellulose and sodium carboxymethylcellulose. International Journal of Biological Macromolecules, v.131, p.50-59, 2018. SANNINO, A.; DEMITRI, C.; MADAGHIELE, M. Biodegradable cellulose-based hydrogels: design and applications. Materials, v.2(2), p.353-373, 2009. SANTOS, F. H. P.; REIS, A. S.; SILVA, J. F.; JUNIOR, B. R. S.; SILVA, S. B.; ANDRÉ, A. C. G. M.; LIMA, A. F. Avaliação antibacteriana dos extratos hexânico e metanólico de própolis vermelha encontrada no município Barra de Santo Antônio/AL. Ciências Biológicas e da Saúde, v. 2, n.3, p. 33-44, 2015. SANTOS, E. L., MAIA, B. H. L. N. S., FERRIANI, A. P., & TEIXEIRA, S. D. Flavonoids: Classification, Biosynthesis and Chemical Ecology. Flavonoids - From Biosynthesis to Human Health, p.3-16, 2017. SANTOS, C. M.; CAMPOS, J. F.; SANTOS, H. F.; BALESTIERI, J. B. P.; SILVA, B. D.; SOUZA, K. P.; CAROLLO, C. A.; ESTEVINHO, L. M.; SANTOS, E. L. Chemical composition and pharmacological effects of geoprópolis produced by Melipona quadrifasciata anthioides. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, v. 2017, p.1-13, 2017. SANTOS-SÁNCHEZ, N. F.; SALAS-CORONADO, R.; HERNÁNDEZ-CARLOS, B.; VILLANUEVA-CAÑONGO, C. Shikimic Acid Pathway in Biosynthesis of Phenolic Compounds. Plant Physiological Aspects of Phenolic Compounds,p.1-15, 2019. SAWAYA, A. C. H. F., SOUZA, K. S., MARCUCCI, M. C., CUNHA, I. B. S., SHIMIZU, M. T. Analysis of the composition of Brazilian Propolis extracts and evaluation of their in vitro activity against Gram-positive bacteria. Brazilian Journal of Microbiology, v. 35, p. 104-109, 2004. SAWAYA, A. C. H. F.; CUNHA, I. B. S.; MARCUCCI, M. C. Analytical methods applied to diverse types of Brazilian propolis. Chemistry Central Journal, 2011. SEBRAE, Agronegócios: produção de própolis/ produção de própolis na Bahia. 2017. www.sebrae2014.com.br – acessado em 30/06/19. 148 SELIGRA, P. G.; JARAMILLO, C. M.; FAMÁ, L.; GOYANES, S. Biodegradable and nonretrogradable eco-films based on starch–glycerol with citric acid as crosslinking agent. Carbohydrate Polymers, v. 138, p. 66 – 74, 2016. SELVARAJ, RAJINI et al. Phytochemical profiling and antibacterial activity of propolis. International journal of scientific research, v. 7, n. 6, 2018. SFORCIN, J. M.; BANKOVA, V. Propolis: is there apotential for the development of new drugs? Journal of Ethnopharmacology, v. 133, n. 2, p. 253-260, 2011. SFORCIN, J.M. Propolis and the immune system: a review. Journal of Ethnopharmacology, v.113, p.1–14. 2007. SHAHIDI, F., & YEO, J. Bioactivities of Phenolics by Focusing on Suppression of Chronic Diseases: A Review. International Journal of Molecular Sciences, v.19, n.3, p.1-16, 2018. SHI, R.; BI, J.; ZHANG, Z.; ZHU, A.; CHEN, D.; ZHOU, X.; ZHANG, L.; TIAN, W. The effect of citric acid on the structural properties and cytotoxicity of the polyvinyl alcohol/starch films when molding at high temperature, Carbohydr. Polym., v.74, p.763-770, 2008. SHIMADA, K.; FUJIKAWA, K.; YAHARA, K.; NAKAMURA, T. Antioxidative properties of xanthan on the autoxidation of soybean oil in cyclodextrin emulsion. J. of Agric. Food Chem., v.40, p.945–948, 1992. SIEPMANN, F.; SIEPMANN, J.; WALTHERB, M.; MACRAEB, R. J.; BODMEIRCA, R. Review Polymer blends for controlled release coatings. Journal of Controlled Release, v.125, p.1-15, 2008. SILVA, R.P.D., MACHADO, B.A., BARRETO, G.A., COSTA, S.S., ANDRADE, L.N., AMARAL, R.G., CARVALHO, A.A., PADILHA, F.F., BARBOSA, J.D. and UMSZA-GUEZ, M.A. Antioxidant, antimicrobial, antiparasitic, and cytotoxic properties of various Brazilian propolis extracts. PLoS One, v.12, n.3, p.1-18, 2017. SILVA, F. R. G., MATIAS, T. M. S., SOUZA, L. I. O., MATOS-ROCHA, T. J., FONSECA, S. A., MOUSINHO, K. C., & SANTOS, A. F. Phytochemical screening and in vitro antibacterial, antifungal, antioxidant and antitumor activities of the red propolis Alagoas. Brazilian Journal of Biology, v. 79, n. 3, p. 452-459, 2018. SILVA, R.A., RODRIGUES, A.E., RIBEIRO, A.C.M., CUSTÓDIO, A.R., ANDRADE, N.E.D., PEREIRA, W.E. Características físico-químicas e atividade antimicrobiana de extratos de própolis da Paraíba, Brasil. Ciência Rural, v.36, p.1842-1848, 2006. SILVA, S. G.; BIESKI, I. G. C. A importância medicinal dos flavonóides na saúde humana, com enfâse na especie Arrabidaea chica (Bonpl.) B. Verl. Revista Saúde Viva Multidisciplinar da AJES, v. 1, n. 1, p. 1 - 156, 2018. SILVA, G. T. Blendas poliméricas de poli (álcool vinílico) e carboximetilcelulose com aplicação em sistemas de liberação controlada de fármacos. Dissertação de Mestrado, UFPB/CCEN, 2016. 149 SILVA, C.; GARCIA, V. A. S.; FRANCISCATO, L. M. S. S. Extração Assistida por Ultrassom de Compostos Bioativos das Cascas de Lichia Peels (Litchi Chinensis Sonn.). Revista Ciências Exatas e Naturais, v.18, n.1, 2016. SILVA, R. A. Retração cicatricial de feridas cutâneas induzidas e posteriormente tratadas separadamente com mel, própolis e copaíba em bubalinos. Orientador: Rinaldo Batista Viana. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Medicina Veterinária) – Universidade Federal Rural da Amazônia, Campus Belém, PA, 2019. SIMONE-FINSTROM, M., & SPIVAK, M. Propolis and bee health: The natural history and significance of resin use by honey bees. Apidologie, v.41, p.295–311, 2010. SINGH, B., KUMAR, A., & MALIK, A. K. Flavonoids biosynthesis in plants and its further analysis by capillary electrophoresis. Electrophoresis, v.38, n.6, p.820-832, 2017. SINHÁ, V. R.; SINGLA, A. K.; WADHAWAN, S.; KAUSHIK, R.; KUMIRIA, R., BANSAL, K.; DHAWAN, S. Chitosan microspheres as a potencial carrier for drugs. Int. J. Pharm, v.274, p.1-3, 2004. SOARES, S. H. Hidrogéis de Carboximetil Celulose Sódica Carregados com Óleos Bioativos e Ureia Para o Tratamento de Feridas / Silvane Holanda Soares. Dissertação (Mestrado). Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Programa de Pós-Graduação em Engenharia Química, 2019. SOUSA, A. K. A. Atividade antibacteriana do extrato hidroalcoólico da própolis vermelha no semiárido paraibano sobre streptococcus pyogenes. Dissertação de Mestrado Acadêmico em Sistemas Agroindustriais, Programa de Pós-Graduação em Sistemas Agroindustriais, Universidade Federal de Campina Grande, Pombal, Paraíba, Brasil, 2018. SOUSA, J.P.B.; FURTADO, N.A.J.C.; JORGE, R.; SOARES, A.E.E.; BASTOS J.K. Perfis físico-químico e cromatográfico de amostras de própolis produzidas nas microrregiões de Franca (SP) e Passos (MG), Brasil. Rev Bras Farmacogn., v.17, p.85-93, 2007. STALIKAS, C. D. Review: Extraction, separation, and detection methods for phenolic acids and flavonoids . Journal of Separation Science, v.30, p.3268 – 3295, 2007. STUPER-SZABLEWSKA, K., & PERKOWSKI, J. Phenolic acids in cereal grain: Occurrence, biosynthesis, metabolism and role in living organisms. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, v.59, n.4, p.664-675, 2017. TAYLOR, R. F.; SCHULTZ, J. S. Handbook of chemical and biological sensors. Taylor & Francis: British, 1996. TAZAWA, S.; ARAI, Y.; HOTTA, S.; MITSUI, T.; NOZAKI, H.; ICHIHARA, K. Discovery of a Novel Diterpene in Brown Propolis from the State of Parana, Brazil. Nat Prod Commun, v.11, n.2, p.201-205, 2016. 150 TEIXEIRA, E.W., MESSSAGE, D., MEIRA, R.M.S.A. & SALATINO, A. Indicadores da origem botânica da própolis, importância e perspectivas. Revisão bibliográfica. Boletim da Indústria Animal, v.60, p.83-107, 2003. TORETI, V. C.; SATO, H. H; PASTORE, G. M.; PARK, Y. K. Recent progress of propolis for its biological and chemical compositions and its botanical origin. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, v.2013, p.1-13, 2013. TORRES, A. R.; SANDIO, L. P.; FRIEDEMANN, M. T.; TOMAZZOLI, M. M.; MARASCHIN, M.; MELLO, C. F.; SANTOS, A. R. S. Chemical characterization, antioxidant and antimicrobial activity of propolis obtained from Melipona quadrifasciata quadrifasciata and Tetragonisca angustula stingless bees. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, v.51, n.6, p.1-10, 2018. TRUSHEVA, B., TRUNKOVA, D., & BANKOVA, V. Different extraction methods of biologically active components from propolis: A preliminary study. Chemistry Central Journal, v.7,p.1 –13, 2007. VARGAS, A. C.; LOGUERCIO, A. P.; WITT, N. M.; COSTA, M. M.; SILVA, M. S.; VIANA, L. R. Efeito Antimicrobiano “in vitro” de Extrato Alcoólico de Própolis. Ciência Rural, v.34, n.1, p. 159-163, 2004. VASCONCELOS, S.M.L.; GOULART, M.O.F.; MOURA, J.B.F.; MANFREDINI, V.; BENFATO, M.S.; KUBOTA, L.T. Espécies reativas de oxigênio e de nitrogênio, antioxidantes e marcadores de dano oxidativo em sangue humano: principais métodos analíticos para sua determinação. Química Nova. V.30, p.1323-1338, 2007. VILELA, D. D. Hidrogel de carboximetilcelulose de sódio e própolis: desenvolvimento e caracterização. Dissertação de Mestrado, Programa de Pós-graduação Interunidades Bioengenharia, EESC/FMRP/IQSC, da Universidade de São Paulo, São Carlos, 2010. VILLANOVA, J. C. O; ORÉFICE, R. L. Aplicações Farmacêuticas de Polímeros. Polímeros: Ciência e Tecnologia, v.20 (1), p.51-64, 2010. WALLER, S.B; PETER, C.M.; HOFFMANN, J.F.; PICOLI, T.; DA G. OSÓRIO, L.; CHAVES, F.; ZANI, J.L.; DE FARIA, R.O.; DE MELLO, J.R.B.; MEIRELES, M.C.A. Chemical and cytotoxic analyses of brown Brazilian propolis (Apis mellifera) and its in vitro activity against itraconazole-resistant Sporothrix brasiliensis. Microbial Pathogenesis, v. 105, p. 117-121, 2017. WANG, J., XU, J., GONG, X., YANG, M., ZHANG, C., & LI, M. Biosynthesis, Chemistry, and Pharmacology of Polyphenols from Chinese Salvia Species: A Review. Molecules, 2019. WARING, M. J. & PARSONS, D. Physico-chemical characterization of carboxymethylated spun cellulose fibres. Biomaterials, v. 22, p. 903-012, 2001. 151 WOISKY R.G. & SALATINO A. Analysis of propolis: some parameters and procedures for chemical quality control. Journal of Apicultural Research, v.37, p.99-105, 1998. WOJTYCZKA, R. D. et al. Susceptibility of Staphylococcus aureus clinical isolates to propolis extract alone or in combination with antimicrobial drugs. Molecules, v. 18, n. 8, p. 9623-9640, 2013. XU, H.; CHEN, G.; JIN, R.; CHEN, D.; WANG, Y.; PEI, J. Green synthesis of Bi2Se3 hierarchical nanostructure and its electrochemical properties. The Royal Society of Chemistry, v.4, p.8922–8929, 2014. YÁNEZ-S, M.; MATSUHIRO, B.; MALDONADO, S.; GONZÁLEZ, R.; LUENGO, J.; UYARTE, O.; SERAfiNE, D.; MOYA, S.; ROMERO, J.; TORRES, R.; KOGAN, M. J. Carboxymethylcellulose from bleached organosolv fibers of Eucalyptus nitens: synthesis and physicochemical characterization. Cellulose, v. 25, n. 5, p. 2901-2914, 2018. YEO, K. L.; LEO, C. P.; CHAN, D. J. C. Ultrasonic enhancement on propolis extraction at varied ph and alcohol content. Journal of Food Process Engineering, v. 38, n. 6, p. 562-570, 2015. YU, Q., et al. Effects of Yili dark bee propolis on oral cariogenic biofilm in vitro. West China journal of stomatology, v. 33, n. 4, p. 343-346, 2015. ZEIGHAMPOUR, F.; ALIHOSSEINI, F.; MORSHED, M.; RAHIMI, A. A. Comparison of prolonged antibacterial activity and release profile of propolis-incorporated PVA nanofibrous mat, microfibrous mat, and film. Journal of Applied Polymer Science, v. 135, n. 6, p.45794, 2018.por
dc.subject.cnpqQuímicapor
dc.thumbnail.urlhttps://tede.ufrrj.br/retrieve/67490/2019%20-%20Juliana%20Paes%20Leme%20de%20Mello%20Sousa.pdf.jpg*
dc.originais.urihttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/5225
dc.originais.provenanceSubmitted by Sandra Pereira (srpereira@ufrrj.br) on 2021-11-09T02:36:12Z No. of bitstreams: 1 2019 - Juliana Paes Leme de Mello Sousa.pdf: 3642117 bytes, checksum: 434795782f438bf0884d950e52f093ec (MD5)eng
dc.originais.provenanceMade available in DSpace on 2021-11-09T02:36:12Z (GMT). No. of bitstreams: 1 2019 - Juliana Paes Leme de Mello Sousa.pdf: 3642117 bytes, checksum: 434795782f438bf0884d950e52f093ec (MD5) Previous issue date: 2019-08-26eng
Appears in Collections:Doutorado em Química

Se for cadastrado no RIMA, poderá receber informações por email.
Se ainda não tem uma conta, cadastre-se aqui!

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
2019 - Juliana Paes Leme de Mello Sousa.pdf2019 - Juliana Paes Leme de Mello Sousa3.56 MBAdobe PDFThumbnail
View/Open
Show simple item record


Items in DSpace are protected by copyright, with all rights reserved, unless otherwise indicated.