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dc.contributor.authorSouza, Amanda dos Santos-
dc.date.accessioned2024-12-04T17:10:13Z-
dc.date.available2024-12-04T17:10:13Z-
dc.date.issued2022-06-23-
dc.identifier.citationSOUZA, Amanda dos Santos. Alterações anatômicas e na absorção e translocação de herbicidas como mecanismo de resistência em Conyza sumatrensis. 2021. 107 f. Tese (Doutorado em Fitotecnia) - Instituto de Agronomia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2022.pt_BR
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/19251-
dc.description.abstractA elucidação dos mecanismos de resistência de Conyza sumatrensis a herbicidas é de extrema importância para o manejo eficiente desta espécie no campo. O objetivo deste trabalho foi avaliar a anatomia diferencial alterações anatômicas, absorção e translocação reduzida, além da metabolização de herbicidas no biótipo de Conyza sumatrensis resistente a cinco mecanismos de ação e propor um manejo eficiente para controle deste biótipo. Em todos os capítulos foram avaliados um biótipo resistente e um biótipo suscetível para fins de comparação. CAPÍTULO I: Foram avaliados quanto a diferenciação anatômica biótipos de Conyza sumatrensis, após a aplicação do herbicida 2,4-D (1005g e.a ha-1). Foram realizadas duas técnicas: 1Microscopia de luz: as folhas foram coletadas e analisadas 15 e 30 minutos após aplicação (MAA). 3Microscopia eletrônica de varredura: as folhas dos biótipos suscetíveis e resistentes foram coletadas 30 MAA e 3 horas após aplicação (HAA). CAPÍTULO II:Foram avaliados quanto a absorção e translocação em biótipos de Conyza sumatrensis, após a aplicação dos herbicidas 2,4-D (1005 g e. a ha-1). Foram realizados três experimentos: 1Foram avaliados quanto absorção e translocação o 14C-2,4-D aos 3, 12, 24, 48 e 96 HAA. 2Foi avaliado a metabolização dos biótipos suscetíveis e resistente as 3, 12, 24, 48 e 96 HAA. 3Foi avaliado o efeito do pré-tratamento com malation no controle do biótipo resistente, foram avaliados os sintomas aos 7, 14 e 35 DAA. CAPÍTULO III: Foram realizados dois experimentos. 1O experimento foi conduzido em casa de vegetação. Os herbicidas glifosato (720g ia ha-1); 2,4-D (1005g ia ha-1); triclopir (720g ia ha-1); halauxifen-metil+diclosulam (5,17+25,5g ia ha-1) e dicamba (480g ia ha-1); foram aplicados isolados, e os auxínicos em mistura com o glifosato (720g ia ha-1); ainda, as misturas com glifosato foram avaliadas com adição de saflufenacil (35g ia ha-1) ou sequencial de glufosinato de amônio (400g ia ha-1) aplicado 10 dias após a primeira aplicação (DAPA). As 4 e 48 horas, 10, 15 e 35 DAPA realizou-se análise de controle visual e aos 35 DAPA a MSPA. 2O experimento foi conduzido a campo. Os herbicidas 2,4-D (1005g ia ha-1); triclopir (720 g ia ha-1); halauxifen-metil+diclosulam (6,5+31,8g ia ha-1) e dicamba (384g ia ha-1) em associação com o glifosato (1200g ea ha-1); as mesmas associações com adição de saflufenacil (35g ia ha-1) ou sequencial de glufosinato de amônio (400g ia ha-1) aos 8 DAPA. Aos 14 e 50 DAPA foram realizadas análises visuais de controle.CAPÍTULO IV: Foram avaliados quanto a absorção e translocação em biótipos de Conyza sumatrensis, após a aplicação do herbicida glifosato (720 g e. a ha-1) e saflufenacil (70g i.a ha-1). Foram realizados dois experimentos. Foram avaliados quanto absorção e translocação o 2 14C-glifosato 24, 48, 72, 96 e 120 HAA e o 3 14C-saflufenacil aos 6, 12, 24, 48 e 72HAA. CAPÍTULO I: Houve diferença entre os biótipos após a aplicação, foi possível observar diferenças anatômicas na espessura de epiderme superior, mesofilo e espaços intercelures entre os biótipos após aplicação do herbicida 2,4-D. CAPÍTULO II: a translocação reduzida do herbicida 2,4-D é um dos mecanismos de resistência do biótipo resistente de Conyza sumatrensis ao herbicida 2,4-D, não foi observado metabolização do herbicida 2,4-D.CAPÍTULO III: Não foi observado resistência cruzada. A aplicação de glifosato+auxinas em mistura com o herbicida saflufenacil ou sequencial com o herbicida glufosinato de amônio se mostraram excelentes estratégias de controle do biótipo resistente de Conyza sumatrensis. CAPÍTULO IV: Não houve diferença entre os biótipos na absorção e translocação do herbicida glifosato e saflufenacil. A elucidação dos mecanismos envolvidos na resistência de Conyza sumatrensis com rápida necrose, podem ser relacionados com as alterações anatômicas e redução da translocação para o herbicida 2,4-D.pt_BR
dc.description.sponsorshipCoordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPESpt_BR
dc.languageporpt_BR
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropt_BR
dc.subjectcaracterização anatômicapt_BR
dc.subjectmetabolismo de herbicidaspt_BR
dc.subjectbuvapt_BR
dc.subjectresistência ao 2,4 Dpt_BR
dc.subjectrápida necrosept_BR
dc.subjectanatomical characterizationpt_BR
dc.subjectherbicide metabolismpt_BR
dc.subjectresistance to 2,4-Dpt_BR
dc.subjectrapid necrosispt_BR
dc.titleAlterações anatômicas e na absorção e translocação de herbicidas como mecanismo de resistência em Conyza sumatrensispt_BR
dc.title.alternativeSantos. Anatomical changes and in the absorption and translocation of herbicides as a resistance mechanism in Conyza sumatrensis.en
dc.typeTesept_BR
dc.description.abstractOtherThe elucidation of the resistance mechanisms of Conyza sumatrensis to herbicides is extremely important for the efficient management of this species in the field. The objective of this research was to evaluate the differential anatomy, reduced absorption and translocation, and metabolism of herbicides in the Conyza sumatrensis biotype resistant to five mechanisms of action and to propose an efficient management to control this biotype. In all chapter, a resistant and susceptible biotype were evaluated for comparison purpose. CHAPTER I: Conyza sumatrensis biotypes were evaluated for anatomical differentiation after application of the 2,4-D (1005g a.e ha-1) herbicide. Two experiments were carried out: 1Light microscopy, the leaves of resistant and susceptible were collected and analyzed 15 and 30 minutes after application (MAA). 2Scanning electron microscopy: leaves of resistant and susceptible biotypes were collected 30 MAA and 3 hours after application (HAA). CHAPTER II: Absorption and translocation were evaluated in Conyza sumatrensis after the 2,4-D (1005 g e. a ha-1) herbicide application. Three experiments were carried out: 1 14C-2,4-D absorption and translocation was evaluated at 3, 12, 24, 48 and 96 HAA. 2 14C-2,4-D metabolism was evaluated at 3, 12, 24, 48 and 96 HAA. 3The effect of pretreatment with malathion on the control of the resistant biotype was evaluated, the symptoms were evaluated at 7, 14 and 35DAA. CHAPTER III: Management strategies were evaluated to control the resistant biotype of Conyza sumatrensis. Two experiments were carried out: 1The experiment was conducted in a greenhouse. Glyphosate herbicides (720g ia ha-1); 2,4-D (1005g ai ha-1); triclopyr (720g ai ha-1); halauxifen methyl+diclosulam (5.17+25.5g ia ha-1) and dicamba (480g ia ha-1); isolates were applied and auxinics with glyphosate (720g ai ha-1), the same with addition of saflufenacil (35g ia ha-1) or sequential ammonium glufosinate (400g ia ha-1) applied 10 days after the first application (DAPA). At 4 and 48 hours, 10, 15 and 35 DAPA, visual control analysis was performed and at 35 DAPA, MSPA. 2The experiment was conducted in the field. 2,4-D herbicides (1005g ai ha-1); triclopyr (720 g ai ha-1); halauxifen-methyl + diclosulam (6.5+31.8g ia ha-1) and dicamba (384g ia ha-1) in association with glyphosate (1200g ea ha-1); the same associations with addition of saflufenacil (35g ai ha-1) or sequential ammonium glufosinate (400g ai ha-1) at 8 DAPA. At 14 and 50 DAPA, visual control analyzes were performed. CHAPTER IV: Two experiments were carried out. 14C glyphosate absorption and translocation were evaluated at 24, 48, 72 and 120 HAA and 2 14C saflufenacil absorption and translocation at 6, 12, 24, 48 e 72HAA. CHAPTER I: There was a difference between the biotypes after application, it was possible to observe anatomical differences in the resistant biotype after application of the herbicide 2,4-D. CHAPTER II: The reduced translocation of the herbicide 2,4-D is one of the resistance mechanisms for the resistant biotype of Conyza sumatrensis, 2,4-D metabolism was not observed. CHAPTER III: The application in mixture with the herbicide saflufenacil or sequential with the herbicide glufosinate proved to be excellent strategies to control the resistant biotype of Conyza sumatrensis. CHAPTER IV: There was no difference between the biotypes in the absorption and translocation of the herbicide glyphosate and saflufenacil. The elucidation of the mechanisms involved in the resistance of Conyza sumatrensis with rapid necrosis may be related to anatomical changes and reduced translocation to the 2,4-D herbicide.en
dc.contributor.advisor1Pinho, Camila Ferreira de-
dc.contributor.advisor1IDhttps://orcid.org/0000-0003-2861-2212pt_BR
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/3934515090201644pt_BR
dc.contributor.referee1Pinho, Camila Ferreira de-
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/3934515090201644pt_BR
dc.contributor.referee2Machado, Aroldo Ferreira Lopes-
dc.contributor.referee2IDhttps://orcid.org/0000-0001-6506-9728pt_BR
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/1657705026007826pt_BR
dc.contributor.referee3Nunes, Anderson Luis-
dc.contributor.referee3IDhttp://orcid.org/0000-0002-4789-0253pt_BR
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/4970059871470830pt_BR
dc.contributor.referee4Markus, Catarine-
dc.contributor.referee4IDhttps://orcid.org/0000-0002-5330-3502pt_BR
dc.contributor.referee4Latteshttp://lattes.cnpq.br/9262685688838186pt_BR
dc.contributor.referee5Tozin, Luiz Ricardo dos Santos-
dc.contributor.referee5Latteshttp://lattes.cnpq.br/6601564974089874pt_BR
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/6209222458936613pt_BR
dc.publisher.countryBrasilpt_BR
dc.publisher.departmentInstituto de Agronomiapt_BR
dc.publisher.initialsUFRRJpt_BR
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Fitotecniapt_BR
dc.relation.referencesALBIERO, A. L. M.; PAOLI, A. A. S.; SOUZA, L. A. D.; MOURÃO, K. S. M. Morfoanatomia dos órgãos vegetativos de Piper crassinervium HB & K.(Piperaceae). Acta Botanica Brasilica, v. 19, n. 2, p. 305-312, 2005. ANASTASIU, P.; MEMEDEMIN, D. Conyza sumatrensis: a new alien plant in Romania. Botanica Serbica, v. 36, n. 1, p. 37-40, 2012. BEWLEY, J.D.; BLACK, M. Seeds: physiology of development e germination, 2 ed. New York: Pleanum Press, 1994. 455p. BHOWMIK, P. C.; BEKECH, M. M. Horseweed (Conyza canadensis) seed production, emergence, and distribution in no-tillage and conventional tillage corn (Zea mays). Agronomy Trends in Agriculture Science, v.1, p. 67–7, 1993. BROMILOW, R. H.; CHAMBERLAIN, K.; EVANS, A. A. Physicochemical aspects of phloem translocation of herbicides. Weed Science, v. 38, n. 3, p. 305-314, 1990. BUENO, M.R.; ALVES, G.S.; PAULA, A. D. M.; CUNHA, J. P. A. R. Volumes de calda e adjuvante no controle de plantas daninhas com glyphosate. Planta Daninha, v. 31, n. 3, p. 705 713, 2013. BUICK, R. D.; BUCHAN, G. D.; FIELD, R. J. The role of surface tension of spreading droplets in absorption of a herbicide formulation via leaf stomata. Pesticide Science, v. 38, n. 2, p. 227 235, 1993. BUKOVAC, M.J.; PETRACEK, P. D. Characterizing pesticide and surfactant penetration with isolated plant cuticles. Pesticide Science, v. 37, p. 179-194, 1993. BUKOVAC, M. J.; PETRACEK, P. D.; FADER, R. G.; MORSE, R. D. Sorption of organic compounds by plant cuticles. Weed Science, v. 38, p. 289-298, 1990. CARVALHO, D. F.; SILVA, D. G.; SOUZA, A. P.; GOMES, D. P.; ROCHA, H. S. Coeficientes da equação de Angström-Prescott e sua influência na evapotranspiração de referência em Seropédica, RJ. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola, v. 15, n. 8, p. 108 116, 2011. CARVALHO, N. M.; NAKAGAWA, J. Sementes: ciência, tecnologia e produção. Fundação Cargill, Campinas, 1983. 429p. CASE, C. M.; CRAWLEY, M. J. Effect of interspecific competition and herbivory on the recruitment of an invasive alien plant: Conyza sumatrensis. Biological Invasions, v. 2, n. 2, p. 103-110, 2000. CHRISTOFFOLETI, P. J.; LÓPEZ-OVEJERO, R. Principais aspectos da resistência de plantas daninhas ao herbicida glyphosate. Planta Daninha, v. 21, p. 507-515, 2003. CHRISTOFFOLETI, P. J.; OVEJERO, R. F. L.; J. C. CARVALHO. Aspectos de Resistência de Plantas Daninhas a Herbicidas. Associação Brasileira de Ação à Resistência de Plantas Daninhas - HRAC-BR, Campinas, BR, 2004. CRAFTS, A. S.; YAMAGUCHI, S. The autoradiography of plant materials. Agricultural Experiment Station Manual, v. 35, n. 1, p. 143, 1964. CRUZ-HIPOLITO, H.; ROJANO-DELGADO, A.; DOMÍNGUEZ-VALENZUELA, J. A.; HEREDIA, A.; CASTRO, M. D. L.; PRADO, R. Glyphosate tolerance by Clitoria ternatea and Neonotonia wightii plants involves differential absorption and translocation of the herbicide. Plant and Soil, v. 347, n. 1, p. 221-230, 2011. DALAZEN, G.; KRUSE, D. N.; OLIVEIRA, S. L. M.; BALBINOT, A. Sinergismo na combinação de glifosato e saflufenacil para o controle de buva. Pesquisa Agropecuária Tropical, v. 45, n. 2, p. 29-256, 2015. DÉLYE, C. Unravelling the genetic bases of non-target-site-based resistance (NTSR) to herbicides: a major challenge for weed science in the forthcoming decade. Pest Management Science, v. 69, n. 2, p. 176–187, 2013. DÉLYE, C.; JASIENIUK, M.; LE CORRE, V. Deciphering the evolution of herbicide resistance in weeds. Trends in Genetics, v. 29, n.11, p.649-65, 2013. DEVINE, M. D.; DUKE, S. O.; FEDTKE, C. Physiology of herbicide action; PTR Prentice Hall: Upper Saddle River, NJ, 1993. DITOMASO, J. M. Barriers to foliar penetration and uptake of herbicides. In Proceedings of the California Weed Science Society v. 51, pp. 150-155, 1999. DUKE, S. O.; POWLES, S. B. Glyphosate: a once-in-acentury herbicide. Pest Management Science, v. 64, n. 4, p. 319–325, 2008. FUNK, V. A.; SUSANNA, A; STUESSY, T. F.; ROBINSON, H. Classification of Compositae. In: Funk, V. A.; Susanna, A. Stuessy, T. F. Bayer, R. J. eds. Systematics, Evolution, e Biogeography of Compositae. Vienna, Austria: International Association for Plant Taxonomy, p.171-189, 2009. GAINES, T.A.; ZHANG, W.; WANG, D.; BUKUN, B.; CHISHOLM, S.T.; SHANER, D.L.; NISSEN, S.J.; PATZOLDT, W.L.; TRANEL, P.J.; CULPEPPER, A.S. Gene amplification confers glyphosate resistance in amaranthus palmeri. Proceedings of the National Academy of Sciences. v. 107, p.1029–1034, 2010. GE, X.; D'AVIGNON, D. A.; ACKERMAN, J. J. H.; SAMMONS, R. D. Rapid vacuolar sequestration: the horseweed glyphosate resistance mechanism. Pest Management Science, v. 66, p. 345–348, 2010. GE, X.; D'AVIGNON, D. A.; ACKERMAN, J. J. H.; DUNCAN, B.; SPAUR, M. B.; SAMMONS, R. D. Glyphosate resistant horseweed made sensitive to glyphosate: low temperature suppression of glyphosate vacuolar sequestration revealed by 31P NMR. Pest Management Science, v. 67, p. 1215–1221, 2011. 84 GIANELLI, V.; BEDMAR, F.; ULZURRUN, P. D. D.; PANAGGIO, H. Dinámica de emergencia y competencia intraespecífica en Conyza sumatrensis. Agrociencia (Uruguay), v. 21, n. 1, p. 69-77, 2017. GONZÁLEZ-TORRALVA, F.; GIL-HUMANES, J.; BARRO, F.; BRANTS, I.; DE PRADO, R. Target site mutation and reduced translocation are present in a glyphosate-resistant Lolium multiflorum Lam. biotype from Spain. Plant physiology and biochemistry, v.58, p. 16-22, 2012. GRAVINA, F.; DOBRZANSKI, T.; OLCHANHESKI, L. R.; GALVÃO, C. W.; RECHE, P. M.; PILEGGI, S. A.; PILEGGI, M. Metabolic interference of sod gene mutations on catalase activity in Escherichia coli exposed to the herbicide Gramoxone® (paraquat). Ecotoxicology and environmental, v. 139, p. 89-96, 2017. HAO, J. H.; Qiang, S.; LIU, Q. Q.; Cao, F. Reproductive traits associated with invasiveness in Conyza sumatrensis. Journal of Systematics and Evolution, v. 47, n. 3, p. 245-254, 2009. HARA-NISHIMURA, I.; HATSUGAI, N.; NAKAUNE, S.; KUROYANAGI, M.; NISHIMURA, M. Vacuolar processing enzyme: an executor of plant cell death. Current opinion in plant biology, v. 8, n. 4, p. 404-408, 2005. HARPER, J.L. The Population Biology of Plants. Academic Press, London, UK, 1977. HARR, J.; R. GUGGENHEIM, eds. The Leaf Surface of Major Crops. Friedrich Reinhardt Verlag, Berlin, 98 pp. 1995. HEAP, I. M. International Survey of Herbicide Resistant Weeds. www. weedscience.org, 2022. (Accessed 10.08.2022.). HESS, F. D. Herbicide absorption and translocation and their relationship to plant tolerances and susceptibility. Weed physiology. CRC Press, p. 191-214, 2018. HESS, F.D.; R.H. FALK. Herbicide deposition on leaf surfaces. Weed Science, v. 38, p. 280 288, 1990. INACIO, E. M.; MONQUERO, P. A. Controle químico e caracterização da superfície foliar de Conyza bonariensis e C. canadensis (Asteraceae). Revista Brasileira de Herbicidas, v. 12, n. 3, p. 220-231, 2013. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística (IBGE), 2021. Produção agrícola. 2021. Instituto de Pesquisa Econômica aplicada, 2022. Comércio Exterior do Agronegócio: primeiro semestre 2022. JUGULAM, M.; DIMEO, N.; VELDHUIS, L. J.; WALSH, M.; HALL, J. C. Investigation of MCPA (4-Chloro-2-ethylphenoxyacetate) Resistance in Wild Radish (Raphanus raphanistrum L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 61, n. 51, p. 12516–12521, 2013. KABBAGE, M.; KESSENS, R.; BARTHOLOMAY, L. C.; WILLIAMS, B. The life and death of a plant cell. Annual Review of Plant Biology, v. 68, p. 375–404, 2017. 85 KERBAUY, G. B. Fisiologia vegetal. 2. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2008. KING, M. G.; RADOSEVICH, S. R. Tanoak (Lithocarpus densiflorus) leaf surface characteristics and absorption of triclopyr. Weed Science, v. 27, n. 6, p. 599-604, 1979. KIRKWOOD, R. C. (1999). Recent developments in our understanding of the plant cuticle as a barrier to the foliar uptake of pesticides. Pesticide Science, 55(1), 69-77. KIRKWOOD, R. C. 1993. Use and mode of action of adjuvants for herbicides: A review of some current work. Pesticide Sci. 38:93-102, 1993. KISSMANN, K. G.; GROTH, D. Plantas infestantes e nocivas. 2ª edição, v. II. São Paulo: BASF, 978p, 1999. KRAEHMER, H. Innovation: changing trends in herbicide discovery. Pest Management Science, v. 23, p. 115-118, 2012. LARRAN, A.S.; PALMIERI, V.E.; PEROTTI, V.E.; LIEBER, L.; TUESCA, D.; PERMINGEAT, H.R. Target-site resistance to acetolactate synthase (ALS)-inhibiting herbicides in Amaranthus palmeri from Argentina. Pest Management Science, n. 73, p. 2578 2584, 2017. LAZAROTO, C. A.; FLECK, N. G.; VIDAL, R. A. Biologia e ecofisiologia de buva (Conyza bonariensis e Conyza canadensis). Ciência Rural, v. 38, p. 852-860, 2008. LESPÉRANCE, M.A. Programmed Cell Death and Altered Translocation Cause Glyphosate Resistance in Giant Ragweed (Ambrosia trifida L.); University of Guelph: Guelph, ON, Canada, 2016. LOCATO, V.; DE GARA, L. Programmed Cell Death in Plants: An Overview. Plant Programmed Cell Death, p. 1–8, 2018. MACHADO, A. F. L.; FERREIRA, L. R.; SANTOS, L. D. T.; SANTOS, J. B.; FERREIRA, F. A.; VIANA, R. G. Absorção, translocação e exsudação radicular de glyphosate em clones de eucalipto: clones. Planta Daninha, v. 27, p. 549-554, 2009. ROMERO‐PUERTAS, M. C.; MCCARTHY, I.; GÓMEZ, M.; SANDALIO, L. M.; CORPAS, F. J.; DEL RIO, L. A.; PALMA, J. M. Reactive oxygen species‐mediated enzymatic systems involved in the oxidative action of 2, 4‐dichlorophenoxyacetic acid. Plant, Cell & Environment, v. 27, n. 9, p. 1135-1148, 2004. MITHILA, J.; HALL, J. C.; JOHNSON, W. G.; KELLEY, K. B.; RIECHERS, D. E. Evolution of Resistance to Auxinic Herbicides: Historical Perspectives, Mechanisms of Resistance, and Implications for Broadleaf Weed Management in Agronomic Crops. Weed Science, v. 59, p. 445–457, 2011. MOREIRA, M. S.; NICOLAI, M.; CARVALHO, S. J. P.; CHRISTOFFOLETI, P.J. Resistência de C. canadensis e C bonariensis ao herbicida glyphosate. Planta Daninha, v. 25, p.157-164, 2007. 86 MORETTI, M L.; HANSON, B. D.; DÉLYE, C. Reduced translocation is involved in resistance to glyphosate and paraquat in (Conyza bonariensis) and (Conyza canadensis) from California. Weed Research, 2016. NEUMANN, P. M. Agrochemicals: plant physiological and agricultural perspectives. In: NEUMANN, P. M. (Ed.). Plant growth and leaf-applied chemicals. Boca Raton: CRC Press, p. 1-13, 1988. OPARKA, K. J.; ROBERTS, A. Plasmodesmata. A not so open-and-shut case. Plant Physiol., v. 125, p. 123-126, 2001. PANOZZO, S.; SCARABEL, L.; ROSAN, V.; SATTIN, M. A new Ala-122-Asn amino acid change confers decreased fitness to ALS-resistant Echinochloa crus-galli. Front. Plant Sci. , n.8, p.2042, 2017. PEIRIS, H. M. P. Diversity and behaviour of the naturally regenerated vegetation in commercial tea soils under herbicide free integrated weed management. Procedia Food Science, v. 6, p. 314-317, 2016. POWLES, S. B; YU Q. Evolution in action: plants resistant to herbicides. Annual Review of Plant Biology, v. 61, p.317–347, 2010. POWLES, S. B. Evolved glyphosate-resistant weeds around the world: lessons to be learnt. Pest Management Science, v. 64, p. 360-365, 2008. PROCÓPIO, S. O.; FERREIRA, E. A.; SILVA, E. A. M.; SILVA, A. A.; RUFINO, R. J. N.; SANTOS, J. B. Estudos anatômicos de folhas de espécies de plantas daninhas de grande ocorrência no Brasil: III-Galinsoga parviflora, Crotalaria incana, Conyza bonariensis e Ipomoea cairica. Planta daninha, v. 21, p. 1-9, 2003. REY-CABALLERO, J.; MENÉNDEZ, J.; GINÉ-BORDONABA, J.; SALAS, M.; ALCÁNTARA, R.; TORRA, J. Unravelling the resistance mechanisms to 2,4-D (2,4 dichlorophenoxyacetic acid) in corn poppy (Papaver rhoeas). Pesticide Biochemistry and Physiology, v. 133, p. 67–72, 2016. RIAR, D. S.; BURKE, I. C.; YENISH, J. P.; BELL, J.; GILL, K. Inheritance and physiological basis for 2, 4-D resistance in prickly lettuce (Lactuca serriola L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 59, n. 17, p. 9417-9423, 2011. RICOTTA, J. A.; MASIUNAS, J. B. Relationship of leaf surface characteristics to acifluorfen tolerance in tomato (Lycopersicon esculentum) and related species. Weed science, v. 40, n. 3, p. 402-407, 1992. RIEDERER, M.; J. SCHONHERR. Accumulation and transport of (2,4-dichlorophenoxy) acetic acid in plant cuticles: II. Permeability of the cuticular membrane. Ecotoxicology Environmental and Safety v. 9, p. 196-208, 1985. ROBERTSON, R. R. Physiological and biochemical characterization of glyphosate resistant ambrosia trifida l.; Purdue University: West Lafayette, IN, USA, 2010. 87 SANTOS, G.; OLIVEIRA, JR. R. S.; CONSTANTIN, J.; FRANCISCHINI, A. C.; OSIPE, J.B. Multiple resistance of Conyza sumatrensis to chlorimuronethyl and to glyphosate. Planta Daninha. v. 32, p. 409-416, 2014. SCHEPPER, V.; SWAEF, T.; BAUWERAERTS, I.; STEPPE, K. Phloem transport: a review of mechanisms and controls, Journal of Experimental Botany, v. 64, n. 16, p. 4839–4850, 2013. SCHMITTGEN, D.T.; LIVAK, K.J. Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method. Nature Protocols, v. 3, p. 1101-1108, 2008. SCHONHERR, J.; P. BAUR. Modelling penetration of plant cuticles by crop protection agents and effects of adjuvants on their rates and penetration. Pesticide Science; v. 42, p. 185-208, 1994. SCHONHERR, J. Effects of monodisperse alcohol ethoxylates on mobility of 2,4-D in isolated plant cuticles. Pesticide Science, v. 38, p. 155-164, 1993. SHANER, D. L. Role of translocation as a mechanism of resistance to glyphosate. Weed Scienci. v. 57, n. 1, p. 118–123, 2009. SICBALDI, F.; SACCHI, G. A.; TREVISAN, M.; DEL RE, A. A. Root uptake and xylem translocation of pesticides from different chemical classes. Pesticide Science, v. 50, n. 2, p. 111-119, 1997. SILVA, D.V.; SANTOS, J.B.; FERREIRA, E.A.; SILVA, A.A.; FRANÇA, A.C.; SEDIYAMA, T. Manejo de plantas daninhas na cultura da mandioca. Planta Daninha, v. 30, n. 4, p. 901-910; 2012. SILVA,V.V.; MENDES, R.; SUZUKAWA, A.; ADEGAS, F.; MARCELINO-GUIMARAES, F.; OLIVEIRA JR. A. Target-Site Mutation Confers Cross-Resistance to ALS-Inhibiting Herbicides in Erigeron sumatrensis from Brazil. Plants, n.11, v. 4, p. 467, 2022. SIQUEIRA, R. H. S.; ALCÂNTARA, E. N.; FERREIRA, M. M.; CARVALHO, R. C. S.; Agregação de um latossolo vermelho-amarelo submetido a métodos de controle de plantas invasoras na cultura do café. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v. 38, n. 6, p. 1128-1134, 2014. STERLING, T.M.; BALKE, N.E.; SILVERMAN, D.S. Uptake and accumulation of theherbicide bentazon by cultured plant cells. Plant Physiology, v. 92, n. 4, p. 1121-1127, 1990. STERLING, T.M.; LOWNDS, N.K. Picloram absorption by broom snakeweed(Gutierrezia sarothrae) leaf tissues. Weed Science, v. 40, p. 390-394, 1992. SWANTON, C. J.; NKOA, R.; BLACKSHAW, R. E. Experimental methods for cropeweed competition studies. Weed Science, v. 63, n. 11, 2015. TAIZ, L. AND ZEIGER, E. Plant Physiology. 5th Edition, Sinauer Associates Inc., Sunderland, 782 p., 2010. 88 TAKANO, H.; OLIVEIRA JUNIOR, R.; CONSTANTIN, J.; BIFFE, D.; FRANCHINI, L.; BRAZ, G.; RIOS, F.; GHENO, E.; GEMELLI, A. Efeito da adição do 2,4-D ao glyphosate para o controle de espécies de plantas daninhas de difícil controle. Revista Brasileira de Herbicidas, v. 12, n. 1, p. 1-13, 2013. THEBAUD, C.; ABBOTT, R.J. Characterization of invasive Conyza species (Asteraceae) in Europe: quantitative trait e isozyme analysis. American Journal of Botany, Columbus, v.82, n.3, p.360-368, 1995. TRANEL, P. J.; RIGGINS, C. W.; BELL, M. S.; HAGER, A. G. Herbicide Resistances in Amaranthus tuberculatus: A Call for New Options. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 59, n. 11, p. 5808–5812, 2011. TRAVLOS, I.S.; CHACHALIS, D. Relative competitiveness of glyphosate-resistant and glyphosate-susceptible populations of hairy fleabane, Conyza bonariensis. Journal of Pest Science. v. 86, p. 345–351, 2013. Urdampilleta, J. D.; Amat, A. G.; Bidau, C. J. Karyotypic studies e morphological analysis of some reproductive features in five species of Conyza Less. (Astereae: Asteraceae) from Northeastern Argentina. Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica, v. 40, n. 1, p. 91-99, 2005. VASCONCELOS, M. C. C.; SILVA, A. F. A; LIMA, R. S. Interferência de plantas daninhas sobre plantas cultivadas. Agropecuária Científica no Semi-Árido, v. 8, n. 1, p.1-6, 2012. VIDAL, R. A. Ação dos herbicidas. Porto Alegre: Universidade Federal do Rio Grande do Sul, 2002. 89 p. VITTA, J., FACCINI, D., LEGUIZAMON, E., NISENSOHN, L., PAPA, J. C., PURICELLI, E., & TUESCA, D. Herbicidas: características y fundamentos de su actividad. UNR Editora, 2004. WAGATSUMA, T. Effect of non-metabolic conditions on the uptake of aluminum by plant roots. Soil Science and Plant Nutrition, v. 29, p. 323-33 3, 1983. WARABI, E.; USUI, K.; TANAKA, Y.; MATSUMOTO, H. Resistance of a soybean cell line to oxyfluorfen b overproduction of mitochondrial protoporphyrinogen oxidase. Pest management Science. v. 57, n. 8, p. 743-748, 2001. WU, H., & WALKER, S. Fleabane biology and control. In Fleabane. Proceedings of a workshop held at DPI&F in Toowoomba, Australia, 25th February 2004 (pp. 5-6). CRC for Australian Weed Management, 2004 WYRILL, J. B.; BURNSIDE, O. C. Absorption, translocation, and metabolism of 2, 4-D and glyphosate in common milkweed and hemp dogbane. Weed Science, v. 24, n. 6, p. 557-566, 1976. YAMASHITA, O.M.; GUIMARÃES, S.C. Germinação de sementes de Conyza canadensis e bonariensis em função da disponibilidade hídrica no substrato. Planta daninha, v. 28, n. 2, p. 309-3170, 2010 89 YUAN, G.; TIAN, Z.; LI, T.; QIAN, Z.; GUO, W.; SHEN, G. Cross-resistance pattern to ACCase-inhibiting herbicides in a rare Trp-2027-Ser mutation Chinese sprangletop (Leptochloa chinensis) population. Chilean journal of agricultural research, v. 81, n.1, p. 62 69, 2021. ZHENG D.; KRUGER G. R.; SINGH S.; DAVIS V. M.; TRANEL P.J.; WELLER C. S.; JOHNSON W. G. Cross-resistance of horseweed (Conyza canadensis) populations with three different ALS mutations. Pest management Science, v. 67, n. 12, p. 1486–1492, 2011.pt_BR
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