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dc.contributor.authorSilva, Cleudison Gabriel Nascimento da
dc.date.accessioned2023-12-22T02:49:38Z-
dc.date.available2023-12-22T02:49:38Z-
dc.date.issued2017-08-07
dc.identifier.citationSilva, Cleudison Gabriel Nascimento da. Uso da Técnica de PCR em Tempo Real para Quantificação de Bactérias Diazotróficas Endofíticas em Tecidos de Cana-de-açúcar. 2017. [98 f.]. Dissertação( Programa de Pós-Graduação em Fitotecnia) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, [Seropédica - RJ] .por
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/13698-
dc.description.abstractO inoculante para cana-de-açúcar, desenvolvido pela Embrapa Agrobiologia, pode aumentar a produção da cultura por meio da promoção do crescimento vegetal. Esse biofertilizante é composto por estirpes de cinco espécies de bactérias diazotróficas: Herbaspirillum rubrisubalbicans (HCC103), H. seropedicae (HRC54), Gluconacetobacter diazotrophicus (Pal5T), Nitrospirillum amazonense (CbAmc) e Paraburkholderia tropica (Ppe8T), as quais foram isoladas da própria cultura. Além de fixarem nitrogênio atmosférico, essas bactérias também desempenham outros papeis tais como: atividade antipatógena, produção de hormônios vegetais e sideróforos, e o aumento da tolerância a estresses. Apesar desses efeitos benéficos, ainda há necessidade de ampliar o conhecimento sobre o estabelecimento das bactérias inoculadas nos tecidos da cana-de-açúcar. A fim de monitorar a populacional dessas bactérias no interior da planta foram desenhados primers para PCR em Tempo Real utilizando (qPCR) os programas Primers3Plus e Oligo Explore. Esses primers tiveram sua especificidade avaliada em nível de espécie e estirpe utilizando a PCR convencional para posterior utilização na quantificação por qPCR. A quantificação das bactérias do inoculante utilizando o qPCR com os primers selecionados foi comparada com as técnicas de contagem em Câmara de Neubauer e Microgota em placa. Para testar os primers, a partir do DNA extraído de plantas de cana-de-açúcar, foram montados dois experimentos, um ao ar livre em solo e o outro em casa de vegetação em areia com vermicula (2:1) esterilizada, ambos na Embrapa Agrobiologia, Seropédica-RJ, utilizando as variedades de cana-de-açúcar RB867515 e RB92579. As coletas de tecidos ocorreram para o primeiro experimento aos 90, 180 e 270 dias após o plantio e para o segundo aos 25, 40 e 55 dias após a inoculação. O DNA para análise foi extraído de aproximadamente 300 mg de cada tecido (raiz e parte aérea). As análises de PCR mostraram que os primers Hr103C4062, Pt8C14 e Pt8C3641 são provavelmente estirpe-específico para a estirpe HCC103 de H. rubrisubalbicans e a estirpe Ppe8T de P. tropica respectivamente. O primer de maior sensibilidade foi o NaCbCgyrA capaz de amplificar a partir de apenas 0,0000067 ng de DNA alvo. A qPCR mostrou maior sensibilidade para quantificação do número de células bacterianas que a contagem por Microgota em placa pelo teste de média Tukey a 5% de significância. As análises estatísticas do experimento I mostraram que não houve diferença significativa na população geral das bactérias que compõem o inoculante para cana-de-açúcar, para os tratamentos inoculados e não inoculados, ou com e sem dose de N-fertilizante. No experimento II também não houve diferença estatística na média geral, para tratamento inoculado e controle, porém, para as espécies bacterianas do inoculante individualmente houve acréscimo populacional significativo. Além disso, em ambos os experimentos a população das bactérias do inoculante para cana-de-açúcar foi reduzida com o tempo.por
dc.description.sponsorshipCoordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil.por
dc.formatapplication/pdf*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropor
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.subjectEndofíticaspor
dc.subjectSaccharum officinarumpor
dc.subjectOligonucleotídeospor
dc.subjectEndophyticeng
dc.subjectSaccharum officinarumeng
dc.subjectOligonucleotideseng
dc.titleUso da técnica de PCR em tempo real para quantificação de bactérias Diazotróficas Endofíticas em tecidos de cana-de-açúcarpor
dc.title.alternativeUse of the Real-Time PCR Technique for Quantification of Endophytic Diazotrophic Bacteria in Sugarcane Tissues.eng
dc.typeDissertaçãopor
dc.description.abstractOtherThe inoculant for sugarcane, developed by Embrapa Agrobiology, can increase crop production by promoting plant growth. This biofertilizer is composed of strains from five species of diazotrophic bacteria: Herbaspirillum rubrisubalbicans (HCC103), H. seropedicae (HRC54), Gluconacetobacter diazotrophicus (Pal5T), Nitrospirillum amazonense (CbAmc) and Paraburkholderia tropica (Ppe8T), which were isolated from sugarcane. In addition to fixing atmospheric nitrogen, these bacteria also play other roles such as: antipathogenic activity, production of plant hormones and siderophores, and increased stress tolerance. Despite these beneficial effects, there is still a need to increase the knowledge about the establishment of the bacteria inoculated in the sugarcane tissues. In order to monitor the population of these bacteria inside the plant primers were for PCR and Real Time using (qPCR) designed ubsing the solftwares Primers3Plus and Oligo Explore. These primers had their specificity assessed at the species and strain level using standard PCR for subsequent use for qPCR quantification. Quantification of the inoculant bacteria using qPCR with the selected primers was compared with counting techniques in Neubauer Chamber and Microdrop in plaque. In order to obtain sugarcane DNA to test the primers, two experiments were carried out, one in the open air and the other in green house with sterilized vermicula and sand (2:1), both at Embrapa Agrobiologia, Seropédica-RJ, using the sugarcane varieties RB867515 and RB92579. Plant tissues were havested for the first experiment at 90, 180 and 270 days after planting and at the second experiment at 25, 40 and 55 days after inoculation. The DNA for analysis was extracted from approximately 300 mg of each tissue (root and shoot). PCR analyzes suggest that the primers Hr103C4062, Pt8C14 and Pt8C3641 are strain-specific for the HCC103 strain of H. rubrisubalbicans and the P. tropica strain Ppe8T respectively. The most sensitive primer was NaCbCgyrA, capable of amplifying from only 0.0000067 ng of target DNA. The qPCR showed to be more sensitivity for quantification of the bacterial cell number than the counting by Microdrop on plate by the Tukey test at 5% of significance. Experiment I statistical analysis showed that there was no significant difference in the general from sugarcane bacteria inoculant population for inoculated and non-inoculated treatments, as well as with or without N fertilizer dose. In the experiment II there was also no statistical difference in the general mean for inoculated treatment and control, however, for the bacterial species of the individual inoculant there was a significant population increase. Moreover, in both experiments the bacterial population of the sugarcane inoculant was reduced over time.eng
dc.contributor.advisor1Caballero, Segundo Sacramento Urquiaga
dc.contributor.advisor1ID058898198-28por
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/0525790556695433por
dc.contributor.advisor-co1Araújo, Jean Luiz Simões de
dc.contributor.referee1Baldani, José Ivo
dc.contributor.referee2Vidal, Márcia Soares
dc.creator.ID006014452-10por
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/8709802793239892por
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.departmentInstituto de Agronomiapor
dc.publisher.initialsUFRRJpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Fitotecniapor
dc.relation.referencesABELHO, M. Protocolos de Microbiologia Ambiental. Parte 1- Métodos básicos em microbiologia. Escola Superior Agrária. Instituto Politécnico de Coimbra. p. 12. 2013. Disponível em< http://www.esac.pt/Abelho/MicroAmbiental/Protocolos%5B1%5D_2012_2013. pdf> Acesso em 16/07/2017. ALENCAR. K. Análise do balanço entre demanda por etanol e oferta de cana-de-açúcar no Brasil. 2012. 49 f. Dissertação (Mestrado) – Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz” – Universidade de São Paulo, Piracicaba. ALJANABI, S. M.; FORGET, L. And DOOKUN, A. An improved rapid protocol for the isolation of polysaccharide and polyphenol-free sugarcane DNA. Plant Mol. Biol. Reporter. 17(3):1-8. 1999. ANGELIS, D. F. & VALSECHI, O. A. II CURSO DE MONITORAMENTO TEÓRICO E PRÉTICO DA FERMENTAÇÃO ETANÓLICA. Apostila em PDF. p. 19. Disponível em< http://www.cca.ufscar.br/~vico/2%20monitoramento/apostila_1.pdf>. Rio Claro 2008. ANONYMOUS, R. Guidelines for the Validation of Analytical Methods for the Detection of Microbial Pathogens in Foods and Feeds, 2nd Edn. Silver Spring, MD:US Food & Drug Administration; Office of Foods and Veterinary Medicine. 2015. APPLIED BIOSYSTEMS. Real-Time PCR Vs. Traditional PCR. Disponível em <http://www6.appliedbiosystems.com/support/tutorials/pdf/rtpcr_vs_tradpcr.pdf> Acesso em: 30/06/2017. ARAÚJO, W. L. DESENVOLVIMENTO DE METODO MOLECULAR PARA QUANTIFICAÇÃO DE BACTÉRIAS EM PRODUTOS INDUSTRIALIZADOS. Dissertação (Mestrado) Biotecnologia. Programa de Pós-Graduação da Universidade de Mogi das Cruzes. Mogi das Cruzes, SP. 63 f. 2010. ARCANJO, S. S.; SANTOS, S. T.; TEIXEIRA, K. R. S.; BALDANI, J. I. Ocurrence and dissemination of endophytic diazotrophic bacteria in sugarcane fields. In: PEDROSA, F. L.; HUNGRIA, M.; YATES, G.; NEWTON, W. E. Nitrogen fixation: From: molecules to crop productivity. Current plant sciences and biotechnology in agriculture, Dordrecht; Kluwer Academic, 2000, v.38, p. 605. ARRUDA JÚNIOR, R. G. Temperatura de Melting: um estudo comparativo. Monografia (Bacharelado)- Faculdade de Computação. Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Campo Grande – MS . 51fls. 2010. AZEVEDO, M. O.; FELIPE, M. S. S.; BRÍGIDO, M. M.; MARANHÃO, A. Q.; DE-SOUZA, M. T. Técnicas básicas em Biologia Molecular. Brasília: Editora Universidade de Brasília. 212p.:il. ISBN:85-230-0685-0. 2003. AZEVEDO, M. S.; TEIXEIRA, K. T. S.; KIRCHHOF, G.; HARTMANN, A.; BALDANI, J. I. Influence of soil and host plant crop on the genetic diversity of Azospirillum amazonense isolates. Elsevier GmbH. 49:565-576. DOI: 10.1016/j.pedobi.06.008. 2005. 68 AZMAT, M. A.; KHAN, I. A.; CHEEMA, H. M. N.; RAJWANA, I. A.; KHAN, A. S.; KHAN, A. A. Extraction of DNA suitable for PCR applications from mature leaves of Mangifera indica L. Univ.-Sci. B (Biomed. Biotechnol.) 13 (4), 239–243. 2012. BACHMANN, B.; LUKE, W.; HUNSMANN, G. Improvement of PCR amplified DNA sequencing with the aid of detergents. Nucleic Acids Res 18: 1309. 1990. BALDANI, J. I.; AZEVEDO, M. S.; REIS, V. M.; TEIXEIRA, K. R. S.; OLIVARES, F. L.; GOI, S. R.; BALDANI, V. L. D. & DÖBEREINER, J. Fixação biológica de nitrogênio em gramíneas: avanços e aplicações. In: SIQUEIRA, J. O.; MOREIRA, F. M. S.; LOPES, A. S.; GUILHERME, L. R. G.; FAQUIN, V.; FURTINI NETO, A. E.; CARVALHO, J. G. Interrelação fertilidade, biologia do solo e nutrição de plantas. Viçosa: SBCS; Lavras: UFLA/DCS, 1999. p. 621-666. BALDANI, J. I.; BALDANI, V. L. D. History on the biological nitrogen fixation research in graminaceous plants: special emphasis on the Brasilian experience. Anais da Academia Brasileira de Ciências, v.77, p.549-579, 2005. BALDANI, J. I.; BALDANI, V. L. D.; SELDIN, L.; DÖBEREINER, J. Characterization of Herbaspirillum seropedicae gen. nov., sp. A root-associated nitrogen-fixing bacterium. International Journal of Systematics Bacteriology, Washington, v. 36, n. 1, p. 86-93, 1986. BALDANI, J. I.; CARUSO, L. V.; BALDANI, V. L. D.; GOI, S. R. & DÖBEREINER, J. Recent advances in BNF with non-legume plants. Soil Biol. Biochem. 29:911-922, 1997. BALDANI, J. I.; GUEDES, H. V.; VIDAL, M. S.; SCHWAB, S.; TEIXEIRA, K. R. S.; CRUZ, L. M.; SIMÕES-ARAÚJO, J. L. Base de dados genômica de estirpes que compõem o inoculante de cana-de-açúcar e milho. Embrapa Agrobiologia. Documentos 282. Seropédica: Embrapa, 32 p. 2011. BALDANI, J. I.; REIS, V. M.; TEIXEIRA, K. R. S.; BALDANI, V. L. D. Potencial biotecnológico de bactérias diazotróficas associativas e endofíticas. In: SERAFINI, L. A.; BARROS, N. M.; AZEVEDO, J. L. Biotecnologia: avanços na agricultura e na agroindústria. Caxias do Sul: EDUCS, 2002. P. 195-232. BALDANI, J. I.; REIS, V. M.; VIDEIRA, S. S.; BODDEY, L. H. & BALDANI, V. L. D. The art of isolating nitrogen-fixing bacteria from non-leguminous plants using N-free semi-solid media: a practical guide for microbiologists. Plant Soil. 384:413–431 p. DOI 10.1007/s11104-014-2186-6. 2014. BARROS, R. Energia para um novo mundo. RJ: Monte Castelo Ideias, 2007.160 p. BASTIÁN, F.; COHEN, A.; PICCOLI, P.; LUNA, V.; BARALDI, R.; BOTTINI, R. Production of indole-3-acetic acid and gibberellins A1 e A3 by Acetobacter diazotrophicus and Herbaspirillum seropedicae in chemically-defined culture media. Plant Growth Regulation; an International Journal on Natural and Synthetic Regulators, Dordrecht, v. 24, p. 7-11, 1998. BELLONE, C. H. y BELLONE, S. C. Fijación biológica del nitrogeno atmosférico. 1ª ed. Tucumán: el autor, 223 p.; 24x16 cm. 2006. 69 BERMÚDEZ-GUZMÁN, M. J.; GUZMÁN-GONZÁLEZ, S.; OROZCO-SANTOS, M.; VELÁZQUEZ-MONREAL, J. J.; BUENROSTRO-NAVA, M. T.; Y MICHEL-LÓPEZ, C. Y. Optimización de un protocolo para aislamiento de DNA de hojas de Saccharum officinarum. J. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas. Vol.7 Núm.4 16 de mayo - 29 de junio, p. 897-910. 2016. BERTALAN, M.; ALBANO, R.; PÁDUA, V.; ROUWS, L.; ROJAS, C.; HEMERLY, A.; TEIXEIRA, K. R.; SCHWAB, S.; SIMÕES-ARAÚJO, J. L.; OLIVEIRA, A.; FRANÇA, L.; MAGALHÃES, V.; ALQUÉRES, S.; CARDOSO, A.; ALMEIDA, W.; LOUREIRO, M. M.; NOGUEIRA, E.; CIDADE, D.; OLIVEIRA, D.; SIMÃO, T.; MACEDO, J.; VALADÃO, A.; DRESCHSEL, M.; FREITAS, F.;VIDAL, M. S.; GUEDES, H.; RODRIGUES, H.; MENESES, C.; BRIOSO, P.; POZZER, L.; FIGUEIREDO, D.; MONTANO, H.; JUNIOR, J.; FILHO, G. S.; FLORES, V. M. Q.; FERREIRA, B.; BRANCO, A.; GONZALEZ, P.; GUILLOBEL, H.; LEMOS, M.; SEIBEL, L.; MACEDO, J.; ALVES-FERREIRA, M.; SACHETTO-MARTINS, G.; COELHO, A.; SANTOS, E.; AMARAL, G.; NEVES, A.; PACHECO, A. B.; CARVALHO, D.; LERY, L.; BISCH, P.; RÖSSLE, S. C.; ÜRMÉNYI, T.; PEREIRA, A. R.; SILVA, R.; RONDINELLI, E.; VON KRÜGER, W.; MARTINS, O.; BALDANI, J. I. AND FERREIRA, P. C. G. Complete genome sequence of the sugarcane nitrogen-fixing endophyte Gluconacetobacter diazotrophicus Pal5T. BMC Genomics. 10:450 doi:10.1186/1471-2164-10-450. 2009. BIGGS, I. M.; STEW ART, G. R.; WILSON, J. R. & CRITCHLEY, C. N-15 natural abundance studies in Australian commercial sugarcane. Plant Soil, 238:21-30, 2002. BOA SORTE, P. M. F. Estabelecimento de bactérias diazotróficas endofíticas inoculadas em cana-de-açúcar cultivada em duas regiões do Brasil. Instituto de Agronomia, Departamento de Solos, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ. p. 106. 2013. BOA SORTE, P. M. F. Uso da técnica de DGGE para monitorar o estabelecimento de bactérias diazotróficas endofíticas inoculadas em duas variedades de cana-de-açúcar. Dissertação (mestrado), curso de Pós-graduação em Ciência do Solo. Instituto de Agronomia, Departamento de Solos, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ. p. 56. 2009. BOA SORTE, P. M. F.; SIMÕES-ARAÚJO, J. L.; MELO, L. H. V.; GALISA, P. S.; LEAL, L.; BALDANI, J. I. & BALDANI, V. L. D. Development of a real-time PCR assay for the detection and quantification of Gluconacetobacter diazotrophicus in sugarcane grown under field conditions. African Journal of Microbiology Research vol. 8(31). DOI: 10.5897/AJMR2014.6779. pp. 2937-2946, 30 July, 2014. BODDEY, L. H.; DART, P.; GOI, S. R.; BALDANI, J. I. Ocorrência de bactérias diazotróficas endofíticas na cultivar Q151 de cana-de-açúcar cultivada na Austrália. In: REUNIÃO BRASILEIRA DE FERTILIDADE DO SOLO E NUTRIÇÃO DE PLANTAS, 23., REUNIÃO BRASILEIRA SOBRE MICORRIZAS, 7., SIMPÓSIO BRASILEIRA DE BIOLOGIA DO SOLO, 5., REUNIÃO BRASILEIRA DE MICRIBIOLOGIA DO SOLO, 2., 1998, Caxambu, MG. Resumos Lavras: UFLA/SBCS/SBM, 1998. P. 809. BODDEY, R. M. & DÖBEREINER, J. Nitrogen fixation associated with grasses and cereals: Recent results and perspectives for future research. Plant Soil, 108:53-65, 1988. 70 BODDEY, R. M. Biological nitrogen fixation in sugar cane: A key energetically viable biofuel production. Critical Reviews in Plant Science, v. 29, p. 263-279, 1995. BODDEY, R. M.; POLIDORO, J. C.; RESENDE, A. S.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S. Use of 15N natural abundance technique for quantification of the contribution of N2 fixation to sugar cane and others grasses. Australian Journal of Agricultural Research. v. 28, p. 889-895, 2001. BODDEY, R. M.; URQUIAGA, S.; ALVES, B. J. R. & REIS, V. Endophitic nitrogen fixation in sugarcane: Present knowledge and future applications. Plant Soil, 252:139-149, 2003. BONILLA, G. A. E. Seleção de bactérias diazotróficas solubilizadoras de fósforo e seu efeito no desenvolvimento de plantas de arroz. Dissertação (mestrado) – Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Curso de Pós-Graduação em Fitotecnia. p. 64. 2011. BORGES, K C. A. S. Identificação de Madeiras Nativas por DNA BARCODE. Tese (Doutorado) Programa de Pós-Graduação em Ciências Ambientais e Florestais. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Seropédica, RJ. p. 84. 2016. BRASIL, M. S.; BALDANI, J. I. & BALDANI, V. L. D. Ocorrência e diversidade de bactérias diazotróficas associadas a gramíneas forrageiras do pantanal sul mato-grossense. R. Bras. Ci. Solo, 29:179-190, 2005. CALLADINE, C. R.; DREW, H. R.; LUISI, B. F. And TRAVERS, A. A. Understanding DNA: The molecule and how it works, 2004. CASSÁN, F. D. & SALAMONE, I. G. Azospirillum sp.: cell physiology, plant interactions and agronomic research in Argentina. 1ª ed. Buenos Aires: Asoc. Argentina de Microbiología, 2008. 276 p. 15x23 cm. CAVALCANTE, V. A.; DÖBEREINER, J. A new acid-tolerant nitrogen-fixing bacterium associated with sugarcane. Plant and Soil, The Hague, v. 108, p. 23-31, 1988. CGEE - CENTRO DE GESTÃO DE ESTUDOS ESTRATÉGICOS. Estudo sobre as possibilidades e impactos da produção de grandes quantidades de etanol visando à substituição parcial de gasolina no mundo – Fase 1. Campinas: Nipe/Unicamp e Centro de Gestão de Estudos Estratégicos, 2005. CHANG, S.; PURYEAR, J.; CAIRNEY, J. A Simple and Efficient Method for Isolating RNA from Pine Trees. Plant Molecular Biology Reporter 11: 113-116. 1993. COELHO, C. H. M.; MEDEIROS, A. F. A.; POLIDORO, J. C.; XAVIER, R. P.; RESENDE, A.; QUESADA, D. M.; ALVES, B. J. R.; BODDEY, R.; URQUIAGA, S. Identificação de genótipos de cana-de-açúcar quanto ao potencial de contribuição da fixação biológica de nitrogênio. Agronomia, v. 37, p. 37-40, 2003. CONAB - COMPANHIA NACIONAL DE ABASTECIMENTO. Acompanhamento da safra brasileira de cana-de-açúcar, v. 2 – Safra 2015/16, n. 1 - Primeiro Levantamento, Brasília, abr. 2015. Disponível em: http://www.conab.gov.br. 71 COUILLEROT, O.; BOUFFAUD, M.; BAUDOIN, E.; MULLER, D.; CABALLERO-MELLADO, J.; MOËNNE-LOCCOZ, Y. Development of a real-time PCR method to quantify the PGPR strain Azospirillum lipoferum CRT1 on maize seedlings. Soil Biology & Biochemistry, v. 42, n. 12, p. 2298-2305, 2010. CRESTANA, S. Açúcar e Álcool: Da cana-de-açúcar ao álcool combustível. AGROANALYSIS A REVISTA DE AGRONEGÓCIOS DA FGV. FUNDAÇÃO GETULIO VARGAS. Vol 26. N° 12. Dezembro 2006. Caderno Especial. p. 3-4. CRUZ, L. M., SOUZA, E. M.; WEBER, O. B.; BALDANI, J. I.; DÖBEREINER, J.; PEDROSA, F. O. 16S ribossomal DNA characterization of nitrogen-fixing bacterial isolated from banana (Musa spp.) e abacaxi (Ananas comosus (L.) Merril). Applied and Environmental Microbiology, Washington, v. 67, p. 2375-2379, 2001. DA SILVA P. R. A.; SIMÕES-ARAÚJO, J. L.; VIDAL, M. S.; CRUZ, L. M.; SOUZA, E. M. and BALDANI, J. I. Draft genome sequence of Paraburkholderia tropica Ppe8 strain, a sugarcane endophytic diazotrophic bacterium. Brazilian journal of microbiology, 49:210–211. 2018. DEMATTÊ, J. L. I. Nitrogênio em cana planta. RPAnews cana & indústria. Ano15. N° 180. Julho de 2016. p 26-28. DEMEKE, T.; JENKINS, R. Influence of DNA extraction methods, PCR inhibitors and quantification methods on real-time PCR assay of biotechnology-derived traits. Analytical and Bioanalytical Chemistry, Heidelberg, n. 396, p. 1977-1990, 2010. DINARDO-MIRANDA, L. L.; VASCONCELOS, A. C. M.; LANDELL, G. A. Cana-de-açúcar. Eds. Campinas: Instituto Agronômico, 882 p. 2010. DINON, A. Z.; PRINS, T. W.; VAN DIJK, J. P.; ARISI, A. C. M.; SCHOLTENS, I. M. J. & KOK, E. J. Development and validation of real-time PCR screening methods for detection of cry1A.105 and cry2Ab2 genes in genetically modified organisms. Anal Bioanal Chem. 400:1433–1442. Doi:10.1007/s00216-011-4875-9. 2011. DOBRITSA, A. P. And SAMADPOUR, M. Transfer of eleven species of the genus Burkholderia to the genus Paraburkholderia and proposal of Caballeronia gen. nov. to accommodate twelve species of the genera Burkholderia and Paraburkholderia. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 66, 2836–2846. 105:1149–1162. DOI I 10.1099/ijsem.0.001065. 2016. DOYLE, J. J.; DOYLE, J. L. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemical Bulletin, v.19, p.11-15, 1987. ERALI, M.; VOELKERDING K. V. & WITTWERC. T. High resolution melting applications for clinical laboratory medicine. Experimental and Molecular Pathology. Elsevier Inc. All rights reserved. Doi:10.1016/j.yexmp.2008.03.012. 85. 50–58. 2008. EUROGENTC EXPERIENCE TRUE PARTNERSHIP. qPCR Guide. p. 68. Disponível em: http://www.eurogentec.com/uploads/qpcr-guide.pdf. 72 EUROGENTEC® (Experience true partnership). qPCR guide. p. 68. Disponível em, <https://secure.eurogentec.com/uploads/qPCR-guide.pdf> Acessado em: 05/07/2017. FALEIRO, A. C.; PEREIRA, T. P.; ESPINDULA, E.; BROD, F. C. A. ARISI, A. C. M. Real Time PCR detection targeting nifA gene of plant growth promoting bacteria Azospirillum brasilense strain FP2 in maize roots. Symbiosis. Versão Online In: (doi:10.1007/s13199-013-0262-y). p. 9. 2013. FALEIRO, F. G., ANDRADE, S. R. M., REIS JUNIOR, F. B. Biotecnologia: estado da arte e aplicação na agropecuária. Planaltina, DF: Embrapa Cerrados. p. 246-281. 730 p.:il. 2011. FANG, G.; HAMMAR, S.; GRUMET, R. A quick and inexpensive method for removing polysaccharides from plant genomic DNA. Biotechniques, v. 13, p. 53-54, 1992. FELSENSTEIN, J. Confidence limits on phylogenies: An approach using the bootstrap. Evolution. v.39:783-791, 1985. FERREIRA, D. F. Sisvar: a Guide for its Bootstrap procedures in multiple comparisons. Ciênc. agrotec. [online]. 2014, vol.38, n.2 [citado 2017-07-08], pp. 109-112. Disponible en: ISSN 1413-7054. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542014000200001. FIGUEIREDO, G. G. O. Protocolo para inoculação de bactérias diazotróficas em sementes de cana-de-açúcar. Dissertação (Mestrado) – Programa de Pós-Graduação em Agronomia, Setor de Ciências Agrárias, Departamento de Fitotecnia e Fitossanitarismo, Universidade Federal do Paraná. – Curitiba, 2012. FILOSO, S., MARTINELLI, L. A.; HOWARTH, R. W.; BOYER, E. W. & DENTENER, F. Human activities changing the nitrogen cycle in Brazil. Biogeochemistry, 79:61-89, 2006. FORMIGHIERI, E. F. Manual de anotação café. Disponível em <http://www.lge.ibi.unicamp.br/manuais/manual_anota_cafe.htm> Acesso em 28/06/2017. FRANKE-WHITTLE, I. H.; O_SHEA, M. G.; LEONARD, G. J. & SLY, L. I. Design, development, and use of molecular primer and probes for the detection of gluconacetobacter species in the pink sugarcane mealybug. Microbial Ecology, v. 50, p. 128-139, 2005. FUENTES-RAMÍREZ, L. E.; JIMENEZ-SALGADO, T.; ABARCA-OCAMPO, I. R.; CABALERO-MELLADO, J. Acetobacter diazotrophicus a endolacetic producing isolated from sugar cane cultivars of Mexico. Plant and Soil, The Hague, v. 164, p.145-150, 1993. FURUSHITA, M.; SHIBA, T.; MAEDA, T.; YAHATA, M.; KANEOKA, A.; TAKAHASHI, Y.; TRII, K.; HASEGAWA, T.; OHTA, M. Similarity of tetracycline resistance genes isolated from fish farm bacteria to those from clinical isolates. Applied and Environmental Microbiology, v.69, p.5336–5342, 2003. GEHRIG, H. H.; WINTER, K.; CUSHMAN, J.; BORLAND, A. And TAYBI, T. An improved RNA isolation method for succulent plant species richin polyphenols and polysaccharides. Plant Mol. Biol. Rep. 18, 369–376.doi:10.1007/BF02825065. 2000. GHEDIRA, R.; PAPAZOVA, N.; VUYLSTEKE, M.; RUTTINK, T.; TAVERNIERS, I.; DE LOOSE, M. Assessment of primer/template mismatch effects on real-time PCR 73 amplification of target taxa for GMO quantification. J Agric Food Chem, 57(20):9370–9377. 2009. GILLIS, M. Acetobacter diazotrophicus sp. nov a nitrogen-fixing acetic acid bacterium associated with sugarcane. Int. J. f Systematic Bacteriology. 39. 361-364. 1989. GÍRIO, L. A. S.; DIAS, F. L. F.; REIS, M. R.; URQUIAGA, S.; SCHULTZ, N.; BOLONHEZI, D. & MUTTON, M. A. Bactérias promotoras de crescimento e adubação nitrogenada no crescimento inicial de cana‑de‑açúcar proveniente de mudas pré‑brotadas. Pesq. agropec. bras., Brasília, v.50, n.1, p.33-43, DOI: 10.1590/S0100-204X2015000100004. 2015. GOMES, A. A.; REIS, V. M.; BALDANI, V. L. D.; GOI, S. R. Relação entre distribuição de nitrogênio e colonização por bactérias diazotróficas em cana-de-açúcar. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.40, p.1105-1113, 2005. GRAHAM, M. H.; HAYNES, R. J. & MEYER, J. H. Changes in soil fertility induced by trash retention an fertilizer applications on the long-term trash management trial at Mount Edgecombe. Proc. South Africa Sugar Technol. Assoc. 74:109-113, 2000. GRIFFITHS, R. I.; WHITELEY, A.; O’DONNELL, A. G.; BAILEY, M. J. Rapid Method for Coextraction of DNA and RNA from Natural Environmentsfor Analysis of Robosomal DNA- and rRNA-Based Microbial Community Composition. APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY. vol. 66, N°. 12. p. 5488-5491. 2000. GRIFFITHS-JONES, S.; MOXON, S.; MARSHALL, M.; KHANNA, A.; EDDY, S. R. And BATEMAN, A. Rfam: annotating non-coding RNAs in complete genomes. Nucleic Acids Research 33, 2005. GUEDES, H. V.; SANTOS, S. T.; PERIN, L.; TEIXEIRA, K. T. S.; REIS, V. M.; BALDANI, J. I. Polyphasic Characterization of Gluconacetobacter diazotrophicus Isolates Obtained from Different Sugarcane Varieties. Brazilian Journal of Microbiology. 39:718-723. ISSN 1517-8382. 2008. GUPTA, V. et al. The water-deficit stress- and red-rot-related genes in sugarcane. Functional and Integrative Genomics, Berlin, v. 10, n. 2, p. 207-214, 2010. HARTMANN, A.; ZIMMER, W. Physiology of Azospirillum. In: OKON, Y. (Ed.). Azospirillum/ Plant Associations. Boca Raton: CRC press, 1994. p. 15-39. HASSAN, U.; MIRZA, M. S.; MEHNAZ, S.; RASUL, G.; MALIK, K. A. Physiological, biochemical and molecular characterization of Azospirillum ssp. Isolated from cereal crops. In: INTERNATIONAL SYMPOSIUM ON NITROGEN FIXATION WITH NON-EGUMES, 7., 1996, Faisalabad, Pakistan. Abstracts. Pakistan: National Institute for Biotechnology and Genetic Engeneering (NIBGE), 1996. p. 159-160. HEALEY, A.; FURTADO, A.; COOPER, T.; And HENRY, R. J. Protocol: a simple method for extracting next-generation sequencing quality genomic DNA from recalcitrant plant species. Plant Methods. 10:2. p.8. 2014. 74 HEID, C. A.; STEVENS, J.; LIVAK, K. J.; And WILLIAMS, P. M. Real-time quantitative PCR. Genome Res. 6, 986–994. 1996. HILL, P. J. And STEWART, G. S. A. B. The Polymerase Chain Reaction in Molecular and Micro-Biology. Biotechnology and Genetic Enginnering Reviews – Vol. 10, 1992. HOAGLAND, D. R.; ARNON, D. I. The water culture method for growing plants without soil.Calif. Agr. Exp. STA. Cir, 347p., 1950. HOEFSLOOT, G.; TERMORSHUIZEN, A. J. L.; WATT, D. A. & CRAMER, M. D. Biological nitrogen fixation is not a major contributor to the nitrogen demand of a commercially grown South African sugarcane cultivar. Plant Soil, 277:85-96, 2005. HOLMES, A.; BIRSE, L.; JACKSON, R. W.; HOLDEN, N. J. An optimized method for the extraction of bacterial mRNA from plant roots infected with Escherichia coli O157:H7. Frontiers in MICROBIOLOGY. Volume 5: Article 286. 6 p. 2014. HONEYCUTT, R. J.; SOBRAL, B. W. S.; KEIM, P. And IRVINE, J. E. A rapid DNA extraction method for sugarcane and its relatives. Plant Mol. Biol. Reporter. 10(1):66-72. 1992. HOSSAIN, M. A.; SHAIK, M. M.; SHAHNAWAZ, R. M. S.; ISLAM, N. And MIAH, M. A. S. Quality DNA isolation using different methods of sugarcane (Saccharum officinarum L.). Bangladesh J. Sugarcane. 28:65-69. 2006. HUAQIANG, T.; HAITAO, H.; MAMMAN, T.; JIANYAO, M. And HUANXIU, L. Comparative analysis of six DNA extraction methods in cowpea (Vigna unguiculata L. Walp). J. Agric. Sci. 5(7):82-90. 2013. HUNGRIA, M.; FRANCHINI, J. C.; CAMPO, R. J.; CRISPINO, C. C.; MORAES, J. Z.; SIBALDELLI, R. N. R.; MENDES, I. C. & ARIHARA, J. Nitrogen nutrition of soybean in Brazil: contributions of biological N2 fixation and of N fertilizer to grain yield. Can. J. Plant Sci., 86:927-939, 2006. ILHA, E. C; SCARIOT, M. C. TREML, D.; PEREIRA, T. P. SANT′ANNA,E. S.; PRUDÊNCIO, E. S.; ARISI, A. C. M. Comparison of real-time PCR assay and plate count for Lactobacillus paracasei enumeration in yoghurt. Ann Microbiol 66:597–606. p. doi: 10.1007/s13213-015-1137-7. 2016. JAMES, E. K.; OLIVARES, F. L.; BALDANI, J. I.; DÖBEREINER, J. Herbaspirillum, an endophytic diazotrophic colonising vascular tissue in leaves of Sorghum bicolor L. Moench. Journal of Experimental Botany, v. 48, p. 785-797, 1997. JOHNSON, G.; NOLAN, T.; And BUSTIN, S. A. Real-time quantitative PCR, pathogen detection and MIQE. Methods Mol. Biol. 943,1–16. 2013. JONES, D. L.; NGUYEN, C.; FINLAY, R. D. Carbon flow in the rhizosphere: carbon trading at the soil-root interface. Plant Soil 321:5–33. 2009. 75 KENNEDY, I. R. and ISLAM, N. I. The current and potential contribution of symbiotic nitrogen fixation to nitrogen requirements on farms. A Rev. Australian Journal of Experimental Agriculture. 41. 447-457. 2001. KHANUJA, S. P. S.; SHASANY, A. K.; DAROKAR, M. P. And KUMAR, S. Rapid isolation of DNA from dry and fresh samples of plants producing large amounts of secondary metabolites and essential oils. Plant Mol. Biol. Reporter. 17(1):1-7. 1999. KIMURA, M. A. simple method for estimating evolutionary rate of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, v.16:111-120, 1980. KOTCHONI, S. O.; And GACHOMO, E. W. A rapid and hazardous reagent free protocol for genomic DNA extraction suitable for genetic studies in plants. Mol. Biol. Rep. 36:1633–1636. 2009. KRALIK, P. And RICCHI, M. A Basic Guide to Real Time PCR in Microbial Diagnostics: Definitions, Parameters, and Everything. Frontiers in Microbiology. Vol. 8. Article 108. Doi:103389/fmicb.2017.00108. 2017. KUMAR, S.; STECHER, G., and TAMURA K. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution. 33:1870-1874. 2016. LAMB, T. G.; TONKYN, D. W.; KLUEPFEL, D. A. Movement of Pseudomonas aureofaciens from rizosphere to aerial plant tissue. Canadian Journal of Microbioly, v.42, p.1112-1120, 1996. LANDELL, M. G. A.; CAMPANA, M. P.; FIGUEIREDO, P.; XAVIER, M. A.; ANJOS, I. A.; DINARDO-MIRANDA, L. L.; SCARPARI, M. S.; GARCIA, J. C.; BIDÓIA, M. A. P.; SILVA, D. N.; MENDONÇA, J. R.; KANTHACK, R. A. D. CAMPOS, M. F. BRANCALIÃO, S. R.; PETRI, R. H. & MIGUEL, P. E. M. Sistema de multiplicação de cana-de-açúcar com uso de mudas pré-brotadas (MPB), oriundas de gemas individualizadas. 2ª. Ed. Revisada . Campinas: Instituto Agronômico. (Documentos IAC, N. 109). 16 p. 2013. LI, M.; ZHAO, G.; LIU, J.; GAO, X.; ZHANG, Q. Effect of different heat treatments on the degradation of Salmonella nucleic acid. J Food Saf 33:536–544. p. doi:10.1111/jfs.12086. 2013. LIFE® (Technologies). Real-time PCR handbook. p. 70. 2012. Disponível em, <http://www.gene-quantification.de/real-time-pcr-handbook-life-technologies-update-flr.pdf> Acessado em: 04/07/2017. LIMA, D. R. M. Fixação Biológica de Nitrogênio e Nutrição Nitrogenada em Cana Planta Inoculadas com Bactérias Diazotróficas. Tese (Doutorado em Ciência do Solo)- Universidade Federal Rural de Pernambuco, Departamento de Agronomia, Recife. 90 f.:il. 2016. LIMA, K. B. FUNGOS MICORRÍZICOS ARBUSCULARES, BACTÉRIAS DIAZOTRÓFICAS E ADUBAÇÃO FOSFATADA EM MUDAS DE MAMOEIRO. Tese 76 (Mestrado) Produção vegetal. Centro de Ciências e Tecnologias Agropecuárias. Universidade Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro – UENF. Campos dos Goytacazes – RJ. p. 95. 2010. LIN, S.; ASIF HAMEED, A.; SHEN, F.; LIU. Y.; HSU, Y.; SHAHINA, M.; LAI, W.; YOUNG, C. Description of Niveispirillum fermenti gen. nov., sp. nov., isolated from a fermentor in Taiwan, transfer of Azospirillum irakense (1989) as Niveispirillum irakense comb. nov., and reclassification of Azospirillum amazonense(1983) as Nitrospirillum amazonensegen. nov. Springer International Publishing Switzerland. 105:1149–1162. DOI 10.1007/s10482-014-0176-6. 2014. LODEWYCKX, C.; VANGRONSVELD, J.; PORTEOUS, F.; MOORE, E. R. B.; TAGHAVI, S.; MEZGEAY, M. & VAN DER LELIE D. Endophytic bacteria and their potential applications. Crit Rev Plant Sci 21: 583–606. 2002. LODHI, M. A.; GUANG-NING, Y.; WEEDEN N.F.; REISCH, B. I. A simple and efficient method for DNA extraction from grapevine cultivars and Vitis species. Plant Molecular Biology Reporter, v. 12, p. 6-13, 1994. LOOMIS, W. Overcoming problems of phenolics and quinones in the isolation of plant enzymes and organelles. Methods in Enzymology, 31, 528–545. 1974. LUCARINI, A. C.; SILVA, L. A.; BIANCHI, R. A. C. Um Sistema Para a Contagem Semi-automática de Microorganismos. Pesquisa & Tecnologia FEI- N° 26. 36-40 p. 2004. LUCHI, N.; CAPRETTI, P.; PAZZAGLI, M.; PINZANI, P. Powerful qPCR assays for the early detection of latent invaders: interdisciplinary approaches in clinical cancer research and plant pathology. Appl Microbiol Biotechnol 100:5189–5204. p. doi: 10.1007/s00253-016-7541-5. 2016. LUCY, M.; REED, E.; GLICK, B. Applications of free living plant growth-promoting rhizobacteria. Antonie Van Leeuwenhoek, v.86, n.1, p.1-25, 2004. MADIGAN, M. T.; MARTINKO, J. M.; BENDER, K. S.; BUCCKLEY, D. H.; STAHL, D. A. Microbiologia de Brock.14.ed. Porto Alegre: Artmed, 2016. MAGALHÃES, F. M.; BALDANI, J. I.; SOUTO, S. M.; KUYKENDALL, J. R.; DÖBEREINER, J. A new acid-tolerant Azospirillum species. Anais da Academia Brasileira de Ciências, Rio de Rio, v. 55, p. 417-4430, 1983. MCPHERSON, M. J. & MØLLER, S. G. PCR: THE BASICS. T&Finforma. ISBN: 0-4153-5547-8. 2. ed. 305.p. 2006. MICHELLON, E.; SANTOS, A. A. L.; RODRIGUES, J. R. A. Breve descrição do Proálcool e perspectivas futuras para o etanol produzido no Brasil. XLVI Congresso da Sociedade Brasileira de Economia, Administração e Sociologia Rural. Rio Branco-AC. p. 16. 2008. MILANI, K. M. L.; MACHINESKI, O.; BALOTA, E. L. OCORRÊNCIA E ISOLAMENTO DE BACTÉRIAS DIAZOTRÓFICAS ASSOCIADAS À CANA-DE-AÇÚCAR. ENCICLOPÉDIA BIOSFERA, Centro Científico Conhecer - Goiânia, vol.7, N.13; 1345-1351.p. 2011. 77 MONLLOR, N. F. Desarrollo y validación de un nuevo sistema de detección molecular basado en qPCR de Legionella spp. en muestras ambientales. Máster. Instituto Universitário del Agua y de las Ciências Ambientales. Universedad de Alicante. f. 63.il:.2013. MOREIRA, F. M. S. & SIQUEIRA, J. O. Microbiologia e bioquímica do solo. Lavras, Universidade Federal de Lavras, 2002. 626p. MOREIRA, F. M. S.; SILVA, K.; NÓBREGA, R. S. A. & CARVALHO, F. Bactérias diazotróficas associativas: diversidade, ecologia epotencial de aplicações. Comunicata Scientiae 1(2): 74-99, 2010. MOSER, C.; GATTO, P.; MOSER, M.; PINDO, M.; VELASCO, R. Isolation of functional RNA from small amounts of different grape and apple tissues. Molecular Biotechnology, 26, 95-99. 2004. MULLIS, K. B. target amplification for DNA analysis by the polymerase chain reaction. AnnBiolClin 48(8):579-582, 1990. MUOKI, R. C.; PAUL, A.; KUMARI, A.; SINGH, K.; KUMAR, S. An Improved Protocol for the Isolation of RNA from roots of Tea (Camellia sinensis (L.) O. Kuntze). Mol Biotechnol. 52:82-88. 2012. NEVES, M. I. S. C. And LORENA, C. R. M. Desvendando aplicações da biotecnologia no ensino formal. 2009. NOLAN, T.; BERGKVIST, A.; CARVALLO, A.; CHERESON, P. H.; DALEY, L.; HEATH, A.; HIBBS, S.; HOGE, S.; JOURAVLENA, E.; KREADER, C.; MOHAMMED, M.; MUELLER, E.; RICHARDSON, G.; RUSSELL, T.; WARD, B.; WEBER, S. A.; WIKLANDER, M. A Technical Guide PCR TECHNOLOGIES: PCR, RT-PCR; qPCR, RT-qPCR, dPCR. SIGMA-ALDRICH. p.160. 2014. NOVACANA.COM. A produção de cana-de-açúcar no Brasil (e no mundo). Disponível em: www.novacana.com/cana-de-acucar/producao-cana-de-acucar-brasil-e-mundo/#producao-pelo-mundo. Acesso em: 02/07/2016. NOVAIS, R. F.; ALVAREZ, V. H. V.; BARROS, N. F.; FONTES, R. L. F.; CANTARUTTI, R. B.; NEVES, J. C. L. Fertilidade do solo. – Viçosa, MG; Sociedade Brasileira de Ciência do Solo. 1017p.: il. p. 395-397. 2007. NUNES, C. F.; FERREIRA, J. F.; FERNANDES, M. C. N.; BREVES, S. S.; GENEROSO, A. L.; SOARES, B. D. F.; DIAS, M. S. C.; PASQUAL, M.; BOREM, A.; CANÇADO, G. M. A.; Otimização de um método para extração de DNA genômico a partir de folhas de morangueiro. Ciência Rural, v. 8, p. 1382-1389, 2011. NUTZ, S.; DÖLL, K.; and KARLOVSKY, P. Determination of the LOQ in real-time PCR by receiver operating characteristic curve analysis: application to qPCR assays for Fusarium verticillioides and F. proliferatum. Anal. Bioanal. Chem. 401:717–726. doi:10.1007/s00216-011-5089-x. 2011. OLIVARES, F. L. Taxonomia, ecologia e mecanismos envolvidos na infecção e colonização de plantas de cana-de-açúcar (Saccharum sp. Híbrido) por bactérias endofíticas do gênero 78 Herbaspirillum. Seropédica, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, 1997. p.344. Tese (Doutorado em Agronomia, área de concentração em Ciência do Solo – UFRRJ, Itaguaí, RJ. OLIVARES, F. L.; BALDANI, V. L. D.; REIS, V. M.; BALDANI, J. I.; DÖBEREINER, J. Occurrence of the endophytic diazotrophs Herbaspirillum spp. In roots, stems, and leaves, predominantly of Gramineae. Biology and Fertility of Soils, Berlin, v. 21, p. 197-200, 1996. OLIVARES, F. L.; JAMES, E. K.; REIS, V. M.; BALDANI, V. L. D.; BALDANI, J. I.; DÖBEREINER, J. Colonização do tecido vascular por Herbaspirillum spp. em sorgo e cana-de-açúcar. Fitopatologia Brasileira, Brasília, DF, v. 18, Supl., p. 313, 1993. OLIVEIRA, A. L. M.; CANUTO, E. D.; REIS, V. M.; BALDANI, J. I. Response of micropropagated sugarcane varieties to inoculation with endophytic diazotrophic bacteria. Brazilian Journal of Microbiology, v.34, p.59-61, 2003. OLIVEIRA, A. L. M.; CANUTO, E. L.; URQUIAGA, S.; REIS, V. M.; And BALDANI, J. I. Yield of micropropagated sugarcane varieties in different soil types following inoculation with diazotrophic bacteria. Plant Soil. 284:23-32. 2006. OLIVEIRA, A. L. M.; URQUIAGA, S.; DÖBEREINER, J.; And BALDANI, J . I. The effect of inoculating endophytic N2-fixing bacteria on micropropagated sugarcane plantlets. Plant Soil 242: 205–215. 2002. OLIVEIRA, C. A. ESTIMATIVAS DE FIXAÇÃO BIOLÓGICA DE NITROGÊNIO EM CANA-DE-AÇÚCAR POR δ15N. Dissertação (Mestrado) em Agricultura Tropical. Instituto Agronômico, Campinas. 2012, 80 fls. OSEI, O.; SIMÕES-ARAÚJO, J. L.; ZILLI, J. E.; BODDEY, R. M.; AHIABOR, B. D. K. ABAIDOO, R. C. & ROUWS, L. F. M. PCR assay for direct specific detection of Bradyrhizobium elite strain BR 3262 in root nodule extracts of soil-grown cowpea. Plant Soil. Methods Paper. DOI 10.1007/s11104-017-3271-4. 2017. PARKE, J. L.; GURIAN-SHERMAN, D. Diversity of the Burkholderia cepacia complex and implications for risk assessment of biological control strains. Annual Review of Phytopathology, Palo Alto, v. 39, p. 225-258, 2001. PATRIQUIN, D. G.; DÖBEREINER, J.; JAIN, D. K. Sites and processes of association between diazotrophs and grasses. Canadian Journal of Microbiology, Ottawa, v. 29, n. 8, p. 900-915, 1983. PAUL, E. A. and CLARK, F. E. 1996. Soil Microbiology and Biotecnology. Second ed. Academic Press. San Diego. CA. In: BELLONE, C. H. & BELLONE, S. C. Fijación biológica del nitrogeno atmosférico. 1ª ed. Tucumán: el autor, 2006. 223 p.; 24x16 cm. PEREIRA, T. P.; AMARAL, F. P.; DALL’ASTA, P.; BROD, F. C. A.; ARISI, A. C. M. Real-Time PCR Quantification of the Plant Growth Promoting Bacteria Herbaspirillum seropedicae Strain SmR1 in Maize Roots. Mol Biotechnol. Versão Online In:(doi:10.1007/s12033-014-9742-4). p.11. 2014. 79 PEREIRA, W.; LEITE, J. M.; HIPÓLITO, G. S.; SANTOS, C. L. R.; REIS, V. M. Acúmulo de biomassa em variedades de cana-de-açúcar inoculadas com diferentes estirpes de bactérias diazotróficas. Revista Ciência Agronômica, v.44, n.2, p.363-370, 2013. PERIN, L. Ecologia e diversidade de isolados de Gluconacetobacter diazotrophicus associados à cultura da cana-de-açúcar (Saccharum spp). 2003, 68 p. Dissertação (Mestrado em Ciências do solo) – Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ. PESSOA, D. D. V.; VIDAL M. S.; BALDANI, J. I. SIMÕES-ARAÚJO, J L. Validation of reference genes for RT-qPCR analysis in Herbaspirillum seropedicae. Journal of Microbiological Methods. 127 (2016) 193–196. PINHO, M. S. L. Pesquisa em Biologia Molecular: como fazer? Rev bras Coloproct, 26(3): 331-336. 2006. PIÑON, D.; CASAS, M.; BLANCH, M.; FONTANIELLA, B.; BLANCO, Y.; VICENTE, C.; SOLAS, M. T.; LEGAZ, M. E. Gluconacetobacterdiazotrophicus, a sugar cane endosymbiont produces a bacteriocin against Xantomonas albilineaneans, a sugar cane pathogen. Research in Microbiology. Amsterdam. v. 153, p. 345-351, 2001. POLIDORO, J. C.; RESENDE, A. S.; QUESADA, D. M.; XAVIER, R. P.; COELHO, C. H. M.; ALVES, B. J. R.; BODDEY, R. M.; URQUIAGA, S. Levantamento da contribuição da fixação biológica de nitrogênio (FBN) para a cultura cana-de-açúcar no Brasil. Seropédica: Embrapa Agrobiologia, document 144. 26 p. 2001. RABELLO, A.; PONTES, L. A.; ENK, M. J.; MONTENEGRO, S. M. L.; MORAIS, C. N. L. Diagnóstico parasitológico, imunológico e molecular da Esquistossomose mansoni. In: CARVALHO, O. S.; COELHO, P. M. Z.; LENZI, H. L. Orgs. Schitosoma mansoni e esquistossomose: uma visão multidisciplinar [online]. Rio de Janeiro: Editora FIOCRUZ, 2008, pp. 895-925. ISBN 978-85-7541-370-8. Disponível em <http://books.scielo.org/id/37vvw/pdf/carvalho-9788575413708-33.pdf>. Acesso em: 30/06/2017. RADEMAKER, J. L. W.; BRUIJN, F. J. (1997). Characterization and classification of microbes by REP-PCR genomic fingerprinting and computer-assisted pattern analysis. In: REIS JUNIOR, F. B.; MENDES, I. C.; TEIXEIRA, K. R. S.; REIS, V. M. Uso de Ferramentas Moleculares em Estudos da Diversidade de Microrganismos do solo. Planaltina, DF. p.31. 2002. RADWAN, T. El-S. El-D.; MOHAMED, Z. K.; REIS, V. M. Production of indole-3-acetic acid by different strains of Azospirillum and Herbaspirillum ssp. Symbiosis, v.32:39-54, 2002. RAMOS, S. N. M.; SALAZAR, M. M.; PEREIRA, G. A. G.; EFRAIM, P. Plant and metagenomic DNA extraction of mucilaginous seeds. MethodsX 1. 225-228 p. 2014. REIS JUNIOR, F. B.; SILVA, L. G.; REIS, V. M.; DÖBEREINER, J. Ocorrência de Bactérias Diazotróficas em Diferentes Genótipos de Cana-de-açúcar. Pesq. Agropec. bras. Brasília, DF. v. 35, n.5. p. 985-994, 2000. 80 REIS JUNIOR, F. B.; SILVA, M. F.; TEIXEIRA, K. R. S.; URQUIAGA, S. & REIS, V. M. Identificação de isolados de Azospirillum amazonense associados à Brachiara spp. em diferentes épocas e condições de cultivo e produção de fitorhomônio pela bactéria. R. Bras. Ci. Solo, 28:103-113. 2004a. REIS JUNIOR, F. B.; SILVA, M. F.; TEIXEIRA, K. R. S.; URQUIAGA, S.; REIS, V. M. Intra-specific diversity study of the nitrogen fixing bacterium Azospirillum amazonense isolated from different Brachiaria species. Symbiosis, v.36, p.41-56, 2004. REIS, V. M.; BALDANI, J. I.; BALDANI, V. L. D.; DÖBEREINER, J. Biological dinitrogen fixation in gramineae and palm trees. CRC Critical Reviews in Plant Science, Boca Raton, v. 19, p. 227-247, 2000. REIS, V. M.; BALDANI, J. I.; URQUIAGA, S. Recomendação de uma mistura de estirpes de cinco bactérias fixadoras de nitrogênio para inoculação de cana-de-açúcar: Gluconacetobacter diazotrophicus (BR 11281), Herbaspirillum seropedicae (BR 11335), Herbaspirillum rubrisubalbicans (BR 11504), Azospirillum amazonense(BR 11145) e Burkholderia tropica (BR 11366). Embrapa Agrobiologia/Circular técnica 30. Seropédica, RJ. 4 p. 2009. REIS, V. M.; ESTRADA DE LOS SANTOS, P.; TENORIO-SALGADO, S.; VOLGEL, J.; STROFFELS, M.; GUYON, S.; MAVINGUI, P.; BALDANI, V. L. D.; SCHMID, M.; BALDANI, J. I.; BALANDREAU, L.; HARTMANN, A.; CABALLERO-MELLADO, J. Burkholdeira tropica sp. nov., a novel nitrogen-fixing, plant-associated bacterium. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, Reading, v. 54, p. 2155-2162, 2004. REIS, V. M.; OLIVARES, F. L.; DÖBEREINER, J. Improved methodology for isolation of Acetobacter diazotrophicus and confirmation of its endophytic habitat. World Journal of Microbiology and Biotechnology, v.10, p.401-405, 1994. REIS, V. M.; PITARD, R. M.; Dourado, F. S.; Camacho, N. N.; VIDEIRA, S. S.; Camargo, A. B.; BOA SORTE, P. F.; VIDAL, M. S.; SCHWAB, S.; BALDANI, J. I. Caracterização morfo-fisiológica e molecular das estirpes diazotróficas do inoculante de cana-de-açúcar. Seropédica: Embrapa Agrobiologia. (Embrapa Agrobiologia. Documentos, 280). ISSN: 1517-8498. p. 31. 2011. RIBEIRO, M. R.; NASCIMENTO, C. W. A.; FILHO, M. R. R.; CANTALICE, J. R. B. Tópicos em Ciência do Solo. ISSN: 1519-3934. Vol. VI. p. 204-270. 2009. RODENBUSCH, C. R. Análise de Vacinas Contra o Sorotipo 3 do Vírus da Doença de Marek por PCR em Tempo Real e Cultivo Celular. Dissertação (Mestrado) Ciências Veterinárias, na área de concentração de Microbiologia Veterinária. Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Faculdade de Veterinária. Porto Alegre-RS. 48 f.:il. 2006. RODRIGUES, L. S.; BALDANI, V. L. D.; REIS, V. M. & BALDANI, J. I. Diversidade de bactérias diazotróficas endofíticas do gênero Herbaspirillum e Burkholdeira na cultura de arroz inundado. Pesq. Agropec. Bras., 41:275-284, 2006. ROMANO, E.; BRASILEIRO, A. C. M. Extração de DNA de plantas: soluções para problemas comumente encontrados. Biotecnologia Ciência e Desenvolvimento, Brasília, v.2, n.9, p.40-43, 1999. 81 ROSSETTO, R.; DIAS, F. L. F. NUTRIÇÃO E ADUBAÇÃO DA CANA-DE-AÇÚCAR: indagações e reflexões. ENCARTE DO INFORMAÇÕES AGRONÔMICAS Nº 110 – JUNHO/2005. p 6-11. RUANO, G.; BRASH, D. E.; and KIDD, K. K. PCR: the first few cycles. Amplifications 7:1-4. 1991. SAMBROOK, J.; RUSSEL, D. W. Molecular cloning: a laboratory manual. 3 ed., Cold Spring Harbor Press, v.2, p.8004-8102, 2001. SAMPAIO, E. V. S. B.; SALCEDO, I. H.; VICTORIA, R. L. & TRIVELIN, P. C. O. Redistribution of the nitrogen reserves of 15N enriched stem cuttings and dinitrogen fexed by 90-day-old sugarcane plants. Plant Soil, 108:275-279, 1988. SANTOS, C. L. R. Efeito da inoculação de bactérias diazotróficas em sorgo granífero, forrageiro e sacarino. Dissertação (Mestrado). Curso de Pós-graduação em Ciência do Solo. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. 66 f.:il. 2010. SAUBIDET, M. I.; FATTA, N.; BARNEIX. The effect of inoculation with Azospirillum brasiliense on growth and nitrogen utilization by wheat plants. Plant and Soil, v.245, p.215-222, 2002. SCHMITTGEN, T. D.; LEE, E. J.; JIANG, J.; SARKAR, A.; YANG, L.; ELTON, T. S.; CHEN, C. “Real-time PCR quantification of precursor and matire microRNA.” Methods 44, 31-8, 2008. SCHULTZ, N.; MORAIS, R. F.; SILVA, J. A.; BAPTISTA, R. B.; OLIVEIRA, R. P.; LEITE, J. M.; PEREIRA, W.; JÚNIOR, J. B. C.; ALVES, B. J. R.; BALDANI, J. I.; BODDEY, R. M. URQUIAGA, S.; REIS, V. M. Avaliação agronômica de variedades de cana-de-açúcar inoculadas com bactérias diazotróficas e adubadas com nitrogênio. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.47(2):261-268, 2012. SIGMA® (Life Science). qPCR Technical guide. p. 42. 2008. Disponível em, <http://www.gene-quantification.de/SIAL-qPCR-Technical-Guide.pdf> Acessado em: 04/07/2017. SIKA, K. C.; KEFELA, T.; ADOUKONOU-SAGBADJA, H.; AHOTON, L.; LAMINE BABA-MOUSSA, A. S.; BAPTISTE, L. J.; KOTCONI, S. O.; GACHOMO. E. A simple and efficient genomic DNA extraction protocol for large scale genetic analyses of plant biological systems. Plant Gene 1:43–45. 2015. SILVA, D. B. S.; RODRIGUES, L. M. C.; AMARAL, B. C.; SILVA, L. E.; OLIVEIRA, K. M. P.; GRISOLIA, A. B. A Quantidade de Células de Leveduras do Gênero candida pode Influenciar a Integridade e Quantidade de DNA Extraído? ENEPEX - Encontro de Ensino, Pesquisa e Extensão (UEMS/UFGD). 5° Epex UEMS e 8° Enepe UFGD. p. 6. 2014. Disponível em:< http://eventos.ufgd.edu.br/enepex/anais/arquivos/256.pdf> Acesso em: 16/07/2017. SOARES, P. A.; ROSSELL, C. E. V. O Setor Sucroalcooleiro e o Domínio Tecnológico. NAIPPE, São Paulo, SP, p. 3 - 21, 01 jun. 2007. 82 SOMMER, R.; and TAUZ, D. Minimal homology requirements for PCR primers. Nucleic Acids Res. 17, 6749, 1989. SOUZA, R. S. C.; OKURA, V. K.; ARMANHI, J. S. L.; JORRÍN, B.; LOZANO, N.; SILVA, M. J.; GONZÁLEZ-GUERRERO, M.; ARAÚJO, L. M.; VERZA, N. C.; BAGHERI, H. C.; IMPERIAL, J & ARRUDA, P. Unlocking the bacterial and fungal communities assemblages of sugarcane microbiome. Scientific Reports |6:28774| DOI: 10.1038/srep28774. 1-15. 2016. SPEROTTO, R. A. Protocolos e métodos de análise em laboratórios de biotecnologia agroalimentar e de saúde humana. Editora da Univates. Lajeado-RS. 329 p. 2014. STETS, M. I. Monitoramento de Azospirillum brasilense e estudo da diversidade bacteriana associada a raízes de trigo (Triticum aestivum). Tese (Doutorado) Programa de Pós-Graduação em Ciências-Bioquímica. Setor de Ciências Biológicas. Universidade Federal do Paraná. Curitiba, PR. p. 109. 2013. STETS, M. I.; ALQUERES, S. M. C.; SOUZA, E. M.; DE OLIVEIRA, P. F.; SCHMID, M.; HARTMANN, A. & CRUZ, L. M. Quantification of Azospirillum brasilense FP2 bacteria in wheat roots by strain-specific quantitative PCR. Appl Environ Microbiol. 81:6700–6709. (2015). STEVENSON, F. J.; BREMNER, J. M.; HAUCK, R. D. & KEENEY, D. R., eds. Nitrogen in agricultural soils. Madison, American Society of Agronomy, 1982. p.651-688. STROPA, K. C. Enumeração Celular pela Quantificação Absoluta por PCR em Tempo Real de Culturas de Bradirrizóbios. Dissertação (Mestrado em Microbiologia Agropecuária) Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias – Unesp, Câmpus de Jaboticabal. Jaboticabal – São Paulo. F.il.: 108. 2009. TAUCONNIER, R.; BASSEREAU, D. La canã de azucar. Barcelona: Aditorial Blume, 1975. 433 p. Coleção Agricultura Tropical. In: DINARDO-MIRANDA, L. L.; VASCONCELOS, A. C. M.; LANDELL, G. A. Cana-de-açúcar. Eds. Campinas: Instituto Agronômico, 882 p. 2010. TORTORA, G. J.; FUNKE, B. R.; CASE, C. L. MICROBIOLOGIA. 12.ed. Porto Alegre: Artmed, 2017. UNTERGASSER, A.; CUTCUTACHE, I.; KORESSAAR, T.; YE, J.; FAIRCLOTH, B. C.; REMM, M.; ROZEN, S. G. Primer3—new capabilities and interfaces. Nucleic Acids Res 40:e115–e115. 2012. URQUIAGA, S.; ALVES, B. J. R.; BODDEY, R. M.; OLIVEIRA, O. C. de; RESENDE, A. S. de; WEBER, H. Efeito da queima, aplicação de N, irrigação e molibdênio na produção e acumulação de nitrogênio na cana de açúcar a longo prazo. Seropédica: Embrapa Agrobiologia, 1998. 13 p. (Embrapa Agrobiologia. Documentos, 72). URQUIAGA, S.; CRUZ, K. H. S. & BODDEY, R. M. Contribution of nitrogen fixation to sugarcane: Nitrogen-15 and nitrogen balance estimates. Soil Sci. Soc. Am. J., 56:105-114, 1992. 83 URQUIAGA, S.; XAVIER, G. R.; MORAIS, R. F.; BATISTA, R. B.; SCHULTZ, N.; LEITE, J. M.; SÁ, J. M.; BARBOSA, K. P.; RESENDE, A. S.; ALVES, B. J. R.; BODDEY, R. M. Evidence from field nitrogen balance and 15N natural abundance data for the contribution of biological N2 fixation to Brazilian sugarcane varieties. Plant and Soil, v. 356, n. 1-2, p. 5–21, 2012. VANGUILDER, H. D.; VRANA, K. E.; FREEMAN, W. M. Twenty-five years of quantitative PCR for gene expression analysis. Biotechniques 2008, 44(5):619–626. VAZE, A.; NERKAR, G.; PAGARIYA, M.; DEVARUMATH, R. M. And PRASAD, D. T. Isolation and PCR amplification of genomic DNA from dry leaf samples of sugarcane. Int. J. Pharma Bio Sci. 1(2):1-6. 2010. VERSALOVIC, J.; SCHNEIDER, M.; DE BRUIJN, F. J.; LUPSKI, J. R. Genomic fingerprinting of bacteria using repetitive sequence-based polymerase chain reaction. Methods in Molecular and Cellular Biology, v.5, p.25-40, 1994. VOET, D.; VOET, J. G. CHARLOTTE, W. P. Fundamentos de Bioquímica. Porto Alegre: Artes Médicas Sul, 2000. WALLACE, R.B.; SHAFFER, J.; MURPHY, R. F.; et al. Hybridization of synthetic oligodeoxyribonucleotides to phi chi 174 DNA: the effect of single base pair mismatch. Nucleic Acids Res; 6: 3543-3557. 1979. WANG, H.; QI, M.; CUTLER, A. J. A simple method of preparing plant samples for PCR. Nucleic Acids Research, Oxford, v. 21, n.17, p. 4153-4154, 1993. WANG, T. Y.; WANG, L.; ZHANG, J. H.; DONG, W. H. A simplified universal genomic DNA extraction protocol suitable for PCR. Genet. Mol. Res. 10, 519–525. 2011. WATSON, J. D.; CRICK, F. H. C. Molecular structure of nucleic acids: a structure for Deoxyribose Nucleic Acid. Nature, vol 171, pp 737 - 738, 1953. WHILEY, D. M.; SLOOTS, T. P. Sequence variation in primer targets affects the accuracy of viral quantitative PCR. J Clin Virol. 34(2):104–107. 2005. YAMADA, Y.; HOSHINO, K. And ISHIKAWA, T. The Phylogeny of acetic acid bacteria based on the partial sequence 16S ribosomal RNA. The elevation of the subgenus Gluconacetobacter to the generic level. Biosc. Biotechnol. Biochem. 61. 1244-1251. 1997. YE, J.; COULOURIS, G.; ZARETSKAYA, I.; CUTCUTACHE, I.; ROZEN, S.; & MADDEN, T. Primer-BLAST: A tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction. BMC Bioinformatics, 13, 134-145. 2012. YEOH, Y. K.; PAUNGFOO-LONHIENNE, C.; DENNIS, P. G.; ROBINSON, N.; RAGAN, M. A.; SCHMIDT, S. AND HUGENHOLTZ, P. The core root microbiome of sugarcanes cultivated under varying nitrogen fertilizer application. Environmental Microbiology. doi:10.1111/1462-2920.12925 18(5), 1338–1351. p. 2016.por
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