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dc.contributor.authorBitencourt, Ricardo de Oliveira Barbosa
dc.date.accessioned2023-12-22T01:57:29Z-
dc.date.available2023-12-22T01:57:29Z-
dc.date.issued2018-02-27
dc.identifier.citationBARBOSA, Ricardo de Oliveira. Utilização dos fungos Metarhizium anisopliae e Beauveria bassiana no controle do mosquito Aedes aegypti. 2018. 62 f. Dissertação (Mestrado em Ciências Veterinárias) - Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2018.por
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11820-
dc.description.abstractAedes aegypti é o vetor de vírus que causam as doenças zika, dengue, febre amarela urbana e chikungunya. É um mosquito cosmopolita com uma plasticidade adaptativa bem pronunciada que torna difícil o seu controle. Metarhizium anisopliae e Beauveria bassiana são fungos entomopatogênicos encontrados no meio ambiente parasitando artrópodes e por isso são amplamente usados para controles de pragas agrícolas. Pesquisas utilizando fungos buscam identificar isolados mais virulentos, seletivos, e desenvolver tecnologias que proporcionem eficácia e resistência aos efeitos do meio ambiente. O presente estudo avaliou e comparou a virulência de conídios e blastosporos de diferentes isolados de M. anisopliae e B. bassiana suspensos em água e formulados em óleo mineral sobre larvas de A. aegypti. Os isolados CG 153, IBCB 481, ARSEF 2211 de M. anisopliae, CG 206 e CG 479 de B. bassiana foram cultivados em meio BDA (Batata dextrose ágar) para produção de conídios e em meio de Adamek modificado para produção de blastosporos. Larvas (L1/L2) foram imersas em 10 mL de suspensões de água desclorada estéril + Tween 80 0,01% ou formulação oleosa contendo 108 /107 conídios mL-1 e 108 / 107 blastosporos mL-1 mantidos a 27°C e UR>80%. Foi analisada a taxa de sobrevivência das larvas diariamente por 7 dias. Além disso, a capacidade de produção de blastosporos entre os isolados foi avaliada em diferentes condições de tempo e agitação. O estudo estatístico utilizado foi o teste Kaplan-Meier que analisou e comparou as taxas de sobrevivência com relação ao tempo de tratamento; dados paramétricos foram avaliados pela análise de variância (ANOVA) seguido do teste de Tukey. O cálculo do tempo letal (TL50) foi realizado utilizando o programa Log-rank teste. O nível de significância foi de 95% (P≤0,05). Foram observados, as maiores produções de blastosporos, nos isolados ARSEF2211, CG479 e CG206 quando mantidos a rotação de 220rpm/72h, e baixa produção nos isolados CG153 e IBCB481. Nos ensaios biológicos, blastosporos e conídios apresentaram a mesma eficácia, sendo os melhores resultados observados nos tratamentos com 107 conídios/blastosporos mL-1 isolado CG153, IBCB481; as formulações apresentaram melhores resultados que as suspensões, com percentuais de sobrevivência das larvas que variaram entre 8,56 a 27,44%. Os melhores tempos letais (TL50) foram obtidos nas formulações de blastosporos CG479 107 e ARSEF2211 108 , ambos com 1 dia. Portanto, conclui-se que blastosporos e conídios se mostraram boas opções de controle de larvas de A. aegypti e as formulações a base de óleo mineral se mostraram bons adjuvantes nesse controle.por
dc.description.sponsorshipCAPES - Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superiorpor
dc.formatapplication/pdf*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropor
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.subjectFungos entomopatogênicospor
dc.subjectBlastosporospor
dc.subjectMosquitopor
dc.subjectEntomopathogenic fungieng
dc.subjectBlastosporeseng
dc.titleUtilização dos fungos Metarhizium anisopliae e Beauveria bassiana no controle do mosquito Aedes aegyptipor
dc.title.alternativeUse of Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana in the control of Aedes aegypti mosquitoeng
dc.typeDissertaçãopor
dc.description.abstractOtherAedes aegypti is vector of zika, dengue, urban yellow fever and chikungunya. It is a cosmopolitan mosquito with pronounced adaptive plasticity making it difficult controlling. Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana are entomopathogenic fungi found in the environment parasitizing arthropods and are therefore widely used for agricultural pest control. Researches using fungi, seek to identify more virulent and selective isolates, and develop technologies that provide an efficacy and resistance to environment effects. The aim of study was evaluating and comparing virulence conidia and blastospores using different isolates of M. anisopliae and B. bassiana suspended in water and mineral oil formulation on A. aegypti larvae. Strains CG 153, IBCB 481, ARSEF 2211 of M. anisopliae, CG 206, CG 479 of B. Bassiana were grown in PDA medium (Potato dextrose agar) to producing conidia and Adamek medium modified to producing Blastospores. Larvae (L1/L2) were immersed in 10 mL of sterile dechlorinated water + 0.01% Tween 80 suspensions or oily formulation containing 108 /107 mL-1 conidia and 108 /107 mL-1 blastospores maintained at 27°C and UR > 80%. The survival rates of larvae were evaluated daily for 7 days. In addition, blastospores production capacity among the isolates was evaluated at different time conditions and agitation. The statistical study used was Kaplan-Meier analyzing and comparing the survival rates in relation to treatment time; The parametric data were evaluated by analysis of variance (ANOVA), followed by Turkey test. The calculation of the lethal time (LT50) was performed using the Log-rank test. The level of significance was 5% (p> 0.05%). The strains ARSEF2211, CG479 and CG206 obtained the highest yields of blastospores when maintained at a rotation of 220rpm/72h, whereas strains CG153 and IBCB481 obtained low production. In the biological assays, blastospores and conidia were not statistically significant, and the best results were observed in treatments with 107 conidia/blastospores mL-1 strains CG153, IBCB481; in comparison between suspensions and formulations, they obtained better results than suspensions, with survival rates ranging by 8.56 to 27.44%. The best lethal times (TL50) were obtained in the formulations of blastospores CG479 107 and ARSEF22118 both with 1 day. Therefore, it is concluded that blastospores and conidia showed good control options for A. aegypti and formulations based on mineral oil showed good adjuvant.eng
dc.contributor.advisor1Angelo, Isabele da Costa
dc.contributor.advisor1IDhttps://orcid.org/0000-0003-3698-8340por
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/5028095543336052por
dc.contributor.advisor-co1Bittencourt, Vânia Rita Elias Pinheiro
dc.contributor.advisor-co1IDhttps://orcid.org/0000-0001-8473-8501por
dc.contributor.advisor-co1Latteshttp://lattes.cnpq.br/3888832724995864por
dc.contributor.referee1Angelo, Isabele da Costa
dc.contributor.referee1IDhttps://orcid.org/0000-0003-3698-8340por
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/5028095543336052por
dc.contributor.referee2Gôlo, Patrícia Silva
dc.contributor.referee2IDhttps://orcid.org/0000-0003-1854-7488por
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/3935275742919097por
dc.contributor.referee3Castro, Daniele Pereira de
dc.contributor.referee3IDhttps://orcid.org/0000-0002-2827-6258por
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/2330016995489470por
dc.creator.IDhttps://orcid.org/0000-0002-6298-2869por
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/2283094033746986por
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.departmentInstituto de Veterináriapor
dc.publisher.initialsUFRRJpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Ciências Veterináriaspor
dc.relation.referencesADÁMEK, L.; Submerse Cultivation of the fungus Metarhizium anisopliae (Metsch.). Folia Microbiologia, v.10, p.255-257, 1963. AL-ABDELY, H.M.; Zika an emerging teratogenic virus. Saudi Medical Journal, v.37, p.831-833, 2016. ALKHAIBARI, A. M.; CAROLINO, A. T.; BULL, J. C.; SAMUELS, R. I.; BUTT, T. M.; Differential Pathogenicity of Metarhizium Blastospores and Conidia against Larvae of Three Mosquito Species. Journal of Medical Entomology, v.54, p.696–704, 2017. ALKHAIBARI, A. M.; CAROLINO, A. T.; YAVASOGLU, S. I.; MAFFEIS, T. Metarhizium brunneum Blastospore Pathogenesis in Aedes aegypti Larvae: Attack on Several Fronts Accelerates Mortality. Plos Pathogens, v.12, p.1-19, 2016. ALVES, S.B.; Fungos entomopatogênicos. In: Alves, S.B. (Ed.), Controle Microbiano de Insetos. FEALQ: Piracicaba, p.289–382, 1998. ANDRADE, P.P.; ARAGÃO, F.J.L.; DELLAGOSTIN, W.C.O.; FINARDI-FILHO, F.; HIRATA, M.H.; LIRA-NETO, A.C.; MELO, M.A.; NEPOMUCENO, A.L., NÓBREGA, F.G.; SOUSA, G.D.; VALICENTE, F.H.; ZANETTINI, M.H.B.; Use of transgenic Aedes aegypti in Brazil: risk perception and assessment. Bolletin of the World Hearth Organization. v.94, p.766-771, 2016 ANGELO, I.C.; ALVES, V.T.M. TUNHOLI, V.M.; PERINOTTO, W.M.S; GÔLO, P.S.; CAMARGO, M.G.; BEZERRA, S.Q.; PINHEIRO, J.; BITTENCOURT, V.R.E.P.; Physiological changes in Rhipicephalus microplus (Acari: Ixodidae) experimentally infected with entomopathogenic fungi. Parasitology Research, v.114, p.219-225, 2014. anisopliae. Biocontrol Science and Technology, v. 17, p. 879-920, 2007 a. ARAÚJO, A.P.; DINIZ, D.F.A.; BARROS, E.H.R.A.; OLIVEIRA, C.M.F.; AYRES, C.F.J.; MELO-SANTOS, M.A.V.; REGIS, L.N.; SILVA-FILHA, M.H.N.; The susceptibility of Aedes 55 aegypti populations displaying temephos resistance to Bacillus thuringiensis israelensis: a basis for management. Parasites and Vectors. v.6, p.1-9, 2013. BARLETTA, F.; SILVA-NASCIMENTO, M.C.L.; TALYULI, O.A.C.; OLIVEIRA, J.H.M.; PEREIRA, L.O.R.; OLIVEIRA, P.L.; SORGINE, M.H.F.; Microbiota activates IMD pathway and limits Sindbis infection in Aedes aegypti. Parasites and vectors, v.10, p.126-132, 2017. BEZERRA, E.B; FERNANDES, C.R.M; SOUZA, J.T; FREITAS, E.M; SANTOS, K; Efeito da Qualidade da Água no Ciclo de Vida e na Atração para Oviposição de Aedes aegypti (L.) (Diptera: Culicidae). Neotropical Entomology, v.3, p.1016-1023, 2010. Bischoff, J.F.; REHNER, S.A.; HUMBER, R.A.; A multilocus phylogeny of the Metarhizium anisopliae lineage. Mycologia, v.101, p.512–530, 2009. BRAGA, I.A.; VALLE, D.; Aedes aegypti: histórico do controle no Brasil. Revista Epidemiologia e Serviço de Saúde, v.16, p 113 - 118, 2007 a. BRAGA, I.A.; VALLE, D.; Aedes aegypti: inseticidas, mecanismos de ação e resistência. Revista Epidemiologia e Serviço de Saúde, v.16, p.279-293, 2007 b. BRASIL. Boletim Epidemiológico - Secretaria de Vigilância em Saúde − Ministério da Saúde – Brasil v48 n°43 – 2017 disponível em http://portalsaude.saude.gov.br/index.php/situacaoepidemiologica-dados-dengue. BUTT, T. M.; GREENFIELD, B. P. J.; GREIG, C.; MAFFEIS, T. G. G.; TAYLOR, J. W. D.; PIASECKA, J.; EASTWOOD, D. C.; Metarhizium anisopliae Pathogenesis of Mosquito Larvae: A Verdict of Accidental Death, Plos One, v.8, p.1-11, 2013. CAMARGO, M.G.; GOLO P.S.; ANGELO, I.C.; PERINOTTO, W.M.S.; SÁ, F.A.; QUINELATO S.; BITTENCOURT V.R.E.P. Effect of oil-based formulations of acaripathogenic fungi to control Rhipicephalus microplus ticks under laboratory conditions. Veterinary Parasitology v.188, p.140–147, 2012. CAVALCANTI, L.P.G.; PONTES, R.J.S.; REGAZZI, A.C.F.; JÚNIOR, F.J.P.; FRUTUOSO, R.L.; SOUSA, E.P.; FILHO, F.F.D.; LIMA, J.W.O.; Competência de peixes como predadores de larvas de Aedes aegypti, em condições de laboratório. Revista de Saúde Pública, v.41, p.638-44, 2007. CONSOLI, R.A.G.B.; OLIVEIRA, R.L.; Principais mosquitos de importância sanitária no Brasil. Rio de Janeiro, RJ: Fiocruz, Reimpressão CAP. 3, 1998. D’AMATO, C.; TORRES, J.P.M.; MALM, O.; DDT (dicloro difenil tricoloetano): Toxicidade e contaminação ambiental – Uma revisão. Química Nova, v.25, p.995 – 1002, 2002. 56 DANIEL, J.F.S.; SILVA, A.A.; NAKAGAWA, D.H.; MEDEIROS, L.S.; CARVALHO, M.G.; TAVARES, L.J.; ABREU, L.M.; RODRIGUES-FILHO, E.; Larvicidal Activity of Beauveria bassiana Extracts against Aedes aegypti and Identifcation of Beauvericins. Journal of the brazilian chemical society, v. 28, p.1003-1013, 2017. DIAS, L. S.; MACORIS, M. L.G.; ANDRIGHETTIS, M. T. M.; OTRERAS, V. C. G.; DIAS, A. S.; BAUZER, L. G. S.R.; RODOVALHO, C. M.; MARTINS, A. J.; Toxicity of spinosad to temephos-resistant Aedes aegypti populations in Brazil. Plos One, v.12, p.1-16p, 2017. DINIZ, M.M.C.S.L; HENRIQUE, A.D.S.; LEANDRO, R.S.; AGUIAR, D.L.; BESERRA, E.B.; Resistência de Aedes aegypti ao temefós e desvantagens adaptativas. Revista de Saúde Pública, v.48, p.775-782, 2014. DONALISIO, M.R.; FREITAS, A.R.R.; Chikungunya no Brasil: um desafio emergente. Revista Brasileira de Epidemiologia, v.18, p.283-285, 2015. DONG, Y.; JUNIOR, J.C.M.; RAMIREZ, J.C.; SOUZA-NETO, J.A.; DIMOPOULOS, G. The entomopathogenic fungus Beauveria bassiana activate toll and JAK-STAT pathwaycontrolled effector genes and anti-dengue activity in Aedes aegypti. Insect Biochemistry and Molecular Biology, v.42. p. 126-132, 2012. DONZELLI, B.G.G.; KRASNOFF, S.B.; SUM-MOON, YONG.; CHURCHILL, A.C.L.; GIBSON, D.M.; Genetic basis of destruxin production in the entomopathogen Metarhizium robertsii. Current Genetics, v.58, p.105–116, 2012. DUARTE, G. F. Viabilidade de massas ovígeras de Biomphalaria glabrata em filme de água e susceptibilidade a Metarhizium anisopliae e Beauveria bassiana. 2014. 61p. Dissertação (Medicina Tropical e Saúde Pública). Universidade Federal de Góias. Góias.2014. DUARTE, G.; MORON, A.F.; TIMERMAN, A.; FERNANDES, C.E.; NETO, C.M.; FILHO, G.L.A.; JUNIOR, H.W.; SANTO, H.F.B.E.; STEIBEL, J.A.F.; FILHO, J.B.; ANDRADE, J.B.B.; BURLÁ, M.; SÁ, M.F.S.; BUSSO, N.E.; GIRALDO, P.C.; SÁ, R.A.M.; JUNIOR, R.P.; MATTAR, R.; FRANCISCO, R.P.V. Zika Virus Infection in Pregnant Women and Microcephaly. Revista Brasileira de Ginecologia e Obstetrícia, v.39, p.235–248, 2017. ERLER, F.; ATES, A.O.; Potential of two entomopathogenic fungi, Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae (Coleoptera: Scarabaeidae), as biological control agents against the June beetle. Journal of Insect Science. v.15 p.1-7, 2015. FALVO, M. L.; PEREIRA-JUNIOR, R. A.; RODRIGUES, J.; LOPEZ LASTRA, C. C.; GARÇÍA, J. J.; FERNANDES, E. K. K.; LUZ, C.; UV-B radiation reduces in vitro germination of Metarhizium anisopliae s.l. but does not affect virulence in fungus treated 57 Aedes aegypti adults and development on dead mosquitões. Journal of Applied Microbiology, v.121 p.1710-1717, 2016. FEITOSA, F.R.S.; SOBRAL, I.S.; SILVA, M.S.F.; JESUS, E.N.; Estratégias de prevenção e controle da dengue em Aracaju: Potencialidades e fragilidades. Revista Caminhos de Geografia, v.17 p.149-168, 2016. FINKLER, C.L.L.; Controle de insetos: Uma breve revisão. Anais da Academia Pernambucana de Ciência Agronômica, Recife, v.8 e 9, p.169-189, 2011/2012. FREITAS, R.M.; AVENDANHO, R.C.; SANTOS, R.; SYLVESTRE, G.; ARAU, S.C.; LIMA, P.B.; MARTINS, A.J.; COELHO, G.E.; VALLE, D.; Undesirable Consequences of Insecticide Resistance following Aedes aegypti Control Activities Due to a Dengue Outbreak. Plos one. v.9, p.1-10, 2014. FUNDAÇÃO NACIONAL DE SAÚDE (Brasil). Programa Nacional de Controle da Dengue (PNCD). Brasília, 2002. GARZA-HERNANDEZ, J.A.; RODRIGUEZ-PEREZ, M.A, SALAZAR, M.I.; RUSSELL, T.L.; ADELEKE, M.A.; LUNA-SANTILLANA, E.J.; REYES-VILLANUEVA, F.; Vectorial Capacity of Aedes aegypti for Dengue Virus Type 2 Is Reduced with Co-infection of Metarhizium anisopliae, PLOS Neglected Tropical Diseases. v.7, p.1-5, 2013. GARZIERA, L.; PEDROSA, M.C.; SOUZA, F.A.; GOMEZ, M.; MOREIRA, M.B.; VIRGINIO, J.F.; CAPURRO, M.L.; CARVALHO, D.O.; Effect of interruption of overflooding releases of transgenic mosquitoes over wild population of Aedes aegypti: two case studies in Brazil. The Netherlands Entomological Society Entomologia Experimentalis et Applicata. v. 164, p.327–339, 2017. GOLO, P.S.; GARDNER, D.R.; GRILLEY, M.M.; TOKEMOTO, J.Y.; BRASKNOF, S.B.; PIRES, M.S.; FERNANDES, E.K.K.; BITTENCOURT, V.R.P.; ROBERTS, D.W.; Production of Destruxins from Metarhizium spp. Fungi in Artificial Medium and in Endophytically Colonized Cowpea Plants. Plos One, v.9. p. 1-9, 2014. GOMES, A.C.; SILVA, N.N.; BERNAL, R.T.I.; LEANDRO, A.S Estimação da infestação predial por Aedes aegypti (Díptera: Culicidae) por meio da armadilha Adultrap®. Revista Epidemiologia e Serviço de Saúde. V.17 p.293-300, 2008. GOMES, S.A; PAULA, A.R; RIBEIRO, A; MORAES, C.A.P; SANTOS, J.W.A.B; SILVA, C.P; SAMUELS, R.L.; Neem oil increases the efficiency of the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae for the control of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) larvae. Parasites & Vectors, v.8, p.1280-1289, 2015. 58 GREENFIELD, BP. J.; LORD, A.M.; DUDLEY, E.; BUTT, T.M.; Conidia of the insect pathogenic fungus, Metarhizium anisopliae, fail to adhere to mosquito larval cuticle. The Royal Society open Science, v,1 p.1-9, 2014. GUZMAN, M.G.; HARRIS, E.; Dengue. Journal the Lancet v. 385, 453–465p 2015. HAWKSWORTH, D.L. Micologist’s handbook. 2ªed. England, Kew Surrey: CAB Press, 1977. 231p HELMY, E.I.; KWAIZ, F. A.; EL-SAHN, O.M.N.; The usage of mineral oils to control insects. Egypt. Acad. J. Biolog. Sci., v. 5, p.167 -174, 2012. HOLDER, D. J.; KEYHANI, N.O. Adhesion of the Entomopathogenic Fungus Beauveria (Cordyceps) bassiana to Substrata. Applied and Environmental Microbiology, v.71, p. 5260–5266, 2005. KLEESPIES, R. G.; ZIMMERMANN, G.; Production of Blastospores by Three Strains of Metarhizium anisopliae (Metch.) Sorokin in Submerged Culture. Biocontrol Science and Technology, v.2, p.127-135, 1991. LIMA, E.P.; FILHO, A.M.O.; LIMA, J.W.O.; JÚNIOR, A.N.R.; CAVALCANTI, L.P.G.; PONTES, R.J.S.; Resistência do Aedes aegypti ao Temefós em Municípios do Estado do Ceará. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v.3, 259-263p., 2006. LIMA, J.B.P.; ROSA-FREITAS, M.G.; RODOVALHO, C.M.; BRAGA, I.A.; Field and semi-field evaluation of Bacillus Thuringiensis var.israelensis versus Temephos® in Aedes aegypti control. Journal of Health and Biology Science v.4 p.65-74, 2017. MARCONDES, D. M.; C. B., XIMENES, M.F.F. M.; Zika virus in Brazil and the danger of infestation by Aedes (Stegomyia) mosquitoes. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v.49, p.4–10, 2016. MASCARIN, G. M.; LOPES, R. B.; DELALIBERA JR.C. Í., FERNANDES, É. K. K.; LUZ, C.; FARIA, M.; Current status and perspectives of fungal entomopathogens used for microbial control of arthropod pests in Brazil. Journal of Invertebrate Pathology in impression MASCARIN, G.M.; JACKSON, M.A.; KOBORI, N.N.; BEHLE, R.W.; JÚNIOR, Í. D.; Liquid culture fermentation for rapid production of desiccation tolerant blastospores of Beauveria bassiana and Isaria fumosorosea strains. Journal of Invertebrate Pathology, v.127, p.11-20, 2015.Environmental Monitoring and Assessment v.189, p.1-9. 2015. 59 MIRANPURI, G.S.; KHACHATOURIANS, G.G.; Larvicidal activity of blastospores and conidiospores of Beauveria bassiana (strain GK 2016) against age groups of Aedes aegypti. Veterinary Parasitology, v.37, p.155-162, 1990. NETO, F.C.; Descrição da colonização de Aedes aegypti na região de São José do Rio Preto, São Paulo. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical V.30 p.279-285, 1997. OLIVEIRA, C. S.; VASCONCELOS, P. C. S. Microcephaly and Zika vírus. Jornal de Pediatria, v.92, p.103-105, 2016. ORLANDELLI, R.C.; PANPHILE, J.A.; Fungo entomopatogênico metarhizium anisopliae como agente de controle biológico de insetos pragas. Revista Saúde e biologia. v.6, p.79-82, 2011. OTTATI-DE-LIMA, E. L.; FILHO, A. B.; ALMEIDA, J. E. M.; GASSEN, M. H.; WENZEL, I. M. ALMEIDA, A. M.B.; ZAPELLINI, L. O.; Liquid production of entomopathogenic fungi and ultravioleta radiation and temperature effects on produced propagules. Arquivos do Instituto de Biologia, v.81, p. 342-350, 2014. POWELL, J.R; TABACHINICK, W.J. History of domestication and spread of Aedes aegypti - A review. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, v.108 p11-17, 2013. RAGAVENDRAN, C.; DUBEY, N.K.; NATARAJAN, D.; Beauveria bassiana (Clavicipitaceae): a potente fungal agent for controlling mosquito vectors of Anopheles stephensi, Culex quinquefasciatus and Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). The Royal Society of Chemistry. v.7, p.3838–3851, 2017. ROBERTS, D.W.; ST LEGER, R.J. Metarhizium spp., cosmopolitan insect-pathogenic fungi: mycological aspects. Advances in applied microbiology, v. 54, p. 1-70, 2004. SALJE, H.; LESSLEER, J.; BERRY, I.M.; MELENDREZ, M.C.; ENDY, T.; KALAYANAROOJ, S.; A-NUEGOONPIPAT, A.; CHANAMA, S.; SANGKIJPORN, S.; KLUNGTHONG, C.; THAISOMBOONSUK, B.; NISALAK, A.; GIBBONS, R.V.; IAMSIRITHAWORN, S.; MACAREO, L.R.; YOON, I.; SANGARSANG, A.; JARMAN, R.J.; CUMMINGS, D.A.T.; Dengue diversity across spatial and temporal scales: Local structure and the effect of host population size. Science v.355, p.1302–1306, 2017. SCHOLTE, E.J.; KNOLS, B.G.J.; TAKKEN, W.; Infection of the malaria mosquito Anopheles gambiae with the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae reduces blood feeding and fecundity. Journal of Invertebrate Pathology, v 91, p.43–49, 2012. SCHRANK, A.; VAINSTEIN, M.H.; Metarhizium anisopliae enzymes and toxins. Toxicon, v.56, p.1267-1274, 2010. 60 SILVA, C.M.; COUTINHO, G.S.L.; OLEA, R.S.G.; A luta humana contro o A. aegypti. Caderno de Pesquisa de São Luís, v.19, p.105-113, 2012 SILVA, R.Z.; NEVES, P.M.O.J.; SANTORO, P.H.; CAVAGUCHI, S.A.; Efeito de Agroquímicos à Base de Óleo Mineral e Vegetal sobre a Viabilidade dos Fungos Entomopatogênicos Beauveria bassiana (Bals.) Vuillemin, Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorokin e Paecilomyces sp. Bainier. Bioassay, v.1 p.1-5, 2006. SREE, K. S.; PADMAJA, V. Oxidative stress induced by destruxin from Metarhizium anisopliae (Metch.) involves changes in glutathione and ascorbate metabolism and instigates ultrastructural changes in the salivary glands of Spodoptera litura (Fab.) larvae. Toxicon, v.51, p.1140-1150, 2008. TSUNODA, T.; FUKUCHI, A.; NANBARA, S.; TAKAGI, M. Effect of body size and sugar meals on oviposition of the yellow fever mosquito, Aedes aegypti (Diptera: Culicidae Journal of Vector Ecology. v.35, p.56-60, 2010. TULLOCH, M. The genus Metarhizium. Transactions of the British Mycological Society v. 66, p. 407-411, 1976. VALICENTE, F.H. Controle biológico de pragas com entomopatogênos. Informe Agropécuário.v30 p.48-55, 2009. VALLE, D.; No magic bullet: citizenship and social participation in the control of Aedes aegypti. Epidemiologia e serviço de saúde.v.25, p.1-4, 2016. WANG, C.; WANG. S.; Insect Pathogenic Fungi: Genomics, Molecular Interactions, and Genetic Improvements, The Annual Review of Entomology, v.62, p.73–90, 2017. WASSERMANN, M.; SELZER, P.; STEIDLE, J. L. M.; Ute MACKENSTEDT, U. Biological control of Ixodes ricinus larvae and nymphs with Metarhizium anisopliae blastospores. Ticks and Tick-borne Diseases v.7, p.768–771, 2016. WEMELINGERS, D.E.; CARVALHO, R.W.; Métodos e procedimentos usados no controle do Aedes aegypti na bem-sucedida campanha de proflaxia da febre amarela de 1928 e 1929 no Rio de Janeiro, Revista Epidemiologia a Serviço da Saúde v.25 p.837-844, 2016. ZARA, A.L.S.A.; SANTOS, S.M.; OLIVEIRA, E.S.F.; CARVALHO, E.S.F.; COELHO, G.E.; Aedes aegypti control strategies: a review. Revista Epidemiogica e Serviço de Saude, v.25, p.391-404,2016. ZIMMERMANN, G. Review on safety of the entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Beauveria brongniartii. Biocontrol Science and Technology, v. 17, p. 553-596, 2007 b. 61 ZIMMERMANN, G. Review on safety of the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae. Biocontrol Science and Technology, v.17, p.,879-920, 2007.por
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