Please use this identifier to cite or link to this item: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/18939
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.authorAmaral, Mayan Blanc-
dc.date.accessioned2024-10-31T16:22:32Z-
dc.date.available2024-10-31T16:22:32Z-
dc.date.issued2023-10-06-
dc.identifier.citationAMARAL, Mayan Blanc. Fixação biológica de nitrogênio em leguminosas forrageiras tropicais. 2023. 101 f. Tese (Doutorado em Agronomia - Ciência do Solo) - Instituto de Agronomia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2023.pt_BR
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/18939-
dc.description.abstractO Brasil se destaca na pecuária mundial na produção de gado de corte e leite, em sua maioria em sistema extensivo. As leguminosas forrageiras quando consorciadas com gramíneas podem aumentar o aporte de nitrogênio e a produtividade da pastagem, sem a necessidade de adubação nitrogenada sintética. Em estudos anteriores, algumas espécies de leguminosas permitiram a formação de consórcios eficientes com Urochloa brizantha cv Marandu, como Grona heterocarpa subsp ovalifolia cv Itabela (Syn. Desmodium ovalifolium), Arachis pintoi cv. Belmonte e Mandobi, e Macrotyloma axillare cv. Java, as duas primeiras espécies, estoloníferas e mais persistentes no consórcio, e a última de crescimento volúvel. No entanto, ainda existe uma baixa difusão da tecnologia pelos pecuaristas, muito em função da baixa disponibilidade de sementes comerciais. Em relação aos benefícios do consórcio, não se sabe ao certo qual o grau de dependência das leguminosas em pastagens pela fixação biológica de nitrogênio (FBN), e a mensuração do processo em diferentes locais com diferentes níveis tecnológicos serve de referência acerca do aprimoramento da tecnologia de inoculação, sendo um dos objetivos desta tese. Pastagens consorciadas com estas leguminosas foram avaliadas no Bioma Mata Atlântica através da técnica da abundância natural de 15N. Adicionalmente, outros objetivos da tese foram avaliar a contribuição de bactérias simbióticas e microrganismos associativos na promoção de crescimento dessas espécies de leguminosas forrageiras e no incremento da fixação biológica de nitrogênio. Visando melhorar a recomendação de inoculantes para pastagens, foram realizados testes de eficiência das estirpes rizobianas depositadas na Coleção de Culturas da Embrapa Agrobiologia (CRB). Resultados da quantificação da FBN em campo demonstraram que as pastagens apresentam grau de fixação biológica nitrogênio diferentes e que variaram ao longo do ano. Apesar das leguminosas forrageiras serem consideradas promíscuas, apresentam diferentes graus de associação simbiótica com bactérias do gênero Bradyrhizobium sp. A leguminosa M. axillare se destaca como responsiva a inoculação e há incrementos também com a coinoculação de microrganismos promotores de crescimento vegetal principalmente associados com efeitos na biomassa das raízes.pt_BR
dc.description.sponsorshipConselho Nacional de Pesquisa e Desenvolvimento Científico e Tecnológico - CNPqpt_BR
dc.description.sponsorshipCoordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPESpt_BR
dc.languageporpt_BR
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropt_BR
dc.subjectAmendoim-forrageiropt_BR
dc.subjectDesmódiopt_BR
dc.subjectGuandupt_BR
dc.subjectMacrotilomapt_BR
dc.subjectBactérias simbióticaspt_BR
dc.subjectCoinoculaçãopt_BR
dc.subjectBiological Nitrogen Fixationpt_BR
dc.subjectAsian ticktrefoilpt_BR
dc.subjectPerennial horsegrampt_BR
dc.subjectForage peanutpt_BR
dc.titleFixação biológica de nitrogênio em leguminosas forrageiras tropicaispt_BR
dc.title.alternativeBiological nitrogen fixation in tropical forage legumesen
dc.typeTesept_BR
dc.description.abstractOtherBrazil stands out in global livestock production, particularly in beef and dairy cattle, predominantly in extensive systems. Forage legumes, when intercropped with grasses, can increase nitrogen input and pasture productivity without the need for synthetic nitrogen fertilization. In previous studies, some legume species allowed the formation of efficient intercropping systems with Urochloa brizantha cv. Marandu, such as Grona heterocarpa subsp ovalifolia cv Itabela (Syn. Desmodium ovalifolium), Arachis pintoi cvs. Belmonte and Mandobi, and Macrotyloma axillare cv. Java, with the first two species being stoloniferous and more persistent in the intercropping system, and the last one having a twining growth habit. However, there is still low diffusion of this technology among livestock farmers, mainly due to the low availability of commercial seeds. Regarding the benefits of intercropping, it is not yet known to what extent legumes in pastures depend on biological nitrogen fixation (BNF), and measuring this process in different locations with different technological levels provides reference points for improving inoculation technology, which is one of the objectives of this thesis. Pastures intercropped with these legumes were evaluated in the Atlantic Forest biome using the natural abundance technique of 15N. Additionally, other objectives of the thesis included evaluating the contribution of symbiotic bacteria and associative microorganisms in promoting the growth of these forage legume species and increasing biological nitrogen fixation. To improve the recommendation of inoculants for pastures, efficiency tests were conducted on rhizobial strains deposited in the Embrapa Agrobiology Culture Collection (CRB). Field quantification results of BNF demonstrated that pastures exhibit different levels of biological nitrogen fixation, which varied throughout the year. Although forage legumes are considered promiscuous, they exhibit different degrees of symbiotic association with bacteria of the genus Bradyrhizobium sp. The legume M. axillare stands out as responsive to inoculation, and there are also increases with the co-inoculation of plant growth-promoting microorganisms, mainly associated with effects on root biomass.en
dc.contributor.advisor1Alves, Bruno José Rodrigues-
dc.contributor.advisor1IDhttps://orcid.org/0000-0002-5356-4032pt_BR
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/5238072607952859pt_BR
dc.contributor.referee1Alves, Bruno José Rodrigues-
dc.contributor.referee1IDhttps://orcid.org/0000-0002-5356-4032pt_BR
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/5238072607952859pt_BR
dc.contributor.referee2Coelho, Irene da Silva-
dc.contributor.referee2IDhttps://orcid.org/0000-0003-1357-2529pt_BR
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/2191695584157582pt_BR
dc.contributor.referee3Zilli, Jerri Édson-
dc.contributor.referee3IDhttps://orcid.org/0000-0003-2138-3488pt_BR
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/4935993716536909pt_BR
dc.contributor.referee4Ferreira, Enderson Petrônio de Brito-
dc.contributor.referee4IDhttps://orcid.org/0000-0002-1964-1516pt_BR
dc.contributor.referee4Latteshttp://lattes.cnpq.br/6292879655540619pt_BR
dc.contributor.referee5Rouws, Luc Felicianus Marie-
dc.contributor.referee5IDhttps://orcid.org/0000-0002-4634-5501pt_BR
dc.contributor.referee5Latteshttp://lattes.cnpq.br/4500797890789377pt_BR
dc.creator.IDhttps://orcid.org/0000-0001-5514-4966pt_BR
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/6531819136162059pt_BR
dc.publisher.countryBrasilpt_BR
dc.publisher.departmentInstituto de Agronomiapt_BR
dc.publisher.initialsUFRRJpt_BR
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Agronomia - Ciência do Solopt_BR
dc.relation.referencesALMEIDA, J. P. F.; HARTWIG, U. A.; FREHNER, M.; NÖSBERGER, J.; LÜSCHER, A. Evidence that P deficiency induces N feedback regulation of symbiotic N2 fixation in white clover (Trifolium repens L.). Journal of Experimental Botany, v. 51, n. 348, p. 1289–1297, 2000. Disponível em: https://doi.org/10.1093/jexbot/51.348.1289. ALVES, B. J. R.; RESENDE, A. S.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Biological nitrogen fixation by two tropical forage legumes assessed from the relative ureide abundance of stem solutes: 15N calibration of the technique in sand culture. Nutrient Cycling in Agroecosystems, v. 56, p. 165–176, 2000. Disponível em: https://doi.org/10.1023/A:1009865816182 ALVES, B.J.R.; MADARI, B.E.; BODDEY, R.M. Integrated crop–livestock–forestry systems: Prospects for a sustainable agricultural intensification. Nutrient Cycling in Agroecosystems, v.108, p. 1-4, 2017. AMADO, T.J.C.; MIELNICZUK, J.; AITA, C. Recomendação de adubação nitrogenada para o milho no RS e SC adaptada ao uso de culturas de cobertura do solo, sob sistema plantio direto. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v. 26, n. 01, p. 241-248, 2002. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0100-06832002000100025 ANDRADE, C. M. S. Produção de ruminantes em pastos consorciados. In: SIMPÓSIO INTERNACIONAL SOBRE PRODUÇÃO ANIMAL EM PASTEJO, Viçosa, MG. Anais [...]. Viçosa, MG: UFV, 2010. p. 171–214. ANDRADE, C. M. S.; ASSIS, G. M. L.; FAZOLIN, M.; GONÇALVES, R. C.; SALES, M. F. L.; VALENTIM, J. F.; ESTRELA, J. L. V. Grama-estrela-roxa : gramínea forrageira para diversificação de pastagens no Acre. Rio Branco, AC: Embrapa Acre, 2009. E-book. Disponível em: https://www.bdpa.cnptia.embrapa.br/consulta/busca?b=ad&id=663655&biblioteca=vazio&bu sca=663655&qFacets=663655&sort=&paginacao=t&paginaAtual=1. Acesso em: 11 jan. 2024. ANDRADE, C. G. Produção de ruminantes em pastos consorciados. Simpósio sobre manejo Estratégico da Pastagem, Viçosa, MG, Brasil, 11-13. 2010. Disponível em: https://loja.fealq.org.br/produtos/producao-de-bovinos-a-pasto-anais-do-13-simposio-sobremanejo- da-pastagem/ ANDRADE, C. M. S.; FERREIRA, A. S.; CASAGRANDE, G. R. Uso de leguminosas em pastagens: potencial para consórcio compatível com gramíneas tropicais e necessidades de manejo de pastejo. In: SIMPÓSIO SOBRE MANEJO DE PASTAGEM2015, Piracicaba, SP. Anais... Piracicaba, SP: FEALQ, 2015. p. 113-152. Disponível em: https://www.bdpa.cnptia.embrapa.br/consulta/busca?b=ad&id=1025571&biblioteca=vazio&b usca=1025571&qFacets=1025571&sort=&paginacao=t&paginaAtual=1. Acesso em: 11 jan. 2024. ANNAPURNA, K.; RAMADOSS, G.; BOSE, P.; VITHALKUMAR, L. In situ localization of Paenibacillus polymyxa HKA-15 in roots and root nodules of soybean (Glycine max.L.). Plant and Soil, v. 373, n. 1–2, p. 641–648, 2013. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11104-013- 1825-7. APPUNU, C.; GANESAN, G.; KALITA, M.; KAUSHIK, R.; SARANYA, B.; PRABAVATHY, V. R.; SUDHA, N. Phylogenetic Diversity of Rhizobia Associated with 72 Horsegram [Macrotyloma uniflorum (Lam.) Verdc.] Grown in South India Based on glnII, recA and 16S-23S Intergenic Sequence Analyses. Current Microbiology, v. 62, n. 4, p. 1230–1238, 2011. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00284-010-9823-y ARAÚJO, A. P.; MACHADO, C. T. T. Fósforo. In: FERNANDES, M. S.; SOUZA, S. R.; SANTOS, L. A. (org.). Nutrição mineral de plantas. 2. eG. Viçosa: SBCS, 2018. p. 254– 2006. E-book. Disponível em: https://www.ofitexto.com.br/nutricao-mineral-de-plantas-2ed/p. Acesso em: 5 jan. 2024. ARAÚJO, A. P.; PLASSARD, C.; DREVON, J. J. Phosphatase and phytase activities in nodules of common bean genotypes at different levels of phosphorus supply. Plant and Soil, v. 312, n. 1–2, p. 129–138, 2008. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11104-008-9595-3 ARNOLD, S. L.; SCHEPERS, J. S. A Simple Roller-Mill Grinding Procedure for Plant and Soil Samples. Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 35, n. 3–4, p. 537– 545, 2004. Disponível em: https://doi.org/10.1081/CSS-120029730 ASERSE, A. A.; RÄSÄNEN, L. A.; ASEFFA, F.; HAILEMARIAM, A.; LINDSTRÖM, K. Diversity of sporadic symbionts and nonsymbiotic endophytic bacteria isolated from nodules of woody, shrub, and food legumes in Ethiopia. Applied Microbiology and Biotechnology, v. 97, n. 23, p. 10117–10134, 2013. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00253-013-5248-4 AYARZA, M.; VILELA, L.; ALVES, B. J. R.; OLIVEIRA, O. C.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Introdução de Stylosanthes guianensis Cv. mineirão em pastagem de Brachiaria ruziziensis: Influência na produção animal e vegetal. Boletim Técnico, 1. Seropédica, RJ: Embrapa-CNPAB, 1997. Disponível em: http://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/handle/doc/623593. Acesso em: 11 jan. 2024. BALDANI, J. I.; BALDANI, V. L. G. History on the biological nitrogen fixation research in graminaceous plants: special emphasis on the Brazilian experience. Anais da Academia Brasileira de Ciências, v. 77, n. 3, p. 549–579, 2005. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0001-37652005000300014 BALL, P. R.; RYDEN, J. C. Nitrogen relationships in intensively managed temperate grasslands. Plant and Soil, v. 76, n. 1, p. 23–33, 1984. Disponível em: https://doi.org/10.1007/BF02205564 BARCELLOS, A.O.; RAMOS, A.K.B.; VILELA, L.; JUNIOR, G.B.M. Sustentabilidade da produção animal baseada em pastagens consorciadas e no emprego de leguminosas exclusivas, na forma de banco de proteína, nos trópicos brasileiros. Revista Brasileira de Zootecnia, v. 37, p. 51-67, 2008. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S1516-35982008001300008 BARNES, P. Introduced forage species herbage dry matter production and chemical composition at two moist savannah sites in Ghana. Annales de Zootechnie, v. 44, n. Suppl. 1, p. 31–31, 1995. Disponível em: https://doi.org/10.1051/animres:19950501 BASHAN, Y.; DE-BASHAN, L. E. How the Plant Growth-Promoting Bacterium Azospirillum Promotes Plant Growth—A Critical Assessment. Advances in Agronomy, v. 108, p. 77–136, 2010. Disponível em: https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)08002-8 BENCHAAR, C.; POMAR, C.; CHIQUETTE, J. Evaluation of dietary strategies to reduce methane production in ruminants: a modeling approach. Canadian Journal of Animal Science, v.81, n.4, p.563-574, 2001. 73 BHATTACHARYYA, P. N.; JHA, G. K. Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): emergence in agriculture. World Journal of Microbiology and Biotechnology, v. 28, n. 4, p. 1327–1350, 2012. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11274-011-0979-9 BLUMENTHAL, M. J.; STAPLES, I. B. Origin, evaluation and use of Macrotyloma as forage. Tropical Grasslands, v. 27, p. 16–29, 1993. BODDEY, R. M.; CASAGRANDE, G. R.; HOMEM, B. G. C.; ALVES, B. J. R. Forage legumes in grass pastures in tropical Brazil and likely impacts on greenhouse gas emissions: A review. Grass and Forage Science, v. 75, n. 4, p. 357–371, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1111/gfs.12498 BODDEY, R. M.; MACEDO, R.; TARRÉ, R. M.; FERREIRA, E.; OLIVEIRA, O. C.; REZENDE, C. P.; CANTARUTTI, R. B.; PEREIRA, J. M.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S. Nitrogen cycling in Brachiaria pastures: The key to understanding the process of pasture decline. Agriculture, Ecossystems and Enviroment, v. 103, p. 389–403, 2004. Disponível em: doi:10.1016/j.agee.2003.12.010 BODDEY, R. M.; RESENDE, C. P.; SCHUNKE, R. M.; ALVES, B. J. R.; CADISH, G.; PEREIRA, J. M. Sustentabilidade de pastagens consorciadas e de gramínea em monocultura: O papel chave das transformações de nitrogênio. In: 1993, Rio de Janeiro. Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Zootecnia, 30. Rio de Janeiro: Sociedade Brasileira de Zootecnia, 1993. p. 141–173. BOIVIN, S.; LEPETIT, M. Partner preference in the legume-rhizobia symbiosis and impact on legume inoculation strategies. Advances in Botanical Research, v. 94, p. 323–348, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1016/bs.abr.2019.09.016 BONILLA, I.; BOLAÑOS, L. Mineral nutrition for legume-rhizobia symbiosis: B, Ca, N, P, S, K, Fe, Mo, Co, and Ni: A review. In: LICHTFOUSE, E. (Ed.). Organic farming, pest control and remediation of soil pollutants. Netherlands: Springer, 2009. p. 253-274. DOI: 10.1007/978-1-4020-9654-9. BORRÉ, J. G. Ciclagem de N em pastagens tropicais consorciadas com leguminosa forrageira ou fertilizada com N. Dissertação (Mestrado em Agronomia, Ciência do Solo), Instituto de Agronomia, Universidade Federal do Rio de Janeiro. Seropédica, 80 f., 2023. BOURION, V. Co-inoculation of a Pea Core-Collection with Diverse Rhizobial Strains Shows Competitiveness for Nodulation and Efficiency of Nitrogen Fixation Are Distinct traits in the Interaction. Frontiers in Plant Science, v. 8, p. 2249, 2018. Disponível em: https://doi.org/10.3389/fpls.2017.02249 BÜNGER, W.; GRÖNEMEYER, J. L.; SARKAR, A.; REINHOLD-HUREK, B. Bradyrhizobium ripae sp. nov., a nitrogen-fixing symbiont isolated from nodules of wild legumes in Namibia. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 68, n. 12, p. 3688–3695, 2018. Disponível em: https://doi.org/10.1099/ijsem.0.002955 BURDMAN, S.; KIGEL, J.; OKON, Y. Effects of Azospirillum brasilense on nodulation and growth of common bean (Phaseolus vulgaris L.). Soil Biology and Biochemistry, v. 29, n. 5– 6, p. 923–929, 1997. Disponível em: https://doi.org/10.1016/S0038-0717(96)00222-2 CANFORA, L.; COSTA, C.; PALLOTTINO, F.; MOCALI, S. Trends in soil microbial inoculants research: a science mapping approach to unravel strengths and weaknesses of their 74 application. Agriculture, v. 11(2), p.158, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.3390/agriculture11020158 CANTARUTTI, R. B.; TARRÉ, R.; MACEDO, R.; CADISCH, G.; DE REZENDE, C. P.; PEREIRA, J. M.; ... & BODDEY, R. M. The effect of grazing intensity and the presence of a forage legume on nitrogen dynamics in Brachiaria pastures in the Atlantic forest region of the south of Bahia, Brazil. Nutrient Cycling in Agroecosystems, v.64, p.257-271,2002. Disponível em : https://doi.org/10.1023/A:1021415915804 CARDOSO, A.G.S.; BARBERO, R.P.; ROMANZINI, E.P.; TEOBALDO, R.W.; ONGARATTO, F.; FERNANDES, M.H.M.G.R.; RUGGIERI, A.C.; REIS, R.A. Intensification: A Key Strategy to Achieve Great Animal and Environmental Beef Cattle Production Sustainability in Brachiaria Grasslands. Sustainability, v. 12, p. 6656, 2020. https://doi.org/10.3390/su12166656 CARVALHO, R.H.; JESUS, E.C.; FAVERO, V.O.; STRALIOTTO, R.; ARAÚJO, A.P. The co-inoculation of Rhizobium and Bradyrhizobium increases the early nodulation and development of common beans. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, v. 20, n. 3, 860- 864, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s42729-020-00171-8 CEREZINI, P.; KUWANO, B.H.; DOS SANTOS, M.B.; TERASSI, F.; HUNGRIA, M.; NOGUEIRA, M.A. Strategies to promote early nodulation in soybean under drought. Field Crops Research, v. 196, p. 160-167, 2016. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.fcr.2016.06.017. CHIBEBA, A. M.; KYEI-BOAHEN, S.; GUIMARÃES, M. F.; NOGUEIRA, M. A.; HUNGRIA, M. Isolation, characterization and selection of indigenous Bradyrhizobium strains with outstanding symbiotic performance to increase soybean yields in Mozambique. Agriculture, Ecosystems & Environment, v. 246, p. 291–305, 2017. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.agee.2017.06.017 COOK, B. G.; PENGELLY, B. C.; BROWN, S. G.; DONNELLY, J. L.; EAGLES, G. A.; FRANCO, M. A.; HANSON, J.; MULLEN, B. F.; PARTRIDGE, I. J.; PETERS, M.; SCHULTZE-KRAFT, R. Tropical Forages: an interactive selection tool. CSIRO, DPI&F, CIAT, ILRI, 2005. Disponível em: https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20177200298. Acesso em: 5 jan. 2024. CORSI, M.; NUSSIO, L. G. Manejo do capim elefante: correção e adubação do solo. In: SIMPÓSIO SOBRE MANEJO DA PASTAGEM1993, Piracicaba. Anais [...]. Piracicaba: FEALQ, 1993. p. 87–117. COSTA, E. M.; GUIMARÃES, A. A.; VICENTIN, R. P.; RIBEIRO, P. R. A.; LEÃO, A. C. R.; BALSANELLI, E.; LEBBE, L.; AERTS, M.; WILLEMS, A.; MOREIRA, F. M. S. Bradyrhizobium brasilense sp. nov., a symbiotic nitrogen-fixing bacterium isolated from Brazilian tropical soils. Archives of Microbiology, v. 199, n. 8, p. 1211–1221, 2017. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00203-017-1390-1 COSTA, N. L.; TOWNSEND, C. R.; MAGALHAES, J. A.; PEREIRA, R. G. A. Formação e manejo de pastagens de Desmódio em Rondônia: Recomendações Técnicas, 24. Porto Velho: Embrapa Rondônia, 2001. Disponível em: https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/- /publicacao/984103/formacao-e-manejo-de-pastagens-de-desmodio-em-rondonia. Acesso em: 30 dez. 2023. 75 DEDECEK, R. A.; GALDINO, S.; VIEIRA, L. M. Perdas de solo e água em pastagens cultivadas em solo arenoso da Bacia do Alto Taquari, MS. Corumbá: Embrapa Pantanal [Colombo]: Embrapa Florestas, 2006. Disponível em: https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/CPAP/56613/1/FOL62.pdf. Acesso em: 30 dez. 2023. DE LA FUENTE, L.; QUAGLIOTTO, L.; BAJSA, N.; FABIANO, E.; ALTIER, N.; ARIAS, A. Inoculation with Pseudomonas fluorescens biocontrol strains does not affect the symbiosis between rhizobia and forage legumes. Soil Biology and Biochemistry, v. 34, n. 4, p. 545–548, 2002. Disponível em: https://doi.org/10.1016/S0038-0717(01)00194-8 DE MEYER, S. E.; CNOCKAERT, M.; ARDLEY, J. K.; VAN WYK, B.-E.; VANDAMME, P. A.; HOWIESON, J. G. Burkholderia dilworthii sp. nov., isolated from Lebeckia ambigua root nodules. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 64, n. Pt_4, p. 1090–1095, 2014. Disponível em: https://doi.org/10.1099/ijs.0.058602-0 DELAMUTA, J. R. M.; RIBEIRO, R. A.; GOMES, G. F.; SOUZA, R. C.; CHUEIRE, L. M. O.; HUNGRIA, M. Genome Sequence of Bradyrhizobium pachyrhizi Strain PAC48T, a Nitrogen-Fixing Symbiont of Pachyrhizus erosus (L.) Urb. Genome Announcements, v. 3, n. 5, p. e01074-15, 2015. Disponível em: https://doi.org/10.1128/genomeA.01074-15 DENG, Z. S.; ZHAO, L. F.; KONG, Z. Y.; YANG, W. Q.; LINDSTRÖM, K.; WANG, E. T.; WEI, G. H. Diversity of endophytic bacteria within nodules of the Sphaerophysa salsula in different regions of Loess Plateau in China: Sphaerophysa salsula endophytic bacteria. FEMS Microbiology Ecology, v. 76, n. 3, p. 463–475, 2011. Disponível em: https://doi.org/10.1111/j.1574-6941.2011.01063. DORAN, J. W.; PARKIN, T. B. Defining soil quality for a sustainable environment, v.35, p.1-21, 1994. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssaspecpub35 EAGLESHAM, A. R. J.; SZALAY, A. A. Aerial stem nodules on Aeschynomene spp. Plant Science Letters, v. 29, n. 2–3, p. 265–272, 1983. Disponível em: https://doi.org/10.1016/0304- 4211(83)90151-7 EL-TARABILY, K.A.; SIVASITHAMPARAM, K. Potential of yeasts as biocontrol agents of soil-borne fungal plant pathogens and as plant growth promoters. Mycoscience, v.47, n.1, p.25- 35, 2006. Disponível em: https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01766 EL-TARABILY, K.A. Suppression of Rhizoctonia solani diseases of sugar beet by antagonistic and plant growth-promoting yeasts. Journal of Applied Microbiology, v.96, n.1, p.69-75, 2004. Disponível em: https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2003.02043.x. FAVERO, V. O.; CARVALHO, R. H.; LEITE, A. B. C.; FREITAS, K. M.; ZILLI, J. É.; XAVIER, G. R.; RUMJANEK, N. G.; URQUIAGA, S. Characterization and nodulation capacity of native bacteria isolated from mung bean nodules used as a trap plant in Brazilian tropical soils. Applied Soil Ecology, v. 167, p. 104041, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2021.104041 FELSENSTEIN, J. Confidence Limits on Phylogenies: An Approach Using the Bootstrap. Evolution, v. 39, n. 4, p. 783, 1985. Disponível em: https://doi.org/10.2307/2408678 76 FERREIRA, G. F. Análises estatísticas por meio do Sisvar para Windows versão 5.0. In: 45a REUNIÃO ANUAL DA REGIÃO BRASILEIRA DA SOCIEDADE INTERNACIONAL DE BIOMETRIA2003, São Carlos. Anais [...]. São Carlos: UFSCar, 2003. p. 255–258. FERREIRA, E.; REZENDE, C. P.; GALINDO, L. L. G.; RESENDE, A. S.; TARRÉ, R. M.; MACEDO, R. O.; OLIVEIRA, O. C.; ALVES, B. J.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Recuperação do nitrogênio da urina bovina pela pastagem de Brachiaria humidicola (Rendle) Schweickt cultivada no sul da Bahia. In: XVI REUNIÓN LATINOAMERICANA DE PRODUCCION ANIMAL Y CONGRESO URUGUAYO DE PRODUCCION ANIMAL2000, Anais... Montevideo, 2000. FERREIRA, F. F.; NEUMANN, P. S.; HOFFMANN, R. Análise da matriz energética e econômica das culturas de arroz, soja e trigo em sistemas de produção tecnificados no Rio Grande do Sul. Ciência Rural, v. 44, n. 2, p. 380–385, 2013. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0103-84782013005000157 FISHER, M. J.; CRUZ, P. Some ecophysiological aspects of Arachis pintoi. In: KERRIDGE, P. C.; HARDY, B. (eG.). Biology and Agronomy of forage Arachis. Cali: CIAT, 1994. p. 53– 70. FRANCISQUINI JUNIOR, A.; CALONEGO, J. C.; ROSOLEM, C. A.; SANTOS, C. H.; TIRITAN, C. S. Increase of nitrogen-use efficiency by phosphorus fertilization in grass–legume pastures. Nutrient Cycling in Agroecosystems, v. 118, n. 2, p. 165–175, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s10705-020-10091-9 FRANCO, A.A.; DÖBEREINER, J. Host specificity in Rhizobium-Bean symbiosis and influence of different nutrients. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.2, p.467-474, 1967. FREITAS, G.G.S.; BARBOSA, G.F.; ZUFFO, A.M.; STEINER, F. Co-inoculation of peanut (Arachis hypogaea L.) with Bradyrhizobium and Azospirillum promotes greater tolerance to drought. Research, Society and Development, v.9, n.7, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.33448/rsd-v9i7.3690 FURUSHITA, M.; SHIBA, T.; MAEDA, T.; YAHATA, M.; KANEOKA, A.; TAKAHASHI, Y.; TORII, K.; HASEGAWA, T.; OHTA, M. Similarity of Tetracycline Resistance Genes Isolated from Fish Farm Bacteria to Those from Clinical Isolates. Applied and Environmental Microbiology, v. 69, n. 9, p. 5336–5342, 2003. Disponível em: https://doi.org/10.1128/AEM.69.9.5336-5342.2003 GALINDO, F.S.; DA SILVA, E.C.; PAGLIARI, P.H.; FERNANDES, G.C.; RODRIGUES, W.L.; BIAGINI, A.L.C.; BARATELLA, E.B.; SILVA, C.A.; NETO, M.J.M.; SILVA, V.M.; MURAOKA, T.; TEIXEIRA FILHO, M.C.M. Nitrogen recovery from fertilizer and use efficiency response to Bradyrhizobium sp. and Azospirillum brasilense combined with N rates in cowpea-wheat crop sequence. Applied Soil Ecology, v.157, p.103764, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2020.103764 GAUNT, M. W.; TURNER, S. L.; RIGOTTIER-GOIS, L.; LLOYD-MACGILP, S. A.; YOUNG, J. P. Phylogenies of atpD and recA support the small subunit rRNA-based classification of rhizobia. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 51, n. 6, p. 2037–2048, 2001. Disponível em: https://doi.org/10.1099/00207713-51-6-2037 77 GERICÓ, T.G.; TAVANTI, R.F.R.; de OLIVEIRA, S.C.; LOURENZANI, A.E.B.S.; de LIMA, J.P.; RIBEIRO, R.P.; dos SANTOS, L.C.C.; DOS REIS, A.R. Bradyrhizobium sp. enhance ureide metabolism increasing peanuts yiel G. Archives of Microbiology, v. 202, n. 3, p.645- 656, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00203-019-01778-x GIMENES, F. M. A. G.; HENRIQUE, Z. B.; LUCIANA, G.; GIACOMINI, A. A.; BATISTA, K.; WALDSSIMILER, T. M.; LINDA, M. P.; ALBERTO, N. V. M. The utilization of tropical legumes to provide nitrogen to pastures: A review. African Journal of Agricultural Research, v. 12, n. 2, p. 85–92, 2017. Disponível em: https://doi.org/10.5897/AJAR2016.11893 GIRAUD, E. Legumes symbioses: absence of Nod genes in photosynthetic bradyrhizobia. Science, v. 316, n. 5829, p. 1307–1312, 2007. Disponível em: https://doi.org/10.1126/science.1139548 GIRAUD, E.; FLEISCHMAN, G. Nitrogen-fixing symbiosis between photosynthetic bacteria and legumes. Photosynthesis Research, v. 82, n. 2, p. 115–130, 2004. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11120-004-1768-1 GOMES, J.A.N. Sustentabilidade de sistema de pastagem de coastcross com uso de leguminosas e/ou de nitrogênio explorado com bovinos. Dissertação (Mestrado em Zootecnia)-Universidade Estadual de Maringá. Maringá, 95 f. 2008. GOV. SP. IZ-APTA apresenta amostras de leguminosas forrageiras e capim na Agrishow. [s. l.], 2008. Disponível em: http://www.apta.sp.gov.br/noticias/iz-apta-apresenta-amostras-deleguminosas- forrageiras-e-capim-na-agrishow. Acesso em: 5 jan. 2024. GLICK, B. R.; GAMALERO, E. Recent developments in the study of plant microbiomes. Microorganisms, v.9, n.7, p.1533, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.3390/microorganisms9071533 GUIMARÃES, A. P., MORAIS, R. F. G., URQUIAGA, S., BODDEY, R. M.; ALVES, B. J. R. Bradyrhizobium strain and the 15N natural abundance quantification of biological N2 fixation in soybean. Scientia Agricola, v. 65, p. 516-524, 2008. HASSEN, A. I.; BOPAPE, F. L.; TRYTSMAN, M. Nodulation Study and Characterization of Rhizobial Microsymbionts of Forage and Pasture Legumes in South Africa. World Journal of Agricultural Research, v. 2, n. 3, p. 93–100, 2014. Disponível em: https://doi.org/10.12691/wjar-2-3-2 HERRIDGE, G. F.; ROUGHLEY, R. J. Influence of temperature and Rhizobium strain on nodulation and growth of two tropical legumes. Tropical Grasslands, v. 10, n. 1, p. 21–23, 1976. HOMEM, B. G. C.; LIMA, I. B. G.; SPASIANI, P. P.; BORGES, L. P. C.; BODDEY, R. M.; DUBEUX, J. C. B.; BERNARDES, T. F.; CASAGRANDE, G. R. Palisadegrass pastures with or without nitrogen or mixed with forage peanut grazed to a similar target canopy height. 2. Effects on animal performance, forage intake and digestion, and nitrogen metabolism. Grass and Forage Science, v. 76, n. 3, p. 413–426, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.1111/gfs.12533 HUNGRIA, M. Inoculação com Azospirillum brasilense: inovação em rendimento a baixo custo. Londrina: Embrapa Soja, 2011. Embrapa Soja. Documentos, 325.Disponível em: 78 https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/-/publicacao/879471/inoculacao-comazospirillum- brasilense-inovacao-em-rendimento-a-baixo-custo. Acesso em: 30 dez. 2023. HUNGRIA, M.; MENNA, P.; DELAMUTA, J. R. M. Bradyrhizobium, the Ancestor of All Rhizobia: Phylogeny of Housekeeping and Nitrogen‐Fixation Genes. In: BRUIJN, F. J. (org.). Biological Nitrogen Fixation. 1. eG. Nova Jersey-EUA: Wiley-Blackwell, 2015. p. 191–202. E-book. Disponível em: https://doi.org/10.1002/9781119053095.ch18. Acesso em: 30 dez. 2023. HUNGRIA, M.; NOGUEIRA, M. A.; ARAUJO, R.S. Co-inoculation of soybeans and common beans with rhizobia and azospirilla: strategies to improve sustainability. Biology and Fertility of Soils, v.49, n.7, p.791-801, 2013. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00374-012-0771- 5 HUNGRIA, M.; NOGUEIRA, M.A.; ARAUJO, R.S. Soybean Seed Co-Inoculation with Bradyrhizobium spp. and Azospirillum brasilense: A New Biotechnological Tool to Improve Yield and Sustainability. American Journal of Plant Sciences, v. 06, p. 811-817, 2015. Disponível em: https://doi.org/10.4236/ajps.2015.66087 HUNGRIA, M.; MENDES, I.C. Nitrogen fixation with soybean: the perfect symbiosis? In: de Bruijn FJ (ed) Biological nitrogen fixation. John Wiley, New Jersey, pp 1005–1019, 2015. HUSSAIN, R. The effect of phosphorus in nitrogen fixation in legumes. Agri Res & Tech: Open Access J, v. 5, 2017. Disponível em: https://doi.org/10.19080/ARTOAJ.2017.04.555654 JAMES, E. K.; BALDANI, J. I. The role of biological nitrogen fixation by non-legumes in the sustainable production of food and biofuels. Plant and Soil, v. 356, n. 1–2, p. 1–3, 2012. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11104-012-1317-1 JESUS, E.C.; LEITE, R.A.; BASTOS, R.A.; ARAGÃO, O.O.S.; ARAÚJO, A.P. Coinoculation of Bradyrhizobium stimulates the symbiosis efficiency of Rhizobium with common bean. Plant and Soil, v.425, p.201–215, 2018. Disponível em: https://link.springer.com/article/10.1007/s11104-017-3541-1 JORDAN, G. C. Transfer of Rhizobium japonicum Buchanan 1980 to Bradyrhizobium gen. nov., a Genus of Slow-Growing, Root Nodule Bacteria from Leguminous Plants. International Journal of Systematic Bacteriology, v. 32, n. 1, p. 136–139, 1982. Disponível em: https://doi.org/10.1099/00207713-32-1-136 KHAN, N.; BANO, A.; RAHMAN, M.A.; GUO, J.; KANG, Z.; BABAR, M. Comparative physiological and metabolic analysis reveals a complex mechanism involved in drought tolerance in chickpea (Cicer arietinum L.) induced by PGPR and PGRs. Scientific Reports, v.9, n.1, p.1-19, 2019. Disponível em: https://www.nature.com/articles/s41598-019-38702-8 KICHEL, A. N.; COSTA, J. A. A.; LIMA, N. R. C. B.; SILVEIRA, G. S.; GALDINO, S.; COMIRAN, G.; ARAÚJO, M. T. B. G.; PARIS, A. Sistema de recuperação e manejo de pastagem em solos arenosos: produtividade e custo de produção. Corumbá: Embrapa Pantanal; Campo Grande, MS: Embrapa Gado de Corte, 2006. KONG, Z.; HART, M.; LIU, H. Paving the way from the lab to the field: Using synthetic microbial consortia to produce high-quality crops. Frontiers Plant Science, v.9, p.1467, 2018. Disponível em: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fpls.2018.01467/full 79 LAGUERRE, G.; HEULIN‐GOTTY, K.; BRUNEL, B.; KLONOWSKA, A.; LE QUÉRÉ, A.; TILLARD, P.; PRIN, Y.; CLEYET‐MAREL, J.; LEPETIT, M. Local and systemic N signaling are involved in Medicago truncatula preference for the most efficient Sinorhizobium symbiotic partners. New Phytologist, v. 195, n. 2, p. 437–449, 2012. Disponível em: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2012.04159.x LIMA FILHO, O. F. Adubação verde e plantas de cobertura no Brasil: fundamentos e prática. Embrapa, 2014. MACEDO, M. C. M.; ZIMMER, A. H.; KICHEL, N. A.; ALMEIDA, R. G.; ARAUJO, A. R. Degradação de pastagens, alternativas de recuperação e renovação e formas de mitigação. In: ENCONTRO DE ADUBAÇÃO DE PASTAGENS DA SCOT CONSULTORIA-TECFÉRTIL, RIBEIRÃO PRETO, SP, Ribeirão Preto. Anais [...]. Ribeirão Preto: Scot Consultoria, 2013. p. 158–181. MANZANO, A.; NOVAES, N. J.; ESTEVES, S. N.; VITTI, G. C. Desempenho de novilhos Canchim alimentados com guandu (Cajanus cajan (L) Millsp) em confinamento. In Embrapa Pecuária Sudeste-Resumo em anais de congresso (ALICE). Revista da Sociedade Brasileira de Zootecnia, v. 17, n. 2, p. 165-171, 1988. Disponível em: https://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/bitstream/doc/43105/1/Efeito-Periodos- Estiagens11071-1.pdf MAPBIOMAS – Mapeamento Anual de Cobertura e Uso da Terra do Brasil- Coleção 6. Disponível em: https://mapbiomasbrsite. s3.amazonaws.com/Fact_Sheet_PASTAGEM_13.10.2021_ok_ALTA.pdf. Acesso em: 12 nov. 2021. MARIOTTI, A. Atmospheric nitrogen is a reliable standard for natural 15N abundance measurements. Nature, v.303, n.5919, p.685-687, 1983. MENNA, P.; HUNGRIA, M.; BARCELLOS, F. G.; BANGEL, E. V.; HESS, P. N.; MARTÍNEZ-ROMERO, E. Molecular phylogeny based on the 16S rRNA gene of elite rhizobial strains used in Brazilian commercial inoculants. Systematic and Applied Microbiology, v. 29, n. 4, p. 315–332, 2006. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.syapm.2005.12.002 MMBAGA, G.W.; MTEI, K.M.; NDAKIDEMI, P.A. Extrapolations on the use of rhizobium inoculants supplemented with phosphorus (P) and potassium (K) on growth and nutrition of legumes. Agricultural Sciences, v.5, n.12, p.1207, 2014. Disponível em: https://doi.org/110.4236/as.2014.512130 MIAMOTO, A.; ZAMBONI, A. C.M.; DORIGO, O. F.; MIORANZA, T. M.; PUERARI, H. H.; SILVA, B.A; DIAS, C. R.A. Antagonistic potential and histopathology of' Meloidogyne javanica on Macrotyloma axillare cv. Java. Australian Journal of Crop Science, v.14, n.6, p.940-946, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.21475/ajcs.20.14.06.p2153 MOHAMMED, M.; JAISWAL, S. K.; DAKORA, F. G. Insights into the Phylogeny, Nodule Function, and Biogeographic Distribution of Microsymbionts Nodulating the Orphan Kersting’s Groundnut [ Macrotyloma geocarpum (Harms) Marechal & Baudet] in African Soils. Applied and Environmental Microbiology, v. 85, n. 11, p. e00342-19, 2019. Disponível em: https://doi.org/10.1128/AEM.00342-19 80 MOREIRA, F.; SILVA, K. G.; NÓBREGA, R. A. S.; CARVALHO, F. P. Bactérias diazotróficas associativas: diversidade, ecologia e potencial de aplicações. In: BACTÉRIAS DIAZOTRÓFICAS ASSOCIATIVAS2010, Anais... [S. l.: s. n.]. Disponível em: https://www.semanticscholar.org/paper/Bact%C3%A9rias-diazotr%C3%B3ficasassociativas% 3A-diversidade%2C-Moreira- Silva/275f0736630aa938b3cc4afcbb70cbe2d9dcc335. Acesso em: 30 dez. 2023. MORRIS, J. Macrotyloma axillare and M. uniflorum: Descriptor analysis, anthocyanin indexes, and potential uses. Genetic Resources and Crop Evolution, v. 55, p. 5–8, 2008. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s10722-007-9298-2 MULLEN, B. F.; SHELTON, H. M.; DALZELL, S. A. Leucaena in northern Australia: a forage tree legume success story. In Proceedings of XX International Grassland Conference: Offered papers. Wageningen Academic Publishers, Dublin, IRL p. 333. 2005. MWANGI, G. M. Sources of Nitrogen in a Napier Grass/Legume Mixture on Smallholder Dairy Farms in Central Kenya. Multifunctional Grasslands in a Changing World, v. 1, p. 336, 2020. NORRIS, G. O. Techniques used in work with Rhizobium. In: C.S.I.R.O, B. A. C. L. Some concepts and methods in sub-tropical pasture research. [S. l.]: Commonwealth Agricultural Bureaux, 1964. NUTARATAT, P.; SRISUK, N.; ARUNRATTIYAKORN, P.; LIMTONG, S. Plant growthpromoting traits of epiphytic and endophytic yeasts isolated from rice and sugar cane leaves in Thailan G. Fungal biology, v. 118, n. 8, p. 683-694, 2014. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.funbio.2014.04.010 OKITO, A.; ALVES, B. R. J.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Isotopic fractionation during N2 fixation by four tropical legumes. Soil Biology and Biochemistry, v. 36, n. 7, p. 1179– 1190, 2004. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2004.03.004 OLIVEIRA, A. G. L. Caracterização da pastagem, desempenho animal e viabilidade econômica em Coastcross consorciado ou não com Arachis pintoi. Tese (Doutorado em Zootecnia) - Universidade Estadual de Maringá, Maringá, 119 f. 2007. OLIVEIRA, O. C.; DE OLIVEIRA, I. P., FERREIRA, E.; ALVES, B. J. R., MIRANDA, C.H.B., VILELA, L., URQUIAGA, S. Response of degraded pastures in the Brazilian Cerrado to chemical fertilisation. Pasturas Tropicales, v. 23, p. 14–18, 2001. O'NEILL, M. E.; MATHEWS, K. Y. Theory & methods: A weighted least squares approach to Levene's test of homogeneity of variance. Australian & New Zealand Journal of Statistics, v.42(1), p. 81-100, 2000. ORMEÑO-ORRILLO, E.; MARTÍNEZ-ROMERO, E. A Genomotaxonomy View of the Bradyrhizobium Genus. Frontiers in Microbiology, v. 10, p. 1334, 2019. Disponível em: https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01334 PACHECO, R. S.; BODDEY, R. M.; ALVES, B. J. R.; FERREIRA, E. P. B.; STRALIOTTO, R.; ARAÚJO, A. P. Differences in contribution of biological nitrogen fixation to yield performance of common bean cultivars as assessed by the 15N natural abundance technique. Plant and Soil, v. 454, n. 1–2, p. 327–341, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11104-020-04654-6 81 PACIULLO, G. S. C.; AROEIRA, L. J. M.; ALVIM, M. J.; CARVALHO, M. M. Características produtivas e qualitativas de pastagem de braquiária em monocultivo e consorciada com estilosantes. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 38, n. 3, p. 421–426, 2003. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0100-204X2003000300012 PALANIAPPAN, P.; CHAUHAN, P. S.; SARAVANAN, V. S.; ANANDHAM, R.; SA, T. Isolation and characterization of plant growth promoting endophytic bacterial isolates from root nodule of Lespedeza sp. Biology and Fertility of Soils, v. 46, n. 8, p. 807–816, 2010. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00374-010-0485-5 PAUFERRO, N.; GUIMARÃES, A. P.; JANTALIA, C. P.; URQUIAGA, S.; ALVES, B. J. R.; BODDEY, R. M. 15N natural abundance of biologically fixed N2 in soybean is controlled more by the Bradyrhizobium strain than by the variety of the host plant. Soil Biology and Biochemistry, v. 42, n. 10, p. 1694–1700, 2010. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2010.05.032 PAULINO, V. T.; PAULINO, T. S. Avanços no manejo de pastagens consorciadas. Revista Científica Eletrônica de Agronomia, v. 2, n. 3, p. 27, 2003. PAULINO, V. T.; GERDES, L.; VALARINI, M. J.; FERRARI JUNIOR, E. Retrospectiva do uso de leguminosas forrageiras. In: Anais. II Encontro Técnico de Leguminosas Forrageiras, v.1, p.1-47, 2006. PEREIRA, J. O feijao guandu: uma opcao para a agropecuaria brasileira. 1985. Disponível em https://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/bitstream/doc/549433/1/cirtec20.pdf PEREIRA, J.M.;REZENDE, C.P.; FERREIRA, A.G.B ; HOMEM, B.G. C.; CASAGRANDE, G.R.; MACEDO, T.M. ; ALVES, B.J.R.; SANT’ANNA, S.A.C. ; URQUIAGA, S.; BODDEY, R.M. Production of beef cattle grazing on Brachiaria brizantha (Marandu grass)- Arachis pintoi (forage peanut cv. Belomonte) mixtures exceeded that on grass monocultures fertilized with 120 kg N/ha. Grass and Forage Science, v. 75, p. 28-36, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1111/gfs.12463 POSSENTI, R.; FRANZOLIN, R.; SHAMMAS, E.; BRÁS, P.; DEMARCHI, J. G. A.; FRIGHETTO, R.; de LIMA, M. A. Efeitos de dietas com dois níveis de Leucaena leucocephala (lam.) com e sem adição de Saccharomyces cerevisiae sobre a emissão do gás metano em bovinos. In Embrapa Meio Ambiente-Artigo em anais de congresso (ALICE). In: REUNIÃO ANUAL DA SOCIEDADE BRASILEIRA DE ZOOTECNIA, 43., João Pessoa: SBZ, p. 1-6. 2006. Disponível em: https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/130843/1/2006AA-002.pdf REIS JÚNIOR, F. B.; TEIXEIRA, K. R. S.; REIS, V. M. Fixação Biológica de Nitrogênio Associada a Pastagens de Braquiária e outras Gramíneas Forrageiras.: Documentos 52. Planaltina-DF: Embrapa Cerrados, 2002. REZENDE, C. P.; PEREIRA, J. M.; MAGALHÃES, A.; BASTO, G.; HOMEM, B.; BODDEY, R.; ALVES, B. J. Desempenho de novilhas em pastagens formadas pelos capins Tifton 85, Xaraés e Mombaça, sob lotação rotativa. Agrotrópica (Itabuna), v. 33, n. 3, p. 197–204, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.21757/0103-3816.2021v33n3p197-204 RIGG, J. L.; WEBSTER, A. T.; HARVEY, G. M.; ORGILL, S. E.; GALEA, F.; DANDO, A. G.; ... & HAYES, R. C. Cross-host compatibility of commercial rhizobial strains for new and 82 existing pasture legume cultivars in south-eastern Australia. Crop and Pasture Science, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.1071/CP20234 RONDINA, A.B.L.; dos SANTOS, S.A.W.; GUIMARÃES, G.S.; WENDLING, J.R.; NOGUEIRA, M.A.; HUNGRIA, M. Changes in root morphological traits in soybean coinoculated with Bradyrhizobium spp. and Azospirillum brasilense or treated with A. brasilense exudates. Biology and Fertility of Soils, v.56, n.4, p.537-549, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00374-020-01453-0 ROSIER, A.; MEDEIROS, F. H. V.; BAIS, H. P. Defining plant growth promoting rhizobacteria molecular and biochemical networks in beneficial plant-microbe interactions. Plant and Soil, v. 428, n. 1–2, p. 35–55, 2018. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11104- 018-3679-5 SÁ, O. A. A. L.; RIBEIRO, P. R. A.; RUFINI, M.; CRUVINEL, I. A. F.; CASAGRANDE, G. R.; MOREIRA, F. M. S. Microsymbionts of forage peanut under different soil and climate conditions belong to a specific group of Bradyrhizobium strains. Applied Soil Ecology, v. 143, p. 201–212, 2019. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2019.07.018 SALES, M. F. L.; de ASSIS, G. M. L.; de ANDRADE, C. M. S.; de SÁ, C. P.; VALENTIM, J. F.; de MESQUITA, A. Q. Recria de bovinos de corte em pastos de capim-humidícola consorciados com amendoim forrageiro no Estado do Acre. Embrapa Acre-Circular Técnica (INFOTECA-E). 2020. Disponível em: https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/218373/1/27073.pdf. Acesso em: 13 jan.2024. SAMBROOK, J.; RUSSELL, G. W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Lab Manual edição eG. Cold Spring Harbor, N.Y: Cold Spring Harbor Laboratory Pr, 2000. SANTOS, M.S.; NOGUEIRA, M.A.; HUNGRIA, M. Microbial inoculants: reviewing the past, discussing the present and pre-viewing an outstanding future for the use of beneficial bacteria in agriculture. AMB Express, v. 9, p. 205, 2019. Disponível em: htpps: //doi.org/10.1186/s13568-019-0932-0 SARABIA, M.; JAKOBSEN, I.; GRØNLUND, M.; CARREON-ABUD, Y.; LARSEN, J. Rhizosphere yeasts improve P uptake of a maize arbuscular mycorrhizal association. Applied Soil Ecology, v. 125, p. 18–25, 2018. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2017.12.012 SAWADA, H.; KUYKENDALL, L. G.; YOUNG, J. M. Changing concepts in the systematics of bacterial nitrogen-fixing legume symbionts. The Journal of General and Applied Microbiology, v. 49, n. 3, p. 155–179, 2003. Disponível em: https://doi.org/10.2323/jgam.49.155 SCHULTZE-KRAFT, R.; RAO, I. M.; PETERS, M.; CLEMENTS, R. J.; BAI, C.; LIU, G. Tropical forage legumes for environmental benefits: An overview. Tropical Grasslands- Forrajes Tropicales, v. 6, n. 1, p. 1–14, 2018. Disponível em: https://doi.org/10.17138/tgft(6)1-14 SCHUNKE, R. M.; VALLE, L. C. S.; ZIMMER, A. H.; FERNANDES, C. G.; MACEDO, M. C. M.; RAUL, V. J.; SILVA, J. M. S. Estilosantes campo grande: estabelecimento, manejo e produção animal. Comunicado Técnico 61. [S. l.]: Embrapa, 2000. 83 SCOTT, A. J.; KNOTT, M. A. A cluster analysis method for grouping means in the analysis of variance. Biometrics, v. 30, n. 2, p. 507-512, 1974. SHEARER, G.; KOHL, G. H. Natural 15N abundance as a method of estimating the contribution of biologically fixed nitrogen to N2-fixing systems: Potential for non-legumes. In: SKINNER, F. A.; BODDEY, R. M.; FENDRIK, I. (org.). Nitrogen Fixation with Non-Legumes. Dordrecht: Springer Netherlands, 1989. p. 289–299. E-book. Disponível em: https://doi.org/10.1007/978-94-009-0889-5_33. Acesso em: 5 jan. 2024. SILVA, V. J.; DUBEUX JUNIOR, J. C. B.; TEIXEIRA, V. I.; SANTOS, M. V. F.; LIRA, M. A.; MELLO, A. C. L. Características morfológicas e produtivas de leguminosas forrageiras tropicais submetidas a duas frequências de corte. Revista Brasileira de Zootecnia, v. 39, n. 1, p. 97–102, 2010. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S1516-35982010000100013 SILVA ER, SALLES JS, ZUFFO AM, STEINER F. Co-inoculation of Bradyrhizobium japonicum and Azospirillum brasilense on peanut seeds of different sizes. Revista de Agricultura Neotropical, v.4, n.5, p.93-102, 2017. SILVA, G. G.; MENDONÇA, A. G.; TORRES, C. M. M. E.; PEZZOPANE, J. R. M.; SILVA, J. P. M.; ROCHA, Q. S.; BARROS, Q. S. Avaliação econômica de diferentes modelos de sistemas silvipastoris. Embrapa Pecuária Sudeste-Capítulo em livro científico (ALICE). 2021. SINGLETON, P.W., BOHLOOL, B.B. AND NAKAO, P.L. Legume Response to Rhizobial Inoculation in the Tropics: Myths and Realities. In Myths and Science of Soils of the Tropics, v. 29, p. 135-155, 1992. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssaspecpub29.c8 SOARES, J. C. G. R.; BARCELLOS, J. O. J.; QUEIROZ, L. A. V.; OAIGEN, R. P.; CANOZZI, M. E. A.; CAMARGO, C. M.; BRACCINI, J. Avaliação econômica da terminação de bovinos de corte em pastagem irrigada. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v.67, p.1096-1104, 2015. Disponível em: https://doi.org/10.1590/1678-4162-7340 SULIEMAN, S.; SCHULZE, J.; TRAN, L.-S. Comparative Analysis of the Symbiotic Efficiency of Medicago truncatula and Medicago sativa under Phosphorus Deficiency. International Journal of Molecular Sciences, v. 14, n. 3, p. 5198–5213, 2013. Disponível em: https://doi.org/10.3390/ijms14035198 TAMELE, O. H.; de SÁ, O. A. A. L.; BERNARDES, T. F.; LARA, M. A. S.; CASAGRANDE, G. R. Optimal defoliation management of brachiaria grass–forage peanut for balanced pasture establishment. Grass and Forage Science, v.73, n.2, p.522-531, 2018.Disponível em: https://doi.org/10.1111/gfs.12332 TAMURA, K.; STECHER, G.; PETERSON, G.; FILIPSKI, A.; KUMAR, S. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0. Molecular Biology and Evolution, v. 30, n. 12, p. 2725–2729, 2013. Disponível em: https://doi.org/10.1093/molbev/mst197 TARIQ, M.; HAMEED, S.; YASMEEN, T.; ZAHID, M.; ZAFAR, M. Molecular characterization and identification of plant growth promoting endophytic bacteria isolated from the root nodules of pea (Pisum sativum L.). World Journal of Microbiology and Biotechnology, v. 30, n. 2, p. 719–725, 2014. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11274- 013-1488-9 TEIXEIRA, P. C.; DONAGEMMA, G. K.; FONTANA, A.; TEIXEIRA, W. G. Manual de métodos de análise de solo. 3. eG. Brasília: Embrapa, 2017. E-book. Disponível em: 84 https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/-/publicacao/1085209/manual-de-metodos-deanalise- de-solo. Acesso em: 5 jan. 2024. THRALL, P. H.; OAKESHOTT, J. G.; FITT, G.; SOUTHERTON, S.; BURDON, J. J.; SHEPPARD, A.; FORD DENISON, R. Evolution in agriculture: the application of evolutionary approaches to the management of biotic interactions in agro‐ecosystems. Evolutionary applications, v.4, n.2, p. 200-215, 2011. Disponível em: https://doi.org/10.1111/j.1752- 4571.2010.00179.x TRINICK, M. J. Host-Rhizobium associations. In: VINCENT, J. M. Nitrogen Fixation in Legumes. Sydney: Academic Pr, 1982. p. 111–122. UNKOVICH, M.; HERRIDGE, G.; POVOS, M.; CADISCH, G.; BODDEY, R. M.; GILLER, K.; ALVES, B. J. R.; CHALK, P. Medição da fixação de nitrogênio associado a plantas em sistemas agrícolas. ACIAR, p. 258, 2008. URQUIAGA, S.; CRUZ, K. H. S.; BODDEY, R. M. Contribution of Nitrogen Fixation to Sugar Cane: Nitrogen‐15 and Nitrogen‐Balance Estimates. Soil Science Society of America Journal, v. 56, n. 1, p. 105–114, 1992. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssaj1992.03615995005600010017x URQUIAGA, S.; XAVIER, R. P.; MORAIS, R. F.; BATISTA, R. B.; SCHULTZ, N.; LEITE, J. M.; MAIA E SÁ, J.; BARBOSA, K. P.; RESENDE, A. S.; ALVES, B. J. R.; BODDEY, R. M. Evidence from field nitrogen balance and 15N natural abundance data for the contribution of biological N2 fixation to Brazilian sugarcane varieties. Plant and Soil, v. 356, n. 1–2, p. 5– 21, 2012. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11104-011-1016-3 USDA. Home | USDA Foreign Agricultural Service. [s. l.], 2020. Disponível em: https://fas.usda.gov/. Acesso em: 15 jul. 2020. VAN BERKUM, P.; LEIBOLD, J. M.; EARDLY, B. G. Proposal for combining Bradyrhizobium spp. (Aeschynomene indica) with Blastobacter denitrificans and to transfer Blastobacter denitrificans (HIRSCH & MULLER, 1985) to the genus Bradyrhizobium as Bradyrhizobium denitrificans (comb. nov.). Systematic and Applied Microbiology, v. 29, n. 3, p. 207–215, 2006. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.syapm.2005.07.014 VILELA, L.; MIRANDA, J.C.L.; AYARZA, M.A.; SHARMA, R.G. Integração lavoura pecuária: atividades desenvolvidas pela Embrapa Cerrados. Planaltina: Embrapa Cerrados, 29p. (Embrapa Cerrados. Documento, 9). 1999. VINCENT, J. M. A Manual for the Practical Study of Root-nodule Bacteria. Oxford: [Published for the] International Biological Programme [by] Blackwell Scientific, 1970. WANG, H.; QI, M.; CUTLER, A. J. A simple method of preparing plant samples for PCR. Nucleic Acids Research, v. 21, n. 17, p. 4153–4154, 1993. Disponível em: https://doi.org/10.1093/nar/21.17.4153 WESTHOEK, A.; FIELD, E.; REHLING, F.; MULLEY, G.; WEBB, I.; POOLE, P. S.; TURNBULL, L. A. Policing the legume-Rhizobium symbiosis: a critical test of partner choice. Scientific Reports, v. 7, n. 1, p. 1419, 2017. Disponível em: https://doi.org/10.1038/s41598- 017-01634-2 WILLEMS, A.; COOPMAN, R.; GILLIS, M. Phylogenetic and DNA-DNA hybridization analyses of Bradyrhizobium species. International Journal of Systematic and Evolutionary 85 Microbiology, v. 51, n. 1, p. 111–117, 2001. Disponível em: https://doi.org/10.1099/00207713- 51-1-111 WOOD, T. J.; SMITH, B. M.; HUGHES, B.; GILL, J. A.; HOLLAND, J. M. Do legume-rich habitats provide improved farmland biodiversity resources and services in arable farmlanG. Aspects of Applied Biology, v.118, p.239-246, 2013. Disponível em: https://www.gwct.org.uk/research/scientific-publications/2010-19/2013/wood2013/ YANO, G. M. Y.; FARRIS, M.G. UMINO, C.Y.; COUTINHO, H.L.C.; CANHOS, V.P. Técnicas para cultivo, identificação e preservação de bactérias. Fundação Tropical de Pesquisas e Tecnologia “André Tosello”. Campinas, SP. 64 p. 1993. YAO, Y.; SUI, X. H.; ZHANG, X. X.; WANG, E. T.; CHEN, W. X. Bradyrhizobium erythrophlei sp. nov. and Bradyrhizobium ferriligni sp. nov., isolated from effective nodules of Erythrophleum fordii. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 65, n. Pt_6, p. 1831–1837, 2015. Disponível em: https://doi.org/10.1099/ijs.0.000183 YATES, R.J.; HOWIESON, J.G.; HUNGRIA, M.; BALA, A.; O’HARA, G.W.; TERPOLILLI, J. Authentication of rhizobia and assessment of the legume symbiosis in controlled plant growth systems. In: HOWIESON, J. G.; DILWORTH, M. J. (eds) Working with rhizobia. Australian Centre for International Agricultural Research (ACIAR Monograph No. 173), 2016, Canberra, pp 73–108. Disponível em: https://www.aciar.gov.au/publication/books-andmanuals/ working-rhizobia. Acesso em: 4 jan. 2022. XAVIER, R. P. Contribuição da fixação biológica de nitrogênio na produção sustentável da cultura de cana-de-açúcar. Tese (Doutorado em Agronomia) -Programa de Pós-Graduação em Fitotecnia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Seropédica, 80 f. 2006. Disponível em: https://tede.ufrrj.br/jspui/handle/tede/545?mode=simple. Acesso em: 11 jan. 2024. ZILLI, J. É.; ALVES, B. J. R.; ROUWS, L. F. M.; SIMÕES-ARAUJO, J. L.; SOARES, L. H. B.; CASSÁN, F.; CASTELLANOS, M. O.; O’HARA, G. The importance of denitrification performed by nitrogen-fixing bacteria used as inoculants in South America. Plant and Soil, v. 451, n. 1–2, p. 5–24, 2020. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s11104-019-04187-7 ZIMMER, A. H.; MACEDO, M. C. M.; KICHEL, A. N. de ALMEIDA, R. G. Degradação, recuperação e renovação de pastagens. Embrapa Gado de Corte-Documentos (INFOTECA-E). 2012.pt_BR
dc.subject.cnpqAgronomiapt_BR
Appears in Collections:Doutorado em Agronomia - Ciência do Solo

Se for cadastrado no RIMA, poderá receber informações por email.
Se ainda não tem uma conta, cadastre-se aqui!

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
2023 - MAYAN BLANC AMARAL.pdf1.33 MBAdobe PDFThumbnail
View/Open


Items in DSpace are protected by copyright, with all rights reserved, unless otherwise indicated.